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    不同來(lái)源乳酸菌核苷降解能力研究

    2021-06-27 01:46:50王垚李文靜魯茂林張臣臣馬文龍顧瑞霞
    中國(guó)乳品工業(yè) 2021年5期
    關(guān)鍵詞:鳥(niǎo)苷鳥(niǎo)嘌呤次黃嘌呤

    王垚,李文靜,魯茂林,張臣臣,馬文龍,顧瑞霞

    (揚(yáng)州大學(xué)江蘇乳品生物技術(shù)與安全控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇揚(yáng)州 225127)

    0 引 言

    體內(nèi)核苷代謝紊亂導(dǎo)致尿酸產(chǎn)生過(guò)多或尿酸排泄減少時(shí),容易引發(fā)高尿酸血癥(Hyperuricemia,HUA),嚴(yán)重影響人們健康和生活質(zhì)量[1-3]。通過(guò)嚴(yán)格的飲食控制,減少富含核苷類(lèi)食物的攝入,是治療高尿酸血癥的一種方法;也可以通過(guò)別嘌呤醇或非布索坦等西藥,抑制尿酸合成途徑中關(guān)鍵酶黃嘌呤氧化酶的活性,達(dá)到降尿酸的目的。但是由于嚴(yán)格的飲食控制,降低患者生活質(zhì)量,難以長(zhǎng)期堅(jiān)持,不能達(dá)到預(yù)期的效果[4-5];別嘌呤醇等西藥雖然療效好,但存在較大的副作用,在臨床治療上的應(yīng)用受到一定限制;因此,探索安全、有效的降尿酸方案十分必要[6]。

    乳酸菌作為腸道固有有益菌群,在食品、保健品和藥品等領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用,乳酸菌能夠水解、吸收食物中的核苷類(lèi)物質(zhì),調(diào)節(jié)腸道菌群,從而減少尿酸的合成,在治療高尿酸血癥上具有藥物治療無(wú)可比擬的優(yōu)點(diǎn)[7-9]。近年來(lái)國(guó)內(nèi)外對(duì)益生乳酸菌在輔助治療HUA方面的研究越來(lái)越多,如日本明治乳業(yè)株式會(huì)社的研究表明,格氏乳桿菌PA-3能夠胞外降解核苷,吸收核苷進(jìn)入胞內(nèi),降低腸道對(duì)核苷類(lèi)物質(zhì)的吸收,達(dá)到降低血尿酸的效果[10-12]。但縱觀目前國(guó)內(nèi)關(guān)于降尿酸乳酸菌的研究發(fā)現(xiàn),國(guó)內(nèi)研究與日本等國(guó)差距較大,獲得高效降解能力菌株也十分有限,產(chǎn)業(yè)化更是空白,因此加大對(duì)具備降尿酸功能乳酸菌的研究,具有較大應(yīng)用價(jià)值。發(fā)酵食品和人體腸道是常見(jiàn)乳酸菌的兩種主要來(lái)源,發(fā)酵食品源乳酸菌種類(lèi)豐富,人源乳酸菌安全性相對(duì)較高,是當(dāng)今乳酸菌主要的研究方向和重點(diǎn)。由于嬰兒與老人攝入的食物結(jié)構(gòu)存在較大差異,其體內(nèi)的人源乳酸菌的種屬和功能特性也有區(qū)別。因此本研究從核苷降解率和核苷降解速率兩個(gè)方面,考察了健康嬰兒腸道、健康長(zhǎng)壽老人腸道和傳統(tǒng)發(fā)酵食品三種不同來(lái)源的共172株乳酸菌的核苷降解能力,并對(duì)其核苷降解能力之間的差異進(jìn)行分析,以期為后續(xù)篩選出核苷降解能力強(qiáng)、具備緩解高尿酸血癥的益生乳酸菌提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    1.1.1 實(shí)驗(yàn)菌株

    本研究所用到的172株乳酸菌均由江蘇省乳品生物技術(shù)與安全控制實(shí)驗(yàn)室分離保藏,包含健康嬰兒腸道來(lái)源的乳酸菌73株,健康長(zhǎng)壽老人腸道來(lái)源的乳酸菌25株,泡菜、辣白菜、腌蘿卜和乳扇等傳統(tǒng)發(fā)酵食品來(lái)源的乳酸菌74株。

    1.1.2 主要試劑

    鳥(niǎo)苷、肌苷、鳥(niǎo)嘌呤、黃嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤氧化酶均購(gòu)自Sigma-Aldrich中國(guó)貿(mào)易有限公司。實(shí)驗(yàn)中用到的其他有機(jī)試劑、無(wú)機(jī)試劑購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)。

    1.1.3 主要儀器

    PL2002(1/100)分析天平,Mettler Toledo;JF-SX-500全自動(dòng)滅菌鍋,TIMY;Millipore Direct 8超純水儀,Millipore;ZHJH-C1209B超凈工作臺(tái),蘇州凈化設(shè)備;SPX-150BS-Ⅱ生化培養(yǎng)箱,上海新苗醫(yī)療器械;5804R高速冷凍離心機(jī),Eppendorf;1260 Infinity高效液相色譜儀,Agilent。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 溶液配制

    鳥(niǎo)苷-肌苷-黃嘌呤-次黃嘌呤(Guanosine-Inosine-Xanthine-Hypoxanthine,GS-IS-X-HX)標(biāo)準(zhǔn)品溶液:準(zhǔn)確稱取0.025 g鳥(niǎo)苷、肌苷、黃嘌呤、次黃嘌呤,用20 mmol/L的KH2PO4溶液(pH 7.0)定容至50 mL,配制成GS-IS-X-HX母液,梯度稀釋得濃度分別為0.5、0.2、0.05、0.02、0.005、0.002 g/L的混合標(biāo)準(zhǔn)品溶液。

    鳥(niǎo)嘌呤(Guanine)標(biāo)準(zhǔn)品溶液:由于常溫下0.025 g鳥(niǎo)嘌呤在50 mL的KH2PO4溶液(pH 7.0)中無(wú)法完全溶解,故配制鳥(niǎo)嘌呤標(biāo)準(zhǔn)品溶液時(shí),稱取0.0125 g鳥(niǎo)嘌呤,用20 mmol/L的KH2PO4溶液(pH 7.0)定容至50 mL,配制成鳥(niǎo)嘌呤母液,梯度稀釋得濃度分別為0.25、0.1、0.025、0.01、0.0025、0.001 g/L的鳥(niǎo)嘌呤標(biāo)準(zhǔn)品溶液。

    鳥(niǎo)苷-肌苷(Guanosine-Inosine,GS-IS)緩沖液:準(zhǔn)確稱取鳥(niǎo)苷0.02 g、肌苷0.02 g,用20 mmol/L KH2PO4溶液(pH 7.0)定容至100 mL并調(diào)節(jié)pH至7.0,最終緩沖液中鳥(niǎo)苷濃度為0.2 g/L(0.706 mmol/L),肌苷濃度為0.2 g/L(0.746 mmol/L)。

    反應(yīng)終止劑:0.1 mol/L高氯酸溶液,取571μL HClO4(70%),用超純水定容至100 mL。

    1.2.2 菌株活化

    將待試菌株在平板上劃線分離單菌落,挑單菌落接種至5 mL液體MRS培養(yǎng)基,37℃靜置培養(yǎng)24 h,作為活化一代菌株;再將一代菌株以4%接種量轉(zhuǎn)接至5 mL液體MRS培養(yǎng)基中,37℃靜置培養(yǎng)24 h,作為活化二代菌株,取活化二代菌株用于后續(xù)試驗(yàn)。

    1.2.3 核苷和嘌呤測(cè)定方法優(yōu)化

    鳥(niǎo)苷、肌苷、鳥(niǎo)嘌呤、黃嘌呤和次黃嘌呤的含量采用高效液相色譜(High Performance Liquid Chromatograph,HPLC)法檢測(cè),并對(duì)檢測(cè)方法進(jìn)行優(yōu)化[10];通過(guò)外標(biāo)法確定標(biāo)準(zhǔn)品的保留時(shí)間,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。所用液相色譜儀為Agilent 1260,流動(dòng)相為等梯度20 mmol/L磷酸二氫鉀溶液(pH 3.0),流動(dòng)相優(yōu)化的過(guò)程中分別添加了1%、3%、5%和10%的甲醇,流速為1 mL/min,柱溫25°C,次黃嘌呤、黃嘌呤、肌苷、鳥(niǎo)苷的檢測(cè)波長(zhǎng)為254 nm,腺嘌呤為263 nm,鳥(niǎo)嘌呤為273 nm,色譜柱優(yōu)化過(guò)程中選擇了ZORBAX SB-C18、Dubhe-C18和Chrom Core Polar C18。

    1.2.4 核苷降解率的測(cè)定

    采用磷酸鹽緩沖液體系評(píng)價(jià)不同乳酸菌對(duì)鳥(niǎo)苷和肌苷的降解率[13]。取適量活化二代菌培養(yǎng)液,室溫4 500 r/min離心3 min,棄上清,收集菌體,菌體用無(wú)菌生理鹽水(0.9%NaCl溶液)洗滌2次,向清洗后的菌體中加入1 mL GS-IS緩沖液,混合均勻,控制緩沖液中菌濃OD600為1.5,37℃靜置孵育4 h。孵育后,取1 mL菌液,于4℃,4 500 r/min離心3 min,取上清810μL,加入90μL反應(yīng)終止劑0.1 mol/L高氯酸溶液,混合均勻后4 500 r/min離心3 min,取上清液使用0.22μL水相濾膜過(guò)濾后用于HPLC檢測(cè),分析反應(yīng)液中鳥(niǎo)苷和肌苷的減少量,以及鳥(niǎo)嘌呤、黃嘌呤和次黃嘌呤的生成量。

    1.2.5 核苷降解速率的測(cè)定

    采用磷酸鹽緩沖液體系考察不同乳酸菌對(duì)核苷的降解速率[14]。選擇可以完全或者幾乎完全降解鳥(niǎo)苷和肌苷的乳酸菌株56株,在MRS培養(yǎng)基中活化后,取活化二代菌培養(yǎng)液,離心收集菌體,用無(wú)菌生理鹽水洗滌2次,重懸于含0.2 g/L鳥(niǎo)苷的磷酸鹽緩沖液中,每隔30 min取樣檢測(cè)分析鳥(niǎo)苷的剩余量。

    1.2.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

    無(wú)特殊說(shuō)明,相關(guān)實(shí)驗(yàn)均進(jìn)行3次生物學(xué)平行,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用分析軟件SPSS進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,分析結(jié)果用Origin繪制圖形。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 核苷與嘌呤檢測(cè)方法優(yōu)化

    開(kāi)展乳酸菌核苷降解能力研究,首先必須建立核苷及其代謝產(chǎn)物嘌呤的檢測(cè)方法,常用HPLC測(cè)定方法。結(jié)合研究室實(shí)際條件和文獻(xiàn)報(bào)道[15-16],本文在安捷倫1260液相色譜儀的基礎(chǔ)上,比較了3種色譜柱對(duì)于鳥(niǎo)苷、肌苷及其降解產(chǎn)物的檢測(cè)效果,檢測(cè)條件及結(jié)果如表1所示,色譜峰如圖1所示。

    從表1和圖1A可以看出,反相色譜柱ZORBAX SB-C18不能有效分離鳥(niǎo)嘌呤、黃嘌呤、次黃嘌呤和腺嘌呤,反相色譜柱Dubhe-C18不能有效分離腺嘌呤和鳥(niǎo)嘌呤,如圖1B,反相色譜柱ChromCore Polar C18可以較好的分離腺嘌呤、鳥(niǎo)嘌呤、次黃嘌呤和黃嘌呤,其出峰時(shí)間分別為6.9、7.9、9.4、12.1 min,如圖1C,而且反相色譜柱ChromCore Polar C18對(duì)肌苷和鳥(niǎo)苷的分離度也較好,出峰時(shí)間分別為24.4 min和28.7 min,但肌苷和鳥(niǎo)苷出峰時(shí)間較長(zhǎng),影響樣品檢測(cè)效率;為進(jìn)一步縮短檢測(cè)時(shí)間,優(yōu)化了流動(dòng)相中甲醇含量,以增加反相色譜柱的洗脫能力,如圖1D所示,流動(dòng)相中添加1%甲醇,可將肌苷和鳥(niǎo)苷的出峰時(shí)間提前至17.9 min和21.6 min,繼續(xù)增加甲醇含量至3%、5%和10%(數(shù)據(jù)未列出),僅能略微提前肌苷與鳥(niǎo)苷的出峰時(shí)間,且增加檢測(cè)成本,因此確定流動(dòng)相甲醇添加量為1%。

    圖1 核苷與嘌呤檢測(cè)方法優(yōu)化

    表1 不同色譜柱檢測(cè)條件及分離效果

    經(jīng)優(yōu)化后,選擇反相色譜柱ChromCore Polar C18,以KH2PO4(0.02 mol/L)∶甲醇=99∶1為流動(dòng)相,經(jīng)等度洗脫,可有效分離腺嘌呤、鳥(niǎo)嘌呤、次黃嘌呤、黃嘌呤和鳥(niǎo)苷、肌苷,25 min即可完成一個(gè)樣品的定性檢測(cè)和定量分析。

    2.2 不同來(lái)源乳酸菌核苷降解率分析

    對(duì)從嬰兒腸道、長(zhǎng)壽老人腸道和發(fā)酵食品中分離獲得的172株乳酸菌的鳥(niǎo)苷和肌苷降解率進(jìn)行了測(cè)定,結(jié)果如圖2所示。

    從圖2可以看出,73株嬰兒腸道源乳酸菌中,94.5%的菌株鳥(niǎo)苷和肌苷降解率低于50%,僅4株菌的鳥(niǎo)苷和肌苷降解率為100%,占比5.5%,如圖2A;25株長(zhǎng)壽老人腸道源乳酸菌中,17株乳酸菌鳥(niǎo)苷和肌苷降解率為100%,占比為68.0%,顯著高于嬰兒腸道源乳酸菌中5.5%的比例,如圖2B;在74株傳統(tǒng)發(fā)酵食品來(lái)源的乳酸菌中,35株乳酸菌鳥(niǎo)苷和肌苷降解率為100%,占比為47.3%,高于嬰兒腸道源乳酸菌中5.5%的比例,但同樣顯著低于長(zhǎng)壽老人腸道源乳酸菌中68%的比例,如圖2C。結(jié)果表明,長(zhǎng)壽老人腸道源乳酸菌可以完全降解鳥(niǎo)苷和肌苷的概率大于傳統(tǒng)發(fā)酵食品源和嬰兒腸道源乳酸菌中的概率,更適于篩選核苷降解率高的乳酸菌。

    同時(shí),研究過(guò)程中發(fā)現(xiàn)3種不同來(lái)源的172株乳酸菌的鳥(niǎo)苷和肌苷降解率呈現(xiàn)強(qiáng)正相關(guān)性(r=0.989,P<0.01),如圖2D,即鳥(niǎo)苷降解率高的菌株,其肌苷降解率也高,進(jìn)而基于Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes(KEGG)對(duì)不同種屬乳桿菌的核苷代謝途徑進(jìn)行解析,發(fā)現(xiàn)乳桿菌中催化鳥(niǎo)苷、肌苷、腺苷降解的為同一個(gè)酶,嘌呤核苷磷酸化酶(purine-nucleoside phosphorylase,PNP),這從代謝水平上解釋了同一菌株鳥(niǎo)苷降解率和肌苷降解率之間的強(qiáng)正相關(guān)關(guān)系。雖然本文沒(méi)有測(cè)定菌株對(duì)腺苷的降解率,但基于以上分析,可以推測(cè)腺苷降解率和鳥(niǎo)苷、肌苷降解率同樣成正相關(guān)關(guān)系,鳥(niǎo)苷、肌苷降解率高的菌株,其腺苷降解率也高。由于同一菌株的鳥(niǎo)苷和肌苷降解率呈現(xiàn)強(qiáng)正相關(guān)性,所以在考察不同來(lái)源菌株的核苷降解速率時(shí),僅選擇以鳥(niǎo)苷降解速率為代表。

    圖2 不同來(lái)源乳酸菌鳥(niǎo)苷和肌苷降解率分析

    2.3 不同來(lái)源乳酸菌鳥(niǎo)苷降解速率分析

    選擇上述鳥(niǎo)苷和肌苷降解率為100%的56株乳酸菌,活化后重懸于含0.2 g/L鳥(niǎo)苷的磷酸鹽緩沖液中,每隔30 min取樣檢測(cè)反應(yīng)體系中剩余的鳥(niǎo)苷含量,計(jì)算鳥(niǎo)苷降解速率,結(jié)果如圖3所示。

    圖3 不同來(lái)源乳酸菌鳥(niǎo)苷降解速率分析

    從圖3可以看出,嬰兒腸道來(lái)源的4株乳酸菌中,僅1株菌在30 min內(nèi)可以完全降解鳥(niǎo)苷,降解速率大于1.40 mmol/(L·h),其余3株菌的鳥(niǎo)苷降解速率低于1.1 mmol/(L·h);長(zhǎng)壽老人腸道來(lái)源的17株乳酸菌中,鳥(niǎo)苷降解速率大于1.40 mmol/(L·h)的菌株共7株,占比41.2%;發(fā)酵食品來(lái)源的35株乳酸菌中,鳥(niǎo)苷降解速率大于1.40 mmol/(L·h)的菌株共7株,占比20.0%;這表明,在可以完全降解鳥(niǎo)苷、肌苷的乳酸菌中,長(zhǎng)壽老人腸道源乳酸菌鳥(niǎo)苷降解速率大于1.40 mmol/(L·h)的概率顯著高于嬰兒腸道源乳酸菌和傳統(tǒng)發(fā)酵食品源乳酸菌中相應(yīng)概率,更適于篩選核苷降解速率快的乳酸菌。

    3 結(jié) 論

    本文以核苷降解率和核苷降解速率為評(píng)價(jià)指標(biāo),考察了嬰兒腸道、長(zhǎng)壽老人腸道和傳統(tǒng)發(fā)酵食品3種不同來(lái)源乳酸菌的核苷降解能力,并比較了不同來(lái)源菌株核苷降解能力之間的差異。通過(guò)研究發(fā)現(xiàn),(1)長(zhǎng)壽老人腸道源乳酸菌中68.0%的菌株可以完全降解鳥(niǎo)苷和肌苷,所占比例最高,顯著高于發(fā)酵食品源(47.3%)和嬰兒腸道源乳酸菌中相應(yīng)比例(5.5%);(2)長(zhǎng)壽老人腸道源可以完全降解鳥(niǎo)苷和肌苷的乳酸菌中,41.2%的菌株鳥(niǎo)苷降解速率大于1.40 mmol/(L·h),所占比例同樣顯著高于發(fā)酵食品源(20.0%)和嬰兒腸道源乳酸菌中相應(yīng)比例(25.0%);(3)3種不同來(lái)源的172株乳酸菌的鳥(niǎo)苷和肌苷降解率呈現(xiàn)強(qiáng)正相關(guān)性。這些研究結(jié)果表明,長(zhǎng)壽老人腸道源乳酸菌具有較高的核苷降解能力,嬰兒腸道源乳酸菌核苷降解能力普遍較弱,長(zhǎng)壽老人腸道源乳酸菌更適宜篩選核苷降解能力強(qiáng)、具備降尿酸潛力的益生乳酸菌,這為篩選可緩解高尿酸血癥的益生乳酸菌提供一定指導(dǎo)。

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