王菲菲,袁風(fēng)嬌,楊玉嬌,路 岳,李 軍,賈殿隆,柳仁民
(1. 聊城大學(xué) 藥學(xué)院,山東 聊城 252059;2. 聊城市人民醫(yī)院 轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)研究聯(lián)合實驗室,山東,聊城,252000)
特異性誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡是一種關(guān)鍵的抗癌策略[1]。腫瘤壞死因子相關(guān)凋亡誘導(dǎo)配體(Tumor necrosis factor related apoptosis-inducing ligand,TRAIL)是腫瘤壞死因子超家族成員之一[2],其胞外段經(jīng)蛋白酶水解形成可溶型TRAIL(sTRAIL)。它可通過激活腫瘤細(xì)胞表面高表達(dá)的死亡受體(DRs) 4 和 5,啟動Caspase信號途徑,選擇性地誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡[3]。而對多數(shù)正常細(xì)胞則表現(xiàn)出無毒或低毒性,具有良好的腫瘤細(xì)胞殺傷選擇性[4]。因此,TRAIL一經(jīng)發(fā)現(xiàn)就被認(rèn)為是極具潛力的抗癌藥物[5, 6]。
可溶型TRAIL的活性狀態(tài)為非共價連接的三聚體形式,穩(wěn)定性欠佳。并且,TRAIL作為小分子蛋白藥物,進(jìn)入血液后可被腎小球的濾過作用快速清除[7],造成其血漿半衰期極短(小鼠3-5 min,靈長類30-60 min),生物利用度較低,嚴(yán)重限制了其體內(nèi)抗腫瘤療效,這是導(dǎo)致其臨床試驗失敗的一個重要原因[8]。對TRAIL蛋白進(jìn)行修飾改造以延長其血漿半衰期已成為近些年的研究熱點。如韋小越等[9]用PEG修飾可顯著延長TRAIL血漿半衰期并提高其穩(wěn)定性;羅嵐等[10]將抗體Fc結(jié)構(gòu)域與TRAIL融合表達(dá)形成TRAIL-Fc融合蛋白,其體內(nèi)半衰期得到大幅提升;Lim[11]等利用肝素和聚賴氨酸將TRAIL制成納米制劑可明顯改善其體內(nèi)代謝。
脂質(zhì)體(Liposome, LS)是一種常見的藥物載體,其制備簡單且經(jīng)濟(jì),具有良好的功能化和修飾潛力[12, 13],小分子藥物經(jīng)脂質(zhì)體修飾遞送可有效改善體內(nèi)代謝性質(zhì)。納米級的脂質(zhì)體還可通過增強(qiáng)滲透性和滯留(EPR)效應(yīng)在腫瘤微環(huán)境中富集[14]。亦有相關(guān)文獻(xiàn)報道利用脂質(zhì)體對TRAIL進(jìn)行修飾改造。如范麗[15]采用薄膜水化法將TRAIL包裹于脂質(zhì)體內(nèi)部以改善其體內(nèi)代謝,但TRAIL被脂質(zhì)體包裹后可能限制其與死亡受體的結(jié)合,造成殺傷活性下降;Seifert等[16]利用雙官能團(tuán)的PEG將TRAIL共價連接到脂質(zhì)體表面,有效延長了其血漿半衰期,但此方法工藝相對復(fù)雜;Miguel等[17]將DOGS-NTA-Ni脂材摻入脂質(zhì)體得到鎳螯合脂質(zhì)體(LS-Ni),再將帶6His標(biāo)簽的TRAIL與LS-Ni進(jìn)行混合孵育,可使其親和吸附于脂質(zhì)體表面。此方法工藝簡單穩(wěn)定,是一種理想的TRAIL修飾遞送策略。他們對此方法制備的脂質(zhì)體TRAIL進(jìn)行體內(nèi)外抗腫瘤活性研究,但并未探討此修飾方法對TRAIL穩(wěn)定性及血漿半衰期的影響。本研究,采用乙醇注入法制備鎳螯合脂質(zhì)體,再將其與TRAIL孵育得到TRAIL脂質(zhì)體(LS-Ni-T),重點研究了鎳螯合脂質(zhì)體修飾TRAIL后,對TRAIL蛋白體外穩(wěn)定性及體內(nèi)血漿半衰期的影響。
TRAIL的制備參照先前的方法[18]。Cell Counting Kit-8(CCK8) 試劑盒購自美國MedChem Express (MCE)公司;DMEM培養(yǎng)基、RPMI-1640培養(yǎng)基、胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自美國Thermo Fisher Scientific(GIBCO)公司;氫化大豆卵磷脂(HSPC)、二硬脂?;字R掖及?聚乙二醇(DSPE-mPEG2000)購自西安瑞禧公司;膽固醇(CHOL)購自Sigma公司;1,2-二油?;?甘油-3[(N-(5-氨基-1-羧基戊基)-亞氨基二乙酸)琥珀?;鵠(DOGS-NTA-Ni)購自美國Avanti Polar Lipids公司;聚碳酸酯膜購自Whatman公司。ZETASIZER 分析儀是由英國Malvern公司制造;脂質(zhì)體擠出器LF-1由美國Avanti公司制造;XP6百萬分之一超微量天平為德國梅特勒-托利多公司制造;Synergy H1酶標(biāo)儀為美國BioTek公司生產(chǎn)。
1.2.1 鎳螯合脂質(zhì)體(LS-Ni)以及空白脂質(zhì)體(LS)的制備。鎳螯合脂質(zhì)體所使用的脂材及比例如下:HSPC:CHOL:DSPE-mPEG2000:DOGS-NTA-Ni=8:1:0.5:0.5,W/W。按照以上比例分別精確稱取各組分于1.5 mL EP管,加入適量的無水乙醇,65 ℃水浴條件下使脂材全部溶解,渦旋均勻形成油相;取3 mL PBS(pH 7.4)于5 mL離心管中,65 ℃水浴預(yù)熱,磁力攪拌使PBS形成漩渦,即為水相。用注射器將油相快速注入預(yù)熱的水相中,在65 ℃下溫和攪拌孵育30 min,形成脂質(zhì)體,濃度為10 mg/mL。將脂質(zhì)體轉(zhuǎn)入孔徑為100 kua的透析袋中,用PBS(pH 7.4)透析兩次,每次三個小時,完全除去乙醇。再將其裝入脂質(zhì)體擠出器,依次通過孔徑為200 nm及100 nm的聚碳酸酯膜,分別擠出21次,獲得粒徑均一的鎳螯合脂質(zhì)體(LS-Ni)。普通脂質(zhì)體(LS)制備時不加入DOGS-NTA-Ni,其制備方法及比例與上述方法相同。
1.2.2 LS-Ni-T的制備。取適量PBS(pH 7.4)透析后的TRAIL蛋白與LS-Ni在室溫孵育30 min(TRAIL:DOGS-NTA-Ni=2:1,W/W),期間用移液器溫和混勻三至四次,形成LS-Ni-T溶液。LS/T的制備按照上述投料量將TRAIL與LS混合得到。
1.2.3 LS-Ni-T的表征。將新制備的TRAIL / LS-Ni / LS-Ni-T以及不同儲存時間的LS-Ni-T,用PBS按照體積比為1∶100的比例稀釋,采用英國Malvern公司的ZETASIZER分析儀測定粒徑和Zeta電位,每份樣品重復(fù)3次。
1.2.4 SDS-PAGE檢測LS-Ni對TRAIL的親和吸附效果。通過高速離心檢測鎳螯合脂質(zhì)體親和吸附TRAIL的效果。取30 μL LS-Ni-T,21000 g離心10 min,分別收集上清液和沉淀,沉淀用15 μL電泳上樣緩沖液重懸。用不含DOGS-NTA-Ni的普通脂質(zhì)體與TRAIL混合所得的LS/T作為對照組。采用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)對它們進(jìn)行電泳檢測。
1.2.5 細(xì)胞培養(yǎng)。人表皮鱗狀癌細(xì)胞株(A431)、人非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞株(A549)、人源胚胎腎細(xì)胞(293T)用DMEM+10% FBS培養(yǎng)基,人結(jié)腸癌細(xì)胞株(Colo205)用RPMI-1640+10% FBS培養(yǎng)基,在37 ℃、5% CO2(相對濕度90%)培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每2-3 d更換一次培養(yǎng)基。取對數(shù)生長期的細(xì)胞接種于培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中,生長至80%-90%密度時傳代或鋪板,進(jìn)行后續(xù)細(xì)胞實驗。
1.2.6 細(xì)胞毒性分析。采用CCK8試劑盒檢測LS-Ni-T對腫瘤細(xì)胞及正常細(xì)胞的殺傷作用。收集對數(shù)生長期的細(xì)胞以1×104個/孔的密度接種于96孔培養(yǎng)板,培養(yǎng)24 h。丟棄舊的培養(yǎng)基,分別加入培養(yǎng)基稀釋的藥物(TRAIL或LS-Ni-T,每孔100 μL),每個樣品平行三個復(fù)孔,空白對照組僅給予培養(yǎng)基。各組細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)24 h。每孔加入10 μL CCK8試劑, 繼續(xù)培養(yǎng)1-4 h,至部分樣品孔呈現(xiàn)暗黃色。用SYNERGY H1酶標(biāo)儀在450 nm處讀取吸光光度值(OD)。計算相對細(xì)胞存活率x(%)=[(OD給藥組-OD空白組)/(OD未給藥組-OD空白組)]×100%。
1.2.7 LS-Ni-T穩(wěn)定性考察。將LS-Ni-T和TRAIL分別用PBS稀釋至100 nM,生理條件(37 ℃)下孵育一定時間(0、4、12、24和48 h),用含10% FBS的培養(yǎng)基再將蛋白稀釋至10 nM,加入提前接好Colo205細(xì)胞的96孔培養(yǎng)板中,37 ℃孵育24 h,用CCK8試劑盒檢測細(xì)胞存活率。將制備好的LS-Ni-T和TRAIL分別置于無菌1.5 mL EP管中,密閉,于儲存條件(4 ℃)分別放置0、5、10、15和20 d,測定儲存后TRAIL/LS-Ni-T的殺傷活性,并與初始值比較,評價穩(wěn)定性。
1.2.8 藥代動力學(xué)分析。通過檢測給藥后血漿對Colo205細(xì)胞的殺傷活性隨時間的變化趨勢,評估鎳螯合脂質(zhì)體親和吸附TRAIL后,對TRAIL蛋白的血漿半衰期的影響。將6周齡的昆明小鼠分為三組(每組3只),尾靜脈分別注射TRAIL、LS-Ni-T和LS/T(各組TRAIL換算劑量均為3 mg/kg),分別在藥物注射10 min、0.5、1、2、4和8 h后,通過眼球取血,用乙二胺四乙酸二鈉(EDTA-2Na)抗凝,4000 g離心4 min,得到小鼠血漿。將血漿稀釋10、25、50、100和250倍,測試其對Colo205細(xì)胞的殺傷活性,來反映TRAIL、LS-Ni-T及LS/T在血漿中的存留情況。
1.2.9 統(tǒng)計學(xué)處理。實驗所得數(shù)據(jù)均以平均值(Mean ± SD)表示,各組數(shù)據(jù)差異性比較采用t-test(非參數(shù)檢驗)方法進(jìn)行分析。結(jié)果用平均數(shù)的平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤差(SEM)表示。
如“1.2.1 鎳螯合脂質(zhì)體(LS-Ni)以及空白脂質(zhì)體(LS)的制備”所述,制備鎳螯合及空白脂質(zhì)體。LS-Ni與TRAIL室溫孵育30 min,得到鎳螯合脂質(zhì)體修飾的TRAIL,即LS-Ni-T,結(jié)構(gòu)如圖1(a)所示。其制備過程如圖1(b)所示。
圖1 TRAIL脂質(zhì)體的結(jié)構(gòu)與構(gòu)建示意圖
注:TRAIL、LS-Ni和LS-Ni-T與PBS溶液按照1∶100的比例稀釋,用ZETASIZER Nano Series進(jìn)行檢測。圖2 TRAIL、LS-Ni、LS-Ni-T的粒徑檢測
圖2為TRAIL蛋白的粒徑分布圖。由檢測結(jié)果可知,TRAIL蛋白的平均粒徑為8.15 ± 0.25 nm,LS-Ni的平均粒徑為119.23 ± 0.73 nm,LS-Ni-T的平均粒徑為127.33 ± 0.87 nm。相關(guān)數(shù)據(jù)見表1,LS-Ni-T粒徑相比LS-Ni增大約8 nm,提示TRAIL通過鎳螯合劑親和吸附在脂質(zhì)體表面,從而使其粒徑增加。TRAIL、LS-Ni以及LS-Ni-T的多分散指數(shù)(PDI)均小于0.2,表明TRAIL、LS-Ni以及LS-Ni-T是高度均勻分布的,其Zeta電位分別為-5.34 ± 0.659 mV、-1.20 ± 0.130 mV、-6.95 ± 0.870 mV。
表1 TRAIL, LS-Ni 和 LS-Ni-T的表征分析
注:泳道1:LS-Ni-T離心上清液;泳道2:LS-Ni-T離心沉淀;泳道3:未離心LS-Ni-T;泳道4:LS/T離心上清液;泳道5:LS/T離心沉淀;泳道6:未離心LS/T。圖3 SDS-PAGE檢測LS-Ni親和吸附TRAIL的效率
高速離心可將部分脂質(zhì)體沉降,而TRAIL作為小分子蛋白在同等離心力下不能沉降,但當(dāng)它與LS-Ni親和后,則在理論上可被離心沉降下來。據(jù)此來檢測LS-Ni-T中TRAIL被脂質(zhì)體親和吸附效果。如圖3所示,高速離心后,LS-Ni-T離心上清(泳道1)中TRAIL蛋白量明顯比LS/T上清(泳道4)中的少;而LS-Ni-T離心沉淀(泳道2)中TRAIL蛋白量顯著多于LS/T沉淀中(泳道5)TRAIL的量。這表明在LS-Ni-T中,TRAIL可高效親和吸附在脂質(zhì)體上,而被大量離心沉淀下來。
選用腫瘤細(xì)胞Colo205、A549、A431和正常細(xì)胞293T,研究TRAIL經(jīng)鎳螯合脂質(zhì)體修飾后殺傷活性的變化。將TRAIL及LS-Ni-T用完全培養(yǎng)基稀釋不同倍數(shù),分別加入Colo205、A549、A431及293T細(xì)胞中,通過細(xì)胞存活率來反應(yīng)鎳螯合脂質(zhì)體修飾對TRAIL殺傷活性的影響,結(jié)果見圖4。由圖4可見,腫瘤細(xì)胞存活率隨著藥物濃度的增加而降低,呈現(xiàn)明顯的濃度依賴性。LS-Ni-T與TRAIL的細(xì)胞殺傷曲線幾乎重合,二者對這三種腫瘤細(xì)胞的殺傷活性無顯著差異(圖4 (a,b,c))。正常細(xì)胞293T,LS-Ni-T與TRAIL在0-100 nM濃度范圍均不產(chǎn)生明顯的殺傷作用,二者的殺傷曲線同樣高度重合(圖4(d))。這些結(jié)果表明,鎳螯合脂質(zhì)體修飾TRAIL不影響其對腫瘤細(xì)胞的殺傷活性及對正常細(xì)胞的毒性。
注:(a) TRAIL和LS-Ni-T對Colo205細(xì)胞的殺傷曲線;(b) TRAIL/LS-Ni-T對A549細(xì)胞的殺傷曲線;(b) TRAIL/LS-Ni-T對A431細(xì)胞的殺傷曲線;(d) TRAIL/LS-Ni-T對293T細(xì)胞的殺傷曲線。圖4 殺傷活性分析
將LS-Ni-T于4 ℃儲存放置,在0、5、10、15和20 d分別取樣,用粒度儀測定其平均粒徑,多分散指數(shù)和Zeta電位。如表2所示,其平均粒徑和Zeta電位各時間內(nèi)變化不大,無統(tǒng)計學(xué)差異,但儲存后的多分散指數(shù)(PDI)相比于第0 d有一定的增長。由此可知LS-Ni-T在4 ℃儲存條件下平均粒徑與表面Zeta電位保持穩(wěn)定,但粒徑均一性有所下降。
表2 LS-Ni-T在4 ℃ 儲存后的表征分析
作為多聚體蛋白,TRAIL穩(wěn)定性欠佳,其殺傷活性在溶液中會逐漸下降。本研究中進(jìn)一步測試了鎳螯合脂質(zhì)體修飾對TRAIL穩(wěn)定性的影響。將LS-Ni-T和TRAIL在生理條件(37 ℃)孵育0、4、12、24和48 h,或在4 ℃儲存0、5、10、15和20 d,分別檢測其對Colo205細(xì)胞的殺傷活性,以此來反映二者的穩(wěn)定性。如圖5 (a)所示,在37 ℃條件下,TRAIL蛋白的殺傷活性隨孵育時間的延長快速下降,孵育48 h后,1 nM濃度下其對Colo205細(xì)胞的殺傷效率不足20%,而LS-Ni-T的殺傷活性幾乎沒有變化。如圖5(b)和5(c)所示,TRAIL在4 ℃條件下儲存,殺傷活性逐漸下降,其在放置10、15和20 d后的殺傷活性較新制備的TRAIL顯著降低,而LS-Ni-T在4 ℃儲存5、10、15和20 d后,其殺傷活性與新制備的LS-Ni-T無顯著性差異。以上結(jié)果表明,無論是在37 ℃孵育還是在4 ℃儲存,游離的TRAIL蛋白穩(wěn)定性不佳,但鎳螯合脂質(zhì)體親和吸附TRAIL后,會對其活性產(chǎn)生保護(hù)作用,增強(qiáng)其穩(wěn)定性。
注:(a) TRAIL和LS-Ni-T在37℃孵育0、4、12、24和48 h,檢測它們對Colo205的殺傷活性;(b) TRAIL在4 ℃儲存0、5、10、15和20 d,檢測其殺傷活性;(c) LS-Ni-T在4 ℃儲存0、5、10、15和20 d,檢測其殺傷活性。圖5 LS-Ni-T穩(wěn)定性分析
注:(a) 游離TRAIL的體內(nèi)半衰期;(b) LS/T的體內(nèi)半衰期;(c) LS-Ni-T的體內(nèi)半衰期。圖6 藥代動力學(xué)實驗
鎳螯合脂質(zhì)體親和吸附TRAIL后,理論上可避免其在血漿中被腎小球的濾過作用快速清除,從而延長TRAIL蛋白的血漿半衰期,在本研究中對此進(jìn)行了驗證。將6周齡的昆明小鼠分為三組,每組三只,分別尾靜脈注射3 mg/kg的TRAIL、 LS/T和 LS-Ni-T,在0.25、0.5、1、2、4和8 h眼球取血,EDTA-2Na抗凝,離心得小鼠血漿。將血漿稀釋不同倍數(shù),用Colo205細(xì)胞檢測其殺傷活性并繪制活性變化曲線,以此來反映TRAIL、LS/T和 LS-Ni-T在血漿中的代謝情況。如圖6所示,TRAIL和LS/T組體內(nèi)代謝1 h后,其血漿稀釋50倍已檢測不出對細(xì)胞的殺傷作用(圖6 (a)、(b)),而LS-Ni-T組代謝8 h后的血漿稀釋50倍仍能殺傷近一半的細(xì)胞(圖6(c))。進(jìn)一步比較各組血漿稀釋10、25、100和250倍的殺傷曲線,LS/T組相比TRAIL組殺傷活性無顯著性差異,而LS-Ni-T組活性下降明顯比TRAIL及LS/T組延緩。以上數(shù)據(jù)表明,鎳螯合脂質(zhì)體親和吸附TRAIL形成LS-Ni-T后,可顯著延長TRAIL的體內(nèi)血漿半衰期。
鎳螯合脂質(zhì)體修飾是一種簡單有效的TRAIL遞送策略。本研究,利用DOGS-NTA-Ni脂材制備了含鎳螯合劑的脂質(zhì)體LS-Ni,再將其與含6His標(biāo)簽的TRAIL進(jìn)行孵育,使TRAIL親和吸附到脂質(zhì)體表面,得到LS-Ni-T。研究結(jié)果表明,TRAIL可有效吸附到LS-Ni上,其修飾并不改變TRAIL對腫瘤細(xì)胞的殺傷活性,但可顯著提高TRAIL在4 ℃儲存條件和37 ℃生理條件下的穩(wěn)定性。更為重要的是,本研究證實鎳螯合脂質(zhì)體修飾可顯著延長TRAIL的體內(nèi)半衰期,將為后續(xù)這類藥物的開發(fā)提供有價值的參考。