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    低聚甘油氣相色譜檢測(cè)方法的研究進(jìn)展

    2022-01-27 02:26:28付盡國(guó)楊承鴻李淑紅
    生物化工 2021年6期
    關(guān)鍵詞:離子化三聚直鏈

    付盡國(guó),楊承鴻,李淑紅

    (廣東科貿(mào)職業(yè)學(xué)院 食品與生物工程學(xué)院,廣東廣州 510430)

    聚甘油是兩個(gè)或多個(gè)甘油分子間的羥基經(jīng)脫水后生成醚鍵的多元醇,是重要的精細(xì)化工產(chǎn)品及合成中間體,廣泛應(yīng)用于日化、食品、醫(yī)藥、生物材料等行業(yè)。低聚甘油主要由二聚甘油和三聚甘油組成,同時(shí)還有一定量殘留的游離甘油,其定性定量分析方法的建立對(duì)于評(píng)價(jià)低聚甘油產(chǎn)品的質(zhì)量和指導(dǎo)生產(chǎn)工藝改進(jìn)尤為重要。低聚甘油的分析方法有很多,如薄層色譜法、氣相色譜法、高效液相色譜法、超臨界流體色譜法、凝膠滲透色譜法和氣(液)質(zhì)聯(lián)用法等。其中,由于氣相色譜儀價(jià)格相對(duì)便宜,保養(yǎng)和使用成本低,且分離度和檢測(cè)靈敏度高,操作簡(jiǎn)便,成為測(cè)定低聚甘油組成的常用方法之一。因此,本文對(duì)低聚甘油氣相色譜檢測(cè)方法進(jìn)行了歸納總結(jié)。

    甘油分子的3個(gè)羥基(2個(gè)伯羥基,1個(gè)仲羥基,伯羥基反應(yīng)活性高于仲羥基)都可以發(fā)生反應(yīng)。甘油脫水聚合時(shí)連接羥基的位置不同可形成多種結(jié)構(gòu),如直鏈、支鏈和環(huán)狀等,如圖1所示。因此,低聚甘油實(shí)際上是各種結(jié)構(gòu)二聚甘油、三聚甘油的混合物。

    圖1 直鏈、支鏈和環(huán)狀二聚甘油、三聚甘油的分子結(jié)構(gòu)式

    1 國(guó)外研究進(jìn)展

    國(guó)外對(duì)利用氣相色譜法測(cè)定低聚甘油的組成研究較早。DE MEULENAER等[1]采用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定。固定相為 OV-1 CP sil 5 CB WCOT(25 m×0.25 mm,0.25 μm),流動(dòng)相:氦氣0.6 mL/min,氫氣和氧氣的流速分別為1 mL/min和10 mL/min,分流比為1∶100,進(jìn)樣口溫度250 ℃,檢測(cè)器溫度340 ℃,進(jìn)樣量1~2 μL,升溫程序:100 ℃下保持1 min,然后以10 ℃/min的速率升溫至290 ℃保持10 min。出峰順序?yàn)椋焊视?、環(huán)狀二聚甘油、支鏈二聚甘油、直鏈二聚甘油、環(huán)狀三聚甘油、支鏈二聚甘油、直鏈三聚甘油、四聚甘油和五聚甘油。

    RAMIREZ等[2]采用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定,色譜柱為毛細(xì)管HT5柱,樣品經(jīng)過(guò)硅烷化處理后進(jìn)樣檢測(cè)。

    AYOUB等[3]采用帶有毛細(xì)管極性柱DB-HT5的氣相色譜儀對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定。甘油的保留時(shí)間為2~4 min,二聚甘油(按β,β-二聚甘油、α,β-二聚甘油、α,α-二聚甘油的出峰順序)的保留時(shí)間為8~9 min,三聚甘油的保留時(shí)間為12~ 14 min。

    GUERRERO-URBANEJA等[4]將約80 mg的聚甘油溶于干燥的吡啶中,然后加入N,O-雙(三甲基硅基)三氟乙酰胺(BSTFA),再將該溶液在60 ℃下陳化1 h。衍生后的樣品通過(guò)氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器進(jìn)行分析,色譜柱為毛細(xì)管石英熔融TBR-14柱。保留時(shí)間在20~22 min的組分為環(huán)狀二聚甘油;保留時(shí)間在22~23 min的組分為直鏈和支鏈二聚甘油,如α,α-二聚甘油、α,β-二聚甘油、β,β-二聚甘油;保留時(shí)間在30~31 min的組分為三聚甘油。

    GHOLAMI等[5]采用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定,樣品需經(jīng)過(guò)硅烷化處理。色譜柱為毛細(xì)管聚乙二醇柱(15 m×0.32 mm,0.10 μm),甘油、二聚甘油和三聚甘油的保留時(shí)間分別為3.205 min、8.632 min和13.104 min。同時(shí),二聚甘油的3種同分異構(gòu)體也可以分離,按β,β-二聚甘油、α,β-二聚甘油、α,α-二聚甘油的順序出峰。

    PéREZ-BARRADO等[6]采用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定,自動(dòng)進(jìn)樣器溫度為240 ℃,檢測(cè)器為340 ℃,色譜柱為毛細(xì)管柱HT5,以1 ℃/min的速率從100 ℃升溫至290 ℃。樣品硅烷衍生化所使用的試劑為:六甲基二硅氮烷(HMDS)、三甲基氯硅烷(TMCS)和吡啶(3∶1∶9),用內(nèi)標(biāo)法進(jìn)行計(jì)算。

    KIRBY等[7]采用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定,樣品經(jīng)過(guò)硅烷化處理,硅烷化試劑為HMDS和TMCS。色譜柱為VF-ms毛細(xì)管柱,以10 ℃/min的速率從60 ℃升溫至260 ℃,保持5 min,再以20 ℃/min的速率升溫至300 ℃,保持5 min。采用10~60 mg甘油、環(huán)狀二聚甘油、二聚甘油標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行校正。

    BARROS等[8]采用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定,所用的硅烷化試劑為BSTFA。色譜柱為CP-Sil 5CB柱(100%二甲基聚硅氧烷,25 m×0.25 mm,0.25 μm),以1 ℃/min的速率從80 ℃升到100 ℃,然后以25 ℃/min的速率升溫至300 ℃,保持5 min,進(jìn)樣器溫度為250 ℃,檢測(cè)器溫度為280 ℃。吡啶的保留時(shí)間為2 min,甘油的保留時(shí)間為20.5 min,環(huán)狀化合物的保留時(shí)間23.5~24.0 min,二聚甘油的保留時(shí)間為25.0~25.5 min,三聚甘油的保留時(shí)間為27~28 min。

    GALY等[9]采用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定,所使用的硅烷化試劑為N,O-雙(三甲基甲硅烷基)乙酰胺(BSA)。色譜柱為Alltech AT HT,檢測(cè)器溫度為300 ℃,進(jìn)樣器為340 ℃,氮?dú)饬髁繛? mL/min, 150 ℃下保持2 min,然后以15 ℃/min的速率升溫至350 ℃,保持4.67 min。β,β-二聚甘油的保留時(shí)間為4.9 min,α,β-二聚甘油的保留時(shí)間為5.1 min,α,α-二聚甘油的保留時(shí)間為5.3 min,β,α-β,β-三聚甘油的保留時(shí)間為7.6 min,α,α-α,α-三聚甘油的保留時(shí)間為8.2 min。出峰順序由二聚甘油和三聚甘油中伯羥基的數(shù)量所決定,伯羥基數(shù)量越多,保留時(shí)間越短。

    SANGKHUM等[10]采用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器對(duì)低聚甘油的組成進(jìn)行測(cè)定,所使用的硅烷化試劑為N-甲基-N-(三甲基硅烷基)三氟乙酰胺(MSTFA),十一酸甲酯作為內(nèi)標(biāo)物。色譜柱為DB-5ht毛細(xì)管柱(15 m×0.32 mm,0.10 μm)。甘油保留時(shí)間為6.791 min,十一酸甲酯保留時(shí)間為8.268 min,二聚甘油保留時(shí)間約為12 min,三聚甘油保留時(shí)間為16~17 min。

    2 國(guó)內(nèi)研究進(jìn)展

    國(guó)內(nèi)在低聚甘油氣相色譜檢測(cè)方法的研究上起步較晚,但隨著食品、日化和醫(yī)藥等領(lǐng)域?qū)Φ途鄹视彤a(chǎn)品的需求不斷增長(zhǎng),生產(chǎn)廠家在產(chǎn)品質(zhì)量控制及合成工藝改進(jìn)方面的要求不斷提高,使得低聚甘油氣相色譜檢測(cè)方法成為研究熱點(diǎn)。

    肖伊莎[11]用氣相色譜-氫火焰離子化檢測(cè)器分析經(jīng)過(guò)120 ℃和210 ℃下二級(jí)分子蒸餾分離純化的產(chǎn)物中低聚甘油的組成。色譜柱為ATTM-Wax毛細(xì)管柱(15 m×0.32 mm,0.25 μm),載氣:高純氮?dú)?,進(jìn)樣口溫度:280 ℃,分流比為20∶1,檢測(cè)器溫度:280 ℃,升溫程序:以60 ℃/min的速率由100 ℃升溫至165 ℃保持5 min,以60 ℃/min的速率升溫至230 ℃保持3 min,以10 ℃/min的速率升溫至240 ℃保持1 min,以10 ℃/min的速率升溫至250 ℃保持1 min,以10 ℃/min的速率升溫至260 ℃保持2 min;甘油、直鏈二聚甘油和直鏈三聚甘油,保留時(shí)間分別為2.495 min、9.822 min、11.229 min。

    王輝等[12]建立了氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法對(duì)藥用甘油中二聚甘油醚進(jìn)行定性、定量分析。色譜柱:Rxi-5ms(30.0 m×0.25 mm,0.25 μm),載氣為高純氦氣,恒流速1.23 mL/min;進(jìn)樣口溫度200 ℃,升溫程序:起始溫度為100 ℃,保持4 min,然后以50℃/min的速度升至120 ℃,保持10 min,接著以50℃/min的速度升至200 ℃,保持6 min;不分流模式進(jìn)樣。質(zhì)譜條件:離子源溫度為200 ℃,溶劑延遲時(shí)間3 min,EI電離源,掃描范圍:35~300 amu。直鏈和環(huán)狀二聚甘油的保留時(shí)間分別為18.430 min、18.685 min和18.830 min,其含量按面積歸一法進(jìn)行計(jì)算。

    《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品添加劑 聚甘油蓖麻醇酸酯(PGPR)》(GB 1886.95—2015)[13]中用氫氧化鉀乙醇溶液皂化樣品中的聚甘油酯類,經(jīng)萃取除去脂肪酸。將多元醇轉(zhuǎn)化為三甲硅烷基衍生物,用氣相色譜法測(cè)定聚甘油酯類中的多元醇。檢測(cè)器為火焰離子化檢測(cè)器,色譜柱填充物為載有3%二甲基硅氧烷(OV-1)的120~150 μm硅藻土載體(Diatomite CQ)或120~150 μm經(jīng)二甲基二氯硅氧烷處理的酸和堿醇洗的白色硅藻土載體(Gaschrom Q)。色譜柱尺寸為(1.5 m×4 mm),柱溫90~330 ℃,以4~6 ℃/min的速度程序升溫。進(jìn)樣溫度為275 ℃,檢測(cè)器溫度為350 ℃,氮?dú)饬髁繛?6 mL/min,進(jìn)樣體積為2.0 μL。出峰順序?yàn)椋焊视?、環(huán)狀雙甘油類、雙甘油類、環(huán)狀三甘油類、三甘油類。聚甘油(二聚、三聚和四聚)的質(zhì)量分?jǐn)?shù)通過(guò)對(duì)應(yīng)組分峰面積占所有組分峰面積來(lái)計(jì)算。

    3 結(jié)語(yǔ)

    綜上所述,關(guān)于低聚甘油氣相色譜檢測(cè)方法國(guó)內(nèi)外尚未得到統(tǒng)一,但可以得到以下幾點(diǎn)結(jié)論。

    (1)直鏈、支鏈和環(huán)狀二聚甘油的出峰順序既可以通過(guò)氣質(zhì)聯(lián)用進(jìn)行定性分析,也可以根據(jù)低聚甘油分子中伯羥基數(shù)量所決定(主要是由于在硅烷衍生化過(guò)程中伯羥基較仲羥基更容易發(fā)生反應(yīng))。由于三聚甘油的同分異構(gòu)體結(jié)構(gòu)更加復(fù)雜,使得對(duì)其分離更為困難。

    (2)大部分研究人員采用色譜柱為毛細(xì)管柱,檢測(cè)器為氫火焰離子化檢測(cè)器,程序升溫過(guò)程設(shè)置不同,造成出峰時(shí)間不同,三聚甘油保留時(shí)間從8.2 min到30.0 min不等。

    (3)低聚甘油氣相色譜的定量方法中既有采用峰面積歸一化法,也有采用內(nèi)標(biāo)法和外標(biāo)法。這主要是由于在制備二聚甘油、三聚甘油過(guò)程中的反應(yīng)不可控性,各種結(jié)構(gòu)低聚甘油的商業(yè)化標(biāo)準(zhǔn)品的缺乏,使得低聚甘油的定性和定量分析進(jìn)展緩慢。

    (4)通過(guò)有機(jī)合成方法、新型催化劑或分離技術(shù)制備特定結(jié)構(gòu)的低聚甘油標(biāo)準(zhǔn)品,以及采用多種分析手段相結(jié)合,將成為低聚甘油定性定量分析未來(lái)的研究方向。

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