茄子根際促生菌篩選鑒定及其促生效應(yīng)

張芝，張垚，王志剛，徐偉慧

茄子根際促生菌篩選鑒定及其促生效應(yīng)

張芝1，2，張垚1，2，王志剛1，2，徐偉慧1，2

（齊齊哈爾大學(xué) 1. 生命科學(xué)與農(nóng)林學(xué)院，2. 黑龍江省農(nóng)業(yè)微生物制劑產(chǎn)業(yè)化技術(shù)創(chuàng)新中心，黑龍江 齊齊哈爾 161006）

以齊齊哈爾龍江縣茄子根際土壤為實(shí)驗(yàn)材料，采用稀釋平板法篩選根際促生菌（plant growth-promoting rhizobacteria，PGPR），通過16S rRNA核苷酸序列分析鑒定菌種，探究菌株的生理活性，并進(jìn)行安全性評價；通過浸種和盆栽實(shí)驗(yàn)研究菌株對茄子種子萌發(fā)和幼苗生長的影響．結(jié)果表明，在茄子根際篩選到7株P(guān)GPR，其分別屬于sp. QJ1，QJ2，QJ4，NQ1△，NQ1，NQ3，sp. NQ5；不同的菌株溶磷、分泌赤霉素和吲哚乙酸（IAA）能力不同；菌株產(chǎn)生鐵載體，僅有NQ3菌株具有溶血性．浸種和盆栽實(shí)驗(yàn)表明，NQ1△菌懸液顯著促進(jìn)茄子種子的萌發(fā)，QJ2菌懸液對茄子幼苗生長有顯著的促進(jìn)作用．綜上所述，菌株NQ1△，QJ2可分別作為茄子種子包衣及專用促生肥料的候選菌劑．

茄子；植物根際促生菌；菌種鑒定；促生效應(yīng)；微生物肥料

茄子（L.）為茄科茄屬蔬菜作物，種植面積僅次于馬鈴薯（L.）和番茄（L.）[1-2]．中國是世界上最大的茄子生產(chǎn)大國和消費(fèi)國，2018年，全世界茄子產(chǎn)量為5 360萬t，我國產(chǎn)量達(dá)到3 410萬t，占世界總產(chǎn)量的63.62%[3]．由于人們對茄科作物需求量的增加，大量使用無機(jī)化肥成為最直接的增產(chǎn)手段，化學(xué)肥料的大量使用導(dǎo)致產(chǎn)品的品質(zhì)下降、環(huán)境污染、土壤質(zhì)地惡化和土壤板結(jié)等大量問題．因此，尋求一種綠色環(huán)保、科學(xué)高效并且能夠減少或代替?zhèn)鹘y(tǒng)的化學(xué)肥料的新型肥料是當(dāng)代農(nóng)業(yè)生產(chǎn)所必需的．而植物根際蘊(yùn)藏著豐富的、可利用的微生物資源，合理開發(fā)和利用根際微生物資源是生產(chǎn)微生物肥料的有效途徑之一[4]．

植物根際促生菌（plant growth-promoting rhizobacteria，PGPR）是指以定殖或以自由附著的方式生活在植物根際的一類菌株的總稱[5]．根際促生菌主要集中在細(xì)菌的20多個屬，主要包括，，，，，，等[6]．PGPR能夠改變根際土壤的理化性質(zhì)，提高根際中對植物生長有利的營養(yǎng)元素的轉(zhuǎn)化[7]，也可通過分泌鐵載體、有機(jī)酸、生物表面活性劑、植物生長激素等，以直接或間接的方式促進(jìn)或調(diào)節(jié)植物的生長并起到防治病害的作用[8-9]．不同植物根際分離到的促生菌株對相應(yīng)植物的種子萌發(fā)和幼苗生長具有一定的促進(jìn)作用[10]．李青梅[11]等研究發(fā)現(xiàn)，經(jīng)菌劑處理的黃瓜、番茄、茄子、辣椒等4種蔬菜種子的發(fā)芽率均高于對照，但對4種蔬菜幼苗根生長的影響因蔬菜種類不同而異．本實(shí)驗(yàn)以齊齊哈爾龍江縣茄子作物根際土為研究材料，篩選鑒定茄子根際促生菌，研究其分泌激素和溶磷能力及對茄子種子萌發(fā)和幼苗的促生效應(yīng)，為微生物肥料的開發(fā)與應(yīng)用奠定理論基礎(chǔ)．

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

供試根際土采集于齊齊哈爾市龍江縣的茄子根際，于4 ℃保存待用．

LB培養(yǎng)基（1 L）：酵母膏5.0 g，NaCl 8.0 g，蛋白胨10.0 g，瓊脂20.0 g，pH7.0．液體培養(yǎng)基不加瓊脂．

蒙金娜有機(jī)培養(yǎng)基（1 L）：葡萄糖10.0 g，MgSO4·7H2O 0.3 g，（NH4）2SO40.5 g，NaCl 0.3 g，F(xiàn)eSO4·7H2O 0.03 g，KCl 0.3 g，MnSO4·H2O 0.03 g，卵磷脂0.2 g，CaCO31.0 g，酵母粉0.5 g，瓊脂20.0 g，pH7.0．液體培養(yǎng)基不加瓊脂．

PKO培養(yǎng)基（1 L）：葡萄糖10.0 g，MgSO4·7H2O 0.3 g，（NH4）2SO40.5 g，NaCl 0.3 g，Ca3（PO4）22.0 g，KCl 0.3 g，MnSO4·H2O 0.03 g，F(xiàn)eSO4·7H2O 0.036 g，瓊脂20.0 g，pH7.0．液體培養(yǎng)基不加瓊脂．

鉻天青（CAS）培養(yǎng)基：每100 mL含20%蔗糖溶液1 mL，10%酸水解酪素3 mL，1 mmol·L-1CaCl2100 μL，1 mmol·L-1MgSO42 mL，瓊脂1.8 g，在約60 ℃時緩慢加入磷酸鹽緩沖液和CAS染液各5 mL，即得CAS藍(lán)色培養(yǎng)基．

無氮培養(yǎng)基（1 L）：蔗糖10 g，KH2PO40.2 g，NaCl 0.12 g，CaCO31.0 g，瓊脂20.0 g，MgSO4·7H2O 0.2 g，將pH調(diào)至7.2．液體培養(yǎng)基不加瓊脂．

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 菌株的分離與鑒定 稱取茄子根際土10.0 g，置于含有玻璃珠和90 mL無菌水的錐形瓶中，在30 ℃、130 r·min-1的搖床條件下充分振蕩20 min，取1 mL土壤懸浮液加入盛有9 mL無菌水的試管中，通過系列梯度稀釋，取10-4，10-5，10-6，10-7，10-8稀釋度的土壤懸浮液各0.2 mL，分別涂布于蒙金娜培養(yǎng)基和固體無氮平板上，每一梯度重復(fù)3次．涂布后將平板置于30 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，定期觀察菌落大小、顏色等，將有解磷圈和無氮培養(yǎng)基上的單菌落挑出，分別接種到新的蒙金娜培養(yǎng)基和無氮瓊脂平板上，反復(fù)純化，將分離純化得到的菌落接入對應(yīng)的篩選液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)，3 d后取菌液離心，棄上清，沉淀保存于-20 ℃的冰箱中備用．

使用Ezup柱式細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒提取菌株的總基因DNA，采用細(xì)菌通用引物27F：（5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'）和1492R：（5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3'）進(jìn)行16S rRNA的PCR擴(kuò)增．PCR反應(yīng)體系（20 μL）：DNA模板0.5 μL，10×Ex Taq buffer 2.0 μL，2.5 mM dNTP Mix 1.6 μL，正向引物（27F）0.8 μL，反向引物（1492R）0.8 μL，5u Ex Taq 0.2 μL，ddH2O 14.1 μL．PCR反應(yīng)程序：95 ℃ 5 min；95 ℃ 30 s，51/55 ℃ 30 s，72 ℃ 1 min，24個循環(huán)，72 ℃ 10 min．測序結(jié)果在NCBI的GenBank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行Blast比對，鑒定菌株種屬[12]．

1.2.2 菌株溶磷、分泌赤霉素和IAA能力 （1）菌株溶磷能力的測定參考文獻(xiàn)[13]的方法．分別將2 μg·mL-1的磷標(biāo)準(zhǔn)液以0.00，0.50，1.00，3.00，5.00，10.00，15.00 mL加入25 mL的比色管中，用超純水定容至25 mL，得到磷含量分別為0.00，0.04，0.08，0.24，0.40，0.80，1.20 μg·mL-1的標(biāo)準(zhǔn)液．加入2 mL鉬銻抗顯色劑，室溫下反應(yīng)30 min，測定OD700吸光值，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線．將菌株接于液體PKO培養(yǎng)基中，置于搖床（30 ℃，120 r·min-1）震蕩培養(yǎng)，在24，48，72 h分別取菌懸液離心，將1.00 mL上清液置于比色管中，并定容至25 mL，再加入2 mL鉬銻抗顯色劑，避光反應(yīng)30 min，測定OD700吸光值，每組３個平行．

（2）赤霉素的測定參考文獻(xiàn)[14]的方法．將分析純赤霉素溶于體積分?jǐn)?shù)為70％的乙醇溶液中，配置成赤霉素標(biāo)準(zhǔn)液100 μg·mL-1，按照一定的濃度梯度進(jìn)行稀釋，取各濃度的赤霉素溶液0.5 mL與4.5 mL的濃硫酸充分混勻，置于冰浴中10 min，充分混勻后用純凈水定容至20 mL，測定412 nm處吸光值，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線．將菌株接種于LB培養(yǎng)基中，置于搖床（30 ℃，120 r·min-1）上振蕩培養(yǎng)24 h制備種子液，按1％的接種量將種子液轉(zhuǎn)接LB培養(yǎng)基中，搖床振蕩（30 ℃，120 r·min-1）培養(yǎng)，在24，48，72 h分別取菌懸液離心（10 000 r·min-1，10 min），取0.5 mL上清液測定菌株赤霉素濃度，每組設(shè)置３個重復(fù)，確定各菌株赤霉素的分泌量．

（3）將200 μg·mL-1的IAA標(biāo)準(zhǔn)液梯度稀釋為0，25，50，75，100，125，150，175 μg·mL-1，采用Salkowski顯色法測定吸光值（OD540），繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線．將菌株接于LB液體培養(yǎng)基中，置于搖床（30 ℃，120 r·min-1）培養(yǎng)24 h制作種子液，按1%的接種量將種子液接入含有200 mg·L-1色氨酸的液體LB培養(yǎng)基中，置于搖床培養(yǎng)（30 ℃，120 r·min-1），在24，48，72 h分別取菌懸液離心，5 mL上清液中加入5 mL顯色液，并定容至25 mL，避光30 min，測定OD540吸光值，每組３個重復(fù)．

1.2.3 菌株產(chǎn)鐵載體能力及安全性評價 鐵載體的測定參考文獻(xiàn)[15]的方法．鐵載體檢測CAS染液：將0.079 g CAS（鉻天青）溶于50 mL去離子水中，再加入10 mL 1 mmol·L-1的FeCl3溶液（含12 mmol·L-1HCl），得溶液A．將0.069 g十六烷基三甲基溴化銨溶于40 mL的去離子水中，得溶液B．將A溶液沿?zé)诰従徏尤隑溶液中，攪拌混勻即得100 mL CAS藍(lán)色檢測液．0.1 mol·L-1磷酸鹽緩沖液（pH 6.8）：每100 mL含Na2HPO4·12H2O 2.427 g，NaH2PO4·2H2O 0.591 g，KH2PO40.075 g，NH4Cl 0.250 g，NaCl 0.125 g，使用時稀釋10倍．將CAS培養(yǎng)基在約60 ℃時緩慢加入磷酸鹽緩沖液和CAS染液各5 mL，即得CAS藍(lán)色培養(yǎng)基．將菌接于藍(lán)色固體培養(yǎng)基上，倒置培養(yǎng)，如出現(xiàn)透明圈則能產(chǎn)生鐵載體．

參考文獻(xiàn)[16]的方法檢測菌株的溶血性．用無菌接種環(huán)蘸取待測菌株，接種于血瓊脂平板，置于保溫箱35～37 ℃培養(yǎng)18～24 h，觀察有無溶血圈產(chǎn)生．

1.2.4 促生菌劑對種子萌發(fā)和幼苗的促生效應(yīng) 選取茄子種子于55～60 ℃的水中浸泡15～20 min，分別將NQ1△，QJ2的菌懸液（OD600=1）稀釋20倍，再將茄子種子置于稀釋20倍的菌懸液中浸泡12 h．將浸泡后的種子轉(zhuǎn)至鋪有2層濾紙的無菌培養(yǎng)皿（直徑9 cm）中，每皿放15粒種子，以相同濃度的LB培養(yǎng)基浸種為對照（CK），每個處理3個重復(fù)．置于人工氣候箱中培養(yǎng)14 d（28 ℃、相對濕度60%），發(fā)芽結(jié)束后統(tǒng)計(jì)種子的發(fā)芽率，計(jì)算種子的發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)，測量茄子種子的胚根長．

待茄苗長至3～5片真葉時，將NQ1△，QJ2的菌懸液（OD600=1）稀釋20倍對幼苗進(jìn)行澆灌，每7～10 d澆灌1次，以澆灌相同濃度的LB培養(yǎng)基為對照，實(shí)驗(yàn)期間澆灌清水，各處理間保持土壤墑情一致，每個處理重復(fù)10株．澆灌7次菌懸液后，測量植株的莖粗、株高和干鮮質(zhì)量．

1.3 數(shù)據(jù)處理

采用Microsoft Excel 2019，IBM SPSS Statistics 26.0，Origin 9.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)整理、方差分析和作圖，采用DNAMAN軟件進(jìn)行供試菌株兩兩序列間比較．

2 結(jié)果與分析

2.1 菌株的16S rRNA序列測定

基于菌株的16S rRNA測序結(jié)果和GenBank中已登錄的核苷酸序列進(jìn)行Blast比對，發(fā)現(xiàn)菌株QJ1，QJ2，QJ4，NQ1△，NQ1，NQ3，NQ5分別與sp. 210（GQ199718.1）QAZ27（MN099388.1）HNS79（KF933676.1）B19（KU500561.1）BS0669（MK823857.1）BS0713（MK823901.1）sp.（KU372123.1）同源性最高（見表1）．因此，將菌株QJ1，QJ2，QJ4，NQ1△，NQ1，NQ3，NQ5分別命名為sp.QJ1，QJ2，QJ4，NQ1△，NQ1，NQ3，sp. NQ5．雖然菌株NQ1，NQ3都屬于，但用DNAMAN軟件分析二者的序列，發(fā)現(xiàn)菌株NQ1和NQ3的相似度為74.73%，說明二者不是同一種菌．

表1 供試菌株16S rRNA序列鑒定

2.2 菌株溶磷、分泌赤霉素和IAA能力

菌株溶磷能力見圖1a．由圖1a可見，在24 h時，7株供試菌的溶磷濃度在1.46～3.50 mg·L-1之間，菌株NQ1△的溶磷質(zhì)量濃度最高，為3.50 mg·L-1，與其它菌株之間存在顯著性差異；其次是NQ1，QJ1，QJ4．在48 h時，菌株NQ1的溶磷質(zhì)量濃度最高，為3.82 mg·L-1，與其它菌株之間存在顯著性差異；其次是QJ4，NQ3，QJ2．在72 h時，菌株QJ1的溶磷質(zhì)量濃度最高，為3.94 mg·L-1，與其它菌株之間存在顯著性差異；其次是NQ1△，QJ4，QJ2，NQ1．

菌株分泌赤霉素的能力見圖1b．由圖1b可見，在24 h時，菌株NQ3分泌的赤霉素質(zhì)量濃度最高，為50.43 mg·L-1，與除NQ1△，NQ5菌株外的其它菌株之間存在顯著性差異．在48 h時，菌株QJ1分泌的赤霉素質(zhì)量濃度最高，為15.43 mg·L-1，與菌株QJ4相比存在顯著性差異．在72 h時，菌株QJ1分泌的赤霉素質(zhì)量濃度最高，為101.86 mg·L-1，與菌株QJ2，QJ4，NQ1△，NQ3，NQ5相比存在顯著性差異．

菌株分泌IAA的能力見圖1c．由圖1c可見，培養(yǎng)24 h時，菌株NQ1△分泌的IAA質(zhì)量濃度最高，為112.28 mg·L-1，與菌株QJ1，QJ2，QJ4，NQ1相比差異不顯著．在48 h時，菌株NQ5分泌的IAA質(zhì)量濃度最高，為92.28 mg·L-1，與QJ2，NQ1△，NQ1，NQ3之間存在顯著差異．在72 h時，QJ2菌株產(chǎn)生的IAA質(zhì)量濃度最高，為102.28 mg·L-1．而菌株NQ1△，NQ1，NQ3，NQ5此時未檢出有IAA分泌，可能是因?yàn)樵?2 h前菌株已進(jìn)入衰亡期．

圖1 供試菌株溶磷、分泌赤霉素和IAA能力

注：不同小寫字母表示處理間差異顯著（<0.05），下同．

2.3 鐵載體測定及安全性評價

菌株產(chǎn)鐵載體能力及溶血性評價情況見表2．由表2可見，在7個菌株中僅NQ3菌株有溶血性，QJ1和QJ2具有產(chǎn)鐵載體的能力．

表2 菌株產(chǎn)鐵載體能力及溶血性評價

注：“+”表示結(jié)果陽性；“-”表示結(jié)果陰性．

2.4 NQ1△和QJ2菌懸液對茄子種子萌發(fā)的影響

NQ1△和QJ2菌懸液處理對茄子種子萌發(fā)的影響見表3．由表3可見，NQ1△菌株處理的種子的活力指數(shù)、芽長與對照組之間存在顯著差異，分別較對照組增長了90.01%，31.54%，其發(fā)芽指數(shù)和主根長與對照組比較，分別增加了21.50%，17.20%，但差異不顯著．QJ2菌懸液處理后，茄子種子的發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)、芽長均高于對照組，但差異不顯著．

表3 NQ1△和QJ2菌懸液處理對茄子種子萌發(fā)的影響

NQ1△，QJ2菌懸液對茄子種子萌發(fā)形態(tài)的影響見圖2．由圖2可見，NQ1△菌株對茄子種子的萌發(fā)有顯著的促進(jìn)作用，該處理組種子萌發(fā)的形態(tài)優(yōu)于對照組．

圖2 NQ1△和QJ2菌懸液對茄子種子萌發(fā)形態(tài)的影響

注：（1），（2），（3）為重復(fù)次數(shù)．

2.5 促生菌劑對幼苗的促生效應(yīng)

NQ1△和QJ2菌懸液處理對茄子幼苗的促生效應(yīng)見表4．由表4可見，QJ2菌懸液處理的幼苗在鮮、干質(zhì)量和株高方面與對照組之間存在顯著性差異，比對照組分別增加了128.70%，110.86％，33.74％，植株莖粗與對照組之間無顯著性差異．NQ1△菌株的株高比對照組增長了27.98％，二者之間存在顯著性差異．

表4 NQ1△和QJ2菌懸液處理對茄子幼苗的促生效應(yīng)

NQ1△，QJ2菌懸液處理后茄子幼苗形態(tài)見圖3．由圖3可見，QJ2菌懸液對茄子幼苗的生長有良好的促進(jìn)作用．

圖3 NQ1△，QJ2菌懸液處理后茄子幼苗形態(tài)

3 討論與結(jié)論

本實(shí)驗(yàn)從茄子根際土壤中篩選出7株菌，包括3株解磷菌（QJ1，QJ2，QJ4），4株固氮菌（NQ1△，NQ1，NQ3，NQ5）．解磷菌能夠在土壤有效磷較少的情況下，將植物難以吸收的磷轉(zhuǎn)化為能夠利用的形態(tài)，提高土壤中磷的利用率，在溶解難溶性磷為植物的吸收態(tài)時，也會增加其體內(nèi)磷的含量，成為植酸磷[17-18]；而固氮菌通過生物固氮來為植物提供氮素或通過磷元素的增溶作用來促進(jìn)植物的生長，也可改善植物對礦物質(zhì)的利用率或誘導(dǎo)其產(chǎn)生拮抗物質(zhì)來促進(jìn)植株生長[19-20]．本實(shí)驗(yàn)對所篩選的解磷菌和固氮菌進(jìn)行溶磷、分泌激素、產(chǎn)鐵載體的能力分析．結(jié)果表明，供試的解磷菌和固氮菌均有溶磷、分泌赤霉素和IAA的能力，說明一個菌株兼有多種功能．菌株QJ1，QJ2分泌鐵載體，NQ3菌株有溶血性．肖坤[21]的實(shí)驗(yàn)證明根際解磷菌27B和21A除具有較強(qiáng)的溶解有機(jī)磷和無機(jī)磷的能力外也具有固氮、產(chǎn)IAA和HCN等多種功能．

植物根際促生菌能夠通過分泌植物激素、鐵載體和有機(jī)酸等方式直接或間接促進(jìn)植物的生長發(fā)育．不同的根際促生菌可能分別作用于植物的不同方面．本研究選取QJ2，NQ1△ 2株菌評估其對茄子種子萌發(fā)和幼苗生長的影響．結(jié)果表明，菌株NQ1△較QJ2對茄子種子萌發(fā)有顯著的促進(jìn)作用，可能與菌株NQ1△分泌較高的赤霉素有關(guān)，因?yàn)槌嗝顾赝ㄟ^促進(jìn)種子內(nèi)不同酶的合成來調(diào)節(jié)其營養(yǎng)物質(zhì)的轉(zhuǎn)化與積聚，打破種子的休眠，提高其萌發(fā)率[22-24]．盆栽實(shí)驗(yàn)表明，菌株QJ2對茄子的促生效果優(yōu)于菌株NQ1△，原因可能與菌株分泌IAA優(yōu)于菌株NQ1△，還可能與菌株QJ2產(chǎn)生鐵載體有關(guān)，通過鐵載體的螯合作用，改變土壤中鐵的有效性，從而滿足植物生長對鐵的需求，導(dǎo)致QJ2菌株在盆栽實(shí)驗(yàn)中促生效果明顯[25]．

綜上所述，本研究從植物根際篩選出3株解磷菌和4株固氮菌，基于菌株16S rRNA序列同源性分析，將7株菌分別鑒定為sp. QJ1，QJ2，QJ4，NQ1△，NQ1，NQ3，sp. NQ5．且不同菌株具有不同的溶磷、分泌赤霉素和IAA的能力，菌株NQ3具有溶血性，菌株QJ1和QJ2產(chǎn)鐵載體；NQ1△菌懸液能促進(jìn)茄子種子的萌發(fā)，QJ2菌懸液對茄子幼苗生長有良好的促進(jìn)作用．

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Screening，identification and beneficial effects of plant growth-promoting rhizobacteriain the rhizosphere of eggplant

ZHANG Zhi1，2，ZHANG Yao1，2，WANG Zhigang1，2，XU Weihui1，2

（1. School of Life Sciences，Agriculture and Forestry，2. Heilongjiang Provincial Technology Innovation Center of Agromicrobial Preparation Industrialization，Qiqihar University，Qiqihar 161006，China）

Collected and used the rhizosphere soil from eggplant on Longjiang County in Qiqihar as experimental materials．Plant growth-promoting rhizobacteria （PGPR） was screened outusing dilution plate method，and identified by 16S rRNA sequence analysis．The physiological activity of the strains were explored，and conduct safety evaluation．Soaking seed and pot experiments were conducted to evaluate promoting effects of the strains on seed germination and seedling growth of eggplant．The results showed that the seven-PGPR from eggplant rhizosphere were identified，which weresp.QJ1，QJ2，QJ4，NQ1△，NQ1，NQ3andsp.NQ5，respectively．The abilities of dissolving phosphorus，secreting gibberellin and indoleacetic acid （IAA） from seven strains were different．Strains could produce siderophores，and only NQ3 strain had hemolytic activity．Seed soaking and pot experiments showed that bacterium suspension of NQ1△，QJ2 could promote significantly seed germination and seedling growth of eggplant respectively．In conclusion，strains NQ1△ and QJ2 might be candidate agents for seed coating and special promoting growth fertilizer of eggplant，respectively．

eggplant；plant growth-promoting rhizobacteria；identification of strain；promoting effect；microbial fertilizer

Q93

A

10.3969/j.issn.1007-9831.2022.02.012

1007-9831（2022）02-0061-08

2021-10-08

齊齊哈爾大學(xué)第三批大學(xué)生學(xué)術(shù)科技創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)項(xiàng)目（220067）；黑龍江省重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目（GA21B007）；大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)項(xiàng)目（202010232155，202010232158）

張芝（2001-），女，河南許昌人，在讀本科生．E-mail：2297745282@qq.com

徐偉慧（1979-），女，內(nèi)蒙古赤峰人，教授，博士，從事根際有益微生物的挖掘與利用研究．E-mail：xwh800206@163.com