周琴,呂國榮,,郭海欣,李靖云,張少波,陳永健
1.福建醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院超聲科,福建泉州362000;2.泉州醫(yī)學(xué)高等??茖W(xué)校臨床醫(yī)學(xué)院,福建泉州362000;3.晉江市安海醫(yī)院超聲科,福建泉州362000
剪切波彈性成像(Shear Wave Elastography,SWE)能實時定量檢測肝臟硬度,但目前利用SWE評估非酒精性脂肪性肝炎(Nonalcoholic Steatohepatitis,NASH)及其相關(guān)肝硬化的研究較少[1]。有研究表明非酒精性脂肪性肝?。∟onalcoholic Fatty Liver Disease,NAFLD)伴隨的多種生物分子改變可能會影響剪切波傳播[2],但有關(guān)SWE 與NAFLD 相關(guān)分子改變的相關(guān)性鮮有報道。因此,本實驗利用SWE 研究NAFLD大鼠肝臟硬度的改變并進一步明確影響剪切波在NAFLD 肝臟傳播的相關(guān)生物分子,旨在為臨床無創(chuàng)性評估NASH及肝硬化提供參考。
選取雄性SD 大鼠88 只,質(zhì)量250~270 g。隨機選擇40 只作為對照組,其余為實驗組。實驗組按喂養(yǎng)方式不同隨機分為6 個亞組,每個亞組8 只(圖1)。高脂飼料(High-Fat Diet, HFD):2%膽固醇+15%豬油+5%蛋黃粉+0.5%膽鹽+2%白糖+75.5%普通基礎(chǔ)顆粒飼料;動物和HFD 由上海斯萊克實驗動物有限責(zé)任公司提供;蛋氨酸/膽堿缺乏飼料(Methionine-Choline Deficient Diet,MCDD)由北京華阜康生物科技股份有限公司提供。其中,40%四氯化碳(CCl4)溶液(CCl4:橄欖油=2:3),劑量為1.5 mL/kg,每周兩次。
圖1 實驗動物分組及模型制備Fig.1 Experimental animals grouping and model preparation
采用法國聲科SuperSonic Imagine AixPlorer 型實時剪切波彈性成像超聲診斷儀,線陣探頭,頻率4~15 MHz。
(1)肝臟超聲檢查:分別于第1、2、3、8、12周末隨機抽取8只正常組大鼠,與預(yù)定喂養(yǎng)周期結(jié)束的實驗組大鼠進行檢測。檢查前所有實驗動物禁食12 h,禁水6 h。麻醉后肝區(qū)備皮,探頭輕置于大鼠腹部,先行常規(guī)超聲檢查并統(tǒng)一選取肝中葉啟用SWE 模式,盡量避開肝臟大血管、膽道和葉間裂的區(qū)域,于距離體表1.0 cm 處選擇感興趣區(qū)域(Region of Interest,ROI),ROI設(shè)定為直徑約2 mm 的圓形,開啟Q-BOX測量ROI的楊氏模量值,測量5次,取平均值,得到楊氏模量平均值Emean。
(2)病理學(xué)檢查及mRNA 檢測:超聲檢查完成后,解剖肝臟,取肝中葉(即SWE 檢查部位)固定于10%中性福爾馬林并包埋在石蠟中,切片行HE 染色、Masson 染色,光鏡下觀察肝臟組織學(xué)改變。另取一部分肝組織在液氮中快速凍存??俁NA的提取依照Trizol(Invitrogen)的說明書進行。反轉(zhuǎn)錄依照試劑盒說明書進行。大鼠b-actin 作為內(nèi)參照,設(shè)計引物(表1)。利用RT-PCR 技術(shù)對樣品進行檢測,讀取熒光值。使用2-ΔΔCT方法計算樣本目標(biāo)基因的相對含量。
表1 RT-PCR的引物信息Tab.1 Primer information for RT-PCR
參考Kleiner 等[3]的方法,根據(jù)NAFLD 活動性評分(NAFLD Activity Score,NAS)及纖維化等級,將最終病理結(jié)果分為正常組(NAS=0,纖維化F0),單純脂肪變性組(NAS=1~2,纖維化F0),邊界組(NAS=3~4,纖維化F0),NASH 組(NAS≥5, 纖維化F0~F3),肝硬化組(纖維化F4)。
使用SPSS23.0 統(tǒng)計學(xué)軟件包對數(shù)據(jù)進行分析,計量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。多組均數(shù)比較采用單因素方差分析,相關(guān)分析采用Spearman 相關(guān)分析法。應(yīng)用多元線性回歸模型對多種影響因素進行顯著性分析。以病理分級為金標(biāo)準(zhǔn),利用接受者操作特征(Receiver Operating Characteristic, ROC)曲線建立NASH 及肝硬化的楊氏模量界值。P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
對照組切片顯示所有大鼠肝臟均未發(fā)生病變;HFD-1W組中2只可納入正常組,4只納入單純脂肪變性組,2只納入邊界組;MCDD-2W組中單純脂肪變性組和邊界組各1只,余6只納入NASH組;HFD-3W組中2只納入邊界組,6只納入NASH組;MCDD-8W組和MCDD-12W組的所有大鼠均納入NASH組;MCDD-12W/CCl4組中2只評為NASH,6只具有肝硬化改變。
光鏡下正常組的肝小葉結(jié)構(gòu)完整,肝細(xì)胞以中央靜脈為中心,呈放射狀排列,門管區(qū)未見炎性細(xì)胞浸潤,肝細(xì)胞內(nèi)無明顯脂肪空泡,未見纖維間隔形成。隨著病程進展,實驗組逐漸出現(xiàn)不同程度的肝細(xì)胞腫脹,胞漿內(nèi)可見大小不等的脂肪空泡,部分肝細(xì)胞呈氣球樣變,小葉內(nèi)可見炎癥、壞死;嚴(yán)重者為肝索排列紊亂,肝竇間隙變窄,纖維間隔形成,可見假小葉形成(圖2)。
所有大鼠肝臟Emean與NAFLD 嚴(yán)重程度呈顯著正相關(guān)(r=0.838,P<0.001)。NAFLD 不同病理分組間的Emean差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=113.58,P<0.001)。NASH 組和肝硬化組Emean顯著高于正常組、單純性脂肪變性和臨界組(P<0.001)。肝硬化組的Emean顯著高于NASH 組(P<0.001)。在正常組、單純性脂肪變性組和臨界組之間,Emean沒有顯著差異(P>0.05)。SWE測量見表2和圖2。
圖2 實驗組大鼠肝臟病理表現(xiàn)及SWE測量Fig.2 Pathological manifestations and SWE measurement of rat liver in experimental groups
MCP-1(r=0.678,P<0.001)、TNF- α(r=0.340,P=0.001)、I型膠原(r=0.402,P<0.001)、α-SMA(r=0.561,P<0.001)均與Emean呈正相關(guān);且多元線性回歸分析顯示,MCP-1(B=0.560,P<0.001)和I型膠原(B=0.429,P<0.001)與Emean呈獨立相關(guān)。不同病理分組的Emean和mRNA表達水平見表2。
表2 不同病理分組的Emean和mRNA表達Tab.2 Emean and mRNA expression in different pathological groups
SWE 診斷NASH、肝硬化的截值分別為6.0 kPa、9.7 kPa,曲線下面積分別為0.95、0.98,敏感性分別為88.9%、86.5%,特異性分別為100%、92.7%,見圖3。
圖3 SWE對大鼠NASH和肝硬化的診斷效能Fig.3 Diagnostic efficacy of SWE in NASH and liver cirrhosis
NAFLD 的發(fā)病率逐年升高,已成為全球最常見的慢性肝?。?]。其疾病譜包括單純性脂肪變性、NASH、肝纖維化和肝硬化[5]。其中,NASH與肝纖維化密切相關(guān),它是肝硬化和肝癌的顯著危險因素,在NASH相關(guān)的肝硬化患者中,肝癌的發(fā)病率至少為每年1%~2%[6]。目前,肝穿刺活檢仍是確診NASH 及肝硬化的金標(biāo)準(zhǔn)[7],但其有創(chuàng)性和潛在的并發(fā)癥限制了其在臨床中的應(yīng)用[8]。因此,尋找能夠早期、無創(chuàng)識別NASH及肝硬化的非侵入性檢測手段尤為重要。
超聲彈性成像技術(shù)是一種可對組織硬度進行檢測和評估的新型超聲診斷技術(shù)[9]。其中,SWE是目前最新應(yīng)用于臨床的一種彈性成像技術(shù)。其原理是通過發(fā)射高速聚焦的聲輻射力脈沖在縱向不同深度上連續(xù)聚焦,使不同深度的組織幾乎同時產(chǎn)生橫向位移,通過“馬赫錐”原理,在聚焦部位而產(chǎn)生剪切波,隨后應(yīng)用顏色編碼技術(shù)實時顯示組織彈性圖[10]。本研究通過檢測實驗動物的Emean得出肝臟Emean,提示診斷NASH的最佳臨界點,即當(dāng)Emean≥6.0 kPa時,必須高度警惕NASH的可能性。Kang等[11]將NASH的Emean截值定為5.9 kPa,本實驗結(jié)果與之相近。此外,本實驗認(rèn)為,肝硬化的最佳截值可定為9.7 kPa,該結(jié)果與Deffieux等[12]提出的截值接近。
國內(nèi)外有眾多研究報道了SWE在評估慢性肝炎患者肝纖維化方面的高診斷性能[13-15],但對評估NAFLD方面尚未得到充分驗證,且NAFLD脂肪變性程度對肝臟硬度是否產(chǎn)生影響仍存在爭議。Petta等[16]研究結(jié)果提示脂肪變性程度是肝臟硬度增高的獨立預(yù)測因子(P=0.03);Guo等[17]認(rèn)為在不同嚴(yán)重程度的脂肪變性間肝臟硬度并未觀察到明顯的差異,即脂肪變性不影響肝臟硬度值;Rifai等[18]研究發(fā)現(xiàn)肝臟硬度與肝纖維化分級(P<0.001)和炎癥活性(P<0.05)相關(guān),但肝臟脂肪變性對肝臟硬度的影響沒有統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。本研究在對NAFLD大鼠肝臟病理改變進行分析時發(fā)現(xiàn),NASH組和肝硬化組的肝臟硬度顯著高于正常、單純性脂肪變性和臨界組(P<0.001),肝硬化組的肝臟硬度也顯著高于NASH組(P<0.001),而正常組、單純性脂肪變性組和臨界組之間,肝臟硬度沒有顯著差異(P>0.05)。由此推測,肝臟硬度可能與纖維化程度相關(guān),而與脂肪變性無關(guān)。NAFLD初期,肝臟還未出現(xiàn)纖維化,肝臟硬度未發(fā)生明顯變化,隨著NAFLD發(fā)展,纖維化程度逐漸加重,肝臟硬度和病變程度呈正相關(guān)。
NAFLD 伴隨著許多生物分子變化,包括促炎和纖維化細(xì)胞因子的激活。據(jù)報道,MCP-1、TNF-α、I型膠原、α-SMA 的mRNA水平與NAFLD 的發(fā)病機制密切相關(guān)[19]。這些改變可能會影響超聲波和剪切波傳播,但對其影響較大的分子生物學(xué)指標(biāo)是哪些仍未知[20]。本研究發(fā)現(xiàn),雖然MCP-1、TNF-α、I型膠原和α-SMA 這4 種mRNA 的表達均與NAFLD 嚴(yán)重程度呈正相關(guān),但MCP-1 和I型膠原的mRNA 表達與Emean呈獨立相關(guān)(P<0.001)。MCP-1可趨化巨噬細(xì)胞進而引起肝臟炎癥浸潤,并激活肝星狀細(xì)胞導(dǎo)致I型膠原大量堆積,炎癥反應(yīng)和I型膠原沉積都促進了肝纖維化的發(fā)生發(fā)展[21]。由此推測,MCP-1 和I型膠原可能通過誘導(dǎo)肝纖維化進展從而影響剪切波傳播。