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    加減駐景方對脈絡(luò)膜新生血管動物模型缺氧信號因子表達(dá)的影響

    2021-05-28 06:47:58陶方方亢澤峰陳水齡褚文麗劉健周志豪
    中國中醫(yī)眼科雜志 2021年5期
    關(guān)鍵詞:中藥模型

    陶方方,亢澤峰,陳水齡,褚文麗,劉健,周志豪

    加減駐景方[1]是治療年齡相關(guān)性黃斑變性(age-related macular degeneration,AMD)和病理性近視等伴有脈絡(luò)膜新生血管(choroidal neovascularization,CNV)眼底疾病的經(jīng)驗(yàn)用方,臨床治療有效,其作用機(jī)制尚不清晰,本研究采用組織學(xué)和分子生物學(xué)技術(shù)檢測CNV 動物模型中雷帕霉素靶蛋白(mammal target of rapamycin,mTOR)信號通路相關(guān)因子活性,探 討 蛋 白 激 酶B(protein kinase B,PKB,AKT)/mTOR/缺氧誘導(dǎo)因子-1α(hypoxia-inducible factor,HIF-1α)/血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelium growth factor,VEGF)信號通路在CNV 形成中的作用,從而揭示加減駐景方抑制CNV 的機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動物

    8 周齡雄性SPF 級棕色挪威(brown norway,BN)大鼠138 只,體重180~220 g,購買于北京市維通利華公司。動物許可證號:SCXK(京)2012-0001。實(shí)驗(yàn)前,適應(yīng)性飼養(yǎng)3 d。

    1.2 試劑與儀器

    PCR 儀(Biometra,TProfessional ThermoCycler),全自動熒光定量PCR 儀(7500,ABI)。SP-9000 試劑盒(中杉金橋),AKT、VEGF(Cell Signaling Technology),mTOR、HIF-1α(Abcam),cDNA 第一鏈合成試劑盒(Thermo Scientific,K1622)。

    1.3 實(shí)驗(yàn)分組與給藥

    大鼠任一只眼為實(shí)驗(yàn)眼,行激光造模,每只眼光凝8~10 個點(diǎn)。激光功率360 mW,光斑直徑50 μm,曝光時間0.05 s。按隨機(jī)數(shù)字表法將造模成功的大鼠分為模型組、中藥組、西藥組、聯(lián)合組,各30 只。

    空白組:18 只大鼠,正常飼養(yǎng),不做特殊處理。

    模型組:光凝后第1d 予生理鹽水灌胃,每日1 次,共21 d。

    中藥組:光凝后第1 d 予中藥灌胃,每日1 次,共21 d。中藥加減駐景方由楮實(shí)子、枸杞子、菟絲子、五味子、茺蔚子、三七粉、桂枝、茯苓、三棱、郁金、生黃芪和當(dāng)歸等多種藥物組成,給藥中藥濃度為0.775 g/ml,灌胃量10 ml/kg。

    西藥組:光凝后第1 d 予玻璃體腔注射康柏西普(Conbercept),共計(jì)1 次。康柏西普,成都康鴻藥業(yè),規(guī)格10 mg/ml,微量注射器玻璃體腔注射5 μl。

    聯(lián)合組:光凝后第1 d 予中藥灌胃(同中藥組),每日1 次,共21 d,光凝后第1 d 予玻璃體腔注射康柏西普(同西藥組),共計(jì)1 次。

    1.4 免疫組織化學(xué)法檢測AKT、mTOR、HIF-1α 和VEGF

    模型組和各治療組在光凝后第7 d、14 d、21 d各處死6 只大鼠取材??瞻捉M在光凝后21 d 處死取材。制作組織切片,行免疫組織化學(xué)染色。石蠟切片脫蠟至水;PBS 洗滌5 min,3 次;抗原修復(fù);3%H2O2阻斷內(nèi)源性過氧化物酶活性,10 min;1%Triton-100,室溫1 h;試劑A,室溫30 min;滴加稀釋后的一抗,陰性對照用PBS 溶液代替,4°C 過夜;試劑B,室溫下孵育30 min;試劑C,室溫下孵育10 min;DAB 染色;自來水沖洗,蘇木素復(fù)染1 min,鹽酸酒精分化30 s,氨水返藍(lán)30 s;梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片,晾干;光學(xué)顯微鏡拍攝照片。一抗稀釋倍數(shù):AKT(1:100);mTOR(1:200);HIF-1α(1:200);VEGF(1:100)。

    1.5 實(shí)時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)檢測AKT、mTOR、HIF-1α 和VEGF 的mRNA 表達(dá)

    采用實(shí)時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(real-time fluorescent quantitative polymerase chain reaction,RT-qPCR)技術(shù),光凝后21 d,每組各處死6 只大鼠獲取眼杯,參照試劑盒方法用Trizol 一步法裂解組織,提取總RNA,按照試劑盒說明書,合成cDNA。配制反應(yīng)體系如下:RealMasterMix 和SYBR 混合物10μl,上游引物1 μl,下游引物1 μl,cDNA 1 μl,超純水定容至20 μl,進(jìn)行PCR 循環(huán),95℃預(yù)變性10 min;95℃變性20 s、60℃退火30 s、68℃延伸60 s;循環(huán)40 次。引物由北京科悅達(dá)生物科技有限公司合成(表1)。

    1.6 蛋白免疫印跡技術(shù)檢測目的蛋白表達(dá)

    采用蛋白免疫印跡(western blotting)技術(shù)檢測目的蛋白表達(dá),光凝后21 d,每組各處死6 只大鼠獲取眼杯,獲取蛋白質(zhì)樣品,測定總蛋白濃度,SDS 聚丙烯酰胺凝膠電泳,起始電壓設(shè)定為80 V,當(dāng)樣品進(jìn)入分離膠時,調(diào)整電壓至120 V,繼續(xù)電泳,直至溴酚藍(lán)跑至底部時,結(jié)束電泳。轉(zhuǎn)膜;5%脫脂牛奶封閉,室溫?fù)u床孵育2 h;一抗4℃孵育過夜;1:5000 稀釋的辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔IgG,室溫孵育1 h;顯影液顯影。

    1.7 圖像分析方法

    每組選取15 張包含CNV 的免疫組化圖像,Image Pro Plus 6.0 軟件分析圖像的平均光密度值(average optical density,AOD)值作為半定量測定陽性表達(dá)物的依據(jù)。用空白組目的基因與內(nèi)參GAPDH的相對表達(dá)量進(jìn)行校正,得到空白組目的基因mRNA 相對表達(dá)量為1 時,實(shí)驗(yàn)組目的基因mRNA 表達(dá)量是空白組的倍數(shù)。將“2-ΔΔCt”視為各目的基因mRNA 的相對表達(dá)量。使用Quantity One 分析軟件測定條帶光密度值,以GAPDH 條帶的光密度值校正,目的蛋白的相對表達(dá)量以目的基因條帶的光密度值與GAPDH 條帶的光密度值之比來表示。

    1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    采用統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件SPSS 21.0 進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計(jì)量資料以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()描述,多組間比較采用單因素方差分析,兩組間比較采用方差分析中LSD-t檢驗(yàn)。當(dāng)P<0.05 時,則認(rèn)為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 免疫組化結(jié)果

    2.1.1 AKT 空白組大鼠視網(wǎng)膜組織中可見AKT 表達(dá),視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層可見陽性反應(yīng)物。模型組和各治療組視網(wǎng)膜光凝區(qū)CNV 組織中AKT 表達(dá)均呈強(qiáng)陽性,CNV 組織中可見大量黃棕色陽性反應(yīng)物。模型組和聯(lián)合組AKT 表達(dá)量在光凝后7 d 時最大,21 d時緩慢減少(P<0.05);中藥組和西藥組AKT 表達(dá)量在光凝后14 d 時最大,21 d 時顯著減少(P<0.05)。

    光凝后7 d,各治療組AKT 表達(dá)量均低于模型組,中藥組AKT 表達(dá)量高于西藥組與聯(lián)合組(P<0.05),西藥組與聯(lián)合組無明顯差異(P>0.05)。光凝后14 d 與21 d,各治療組AKT 表達(dá)量均低于模型組,聯(lián)合組AKT 表達(dá)量最低,西藥組次之,西藥組AKT 表達(dá)量低于中藥組(P<0.05)(表2,圖1)。

    2.1.2 mTOR 空白組BN 大鼠視網(wǎng)膜組織中可見mTOR 表達(dá),視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層可見少量陽性反應(yīng)物。模型組和各治療組CNV 組織中mTOR 呈強(qiáng)陽性表達(dá),CNV 組織中可見大量黃棕色陽性反應(yīng)物。模型組、中藥組和聯(lián)合組mTOR 表達(dá)量在光凝后7 d 時最大,21 d 時顯著減少(P<0.05)。西藥組mTOR 表達(dá)量在光凝后14 d 時最大,21 d 時顯著減少(P<0.05)。

    表1 RT-qPCR 引物序列

    表2 光凝后不同時間各組AKT 的AOD 值變化(,n=15)

    表2 光凝后不同時間各組AKT 的AOD 值變化(,n=15)

    注:※ 與同時間段模型組比較,P<0.05;# 與同時間段中藥組比較,P<0.05;&與同時間段西藥組比較,P<0.05;* 與同時間段聯(lián)合組比較,P<0.05

    光凝后7 d,西藥組與聯(lián)合組mTOR 表達(dá)量均低于模型組和中藥組(P<0.05),中藥組與模型組無明顯差異(P>0.05)。光凝后14 d 與21 d,各治療組mTOR 表達(dá)量均低于模型組,聯(lián)合組mTOR 表達(dá)量最低,西藥組次之,西藥組mTOR 表達(dá)量低于中藥組(表3,圖2)。

    表3 光凝后不同時間各組mTOR 的AOD 值變化(,n=15)

    表3 光凝后不同時間各組mTOR 的AOD 值變化(,n=15)

    注:※ 與同時間段模型組比較,P<0.05;# 與同時間段中藥組比較,P<0.05;&與同時間段西藥組比較,P<0.05;* 與同時間段聯(lián)合組比較,P<0.05

    圖1 AKT 免疫組化圖像(DAB 染色,×400)。1A 空白組,正常BN 大鼠視網(wǎng)膜組織中AKT 呈陽性表達(dá)。1B 7 d 模型組;1C 7 d 中藥組;1D 21 d 中藥組;1E 7 d 西藥組;1F 21 d 西藥組;1G 7 d 聯(lián)合組;1H 21 d 聯(lián)合組。模型組和各治療組CNV 中AKT 呈強(qiáng)陽性表達(dá)

    圖2 mTOR 免疫組化圖像(DAB 染色,×400)。2A 空白組,正常BN 大鼠視網(wǎng)膜組織中mTOR 呈陽性表達(dá);2B 7 d 模型組;2C 7 d 中藥組;2D 21 d 中藥組;2E 7 d 西藥組;2F 21 d 西藥組;2G 7 d 聯(lián)合組;2H 21 d 聯(lián)合組。模型組和各治療組CNV 中mTOR 呈陽性表達(dá)

    2.1.3 HIF-1α 空白組BN 大鼠視網(wǎng)膜組織中可見HIF-1α 表達(dá),視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層可見陽性反應(yīng)物。模型組和各治療組CNV 組織中HIF-1α 呈陽性表達(dá),CNV 組織中可見大量黃棕色陽性反應(yīng)物。模型組、中藥組和聯(lián)合組HIF-1α 表達(dá)量在光凝后14 d時最大,21 d 時顯著減少(P<0.05)。西藥組HIF-1α表達(dá)量在光凝后不同時間無明顯變化(P>0.05)。

    光凝后7 d,西藥組與聯(lián)合組HIF-1α 表達(dá)量均低于模型組和中藥組(P<0.05),中藥組與模型組無明顯差異(P>0.05)。光凝后14 d,各治療組HIF-1α表達(dá)量均低于模型組,西藥組HIF-1α 表達(dá)量最低,聯(lián)合組次之,聯(lián)合組HIF-1α 表達(dá)量低于中藥組(P<0.05)。光凝后21 d,各治療組HIF-1α 表達(dá)量均低于模型組,聯(lián)合組HIF-1α 表達(dá)量最低,西藥組次之,西藥組HIF-1α 表達(dá)量低于中藥組(P<0.05)(表4,圖3)。

    表4 光凝后不同時間各組HIF-1α 的AOD 值變化(,n=15)

    表4 光凝后不同時間各組HIF-1α 的AOD 值變化(,n=15)

    注:※ 與同時間段模型組比較,P<0.05;# 與同時間段中藥組比較,P<0.05;&與同時間段西藥組比較,P<0.05;* 與同時間段聯(lián)合組比較,P<0.05

    2.1.4 VEGF 空白組BN 大鼠視網(wǎng)膜組織中可見VEGF 表達(dá),視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層可見少量陽性反應(yīng)物。模型組和各治療組CNV 組織中VEGF 呈陽性表達(dá),CNV 組織中可見大量黃棕色陽性反應(yīng)物。模型組和中藥組VEGF 表達(dá)量在光凝后7 d 時最大,隨后逐漸減少(P<0.05)。西藥組VEGF 表達(dá)量在光凝后7 d 時最大,21 d 時顯著減少(P<0.05)。聯(lián)合組VEGF 表達(dá)量在光凝后7 d 時最大,14 d 時顯著減少,21 d 較14 d 有明顯增加(P<0.05)。

    光凝后7d、14d 與21d,各治療組VEGF 表達(dá)量均低于模型組,聯(lián)合組VEGF 表達(dá)量最低,西藥組次之,西藥組VEGF 表達(dá)量低于中藥組(P<0.05)(表5,圖4)。

    表5 光凝后不同時間各組VEGF 的AOD 值變化(,n=15)

    表5 光凝后不同時間各組VEGF 的AOD 值變化(,n=15)

    注:※ 與同時間段模型組比較,P<0.05;# 與同時間段中藥組比較,P<0.05;&與同時間段西藥組比較,P<0.05;* 與同時間段聯(lián)合組比較,P<0.05

    2.2 RT-qPCR 檢測mRNA 相對表達(dá)量

    模型組與治療組各目的基因mRNA 相對表達(dá)量較空白組均有明顯增多(P<0.05)。除mTOR 以外,各治療組目的基因mRNA 相對表達(dá)量均低于模型組(P<0.05),中藥組mTOR mRNA 相對表達(dá)量與模型組無明顯差異(P>0.05)。各治療組AKT、mTOR 和VEGF mRNA 相對表達(dá)量由高到低依次為中藥組、西藥組和聯(lián)合組(P<0.05)。中藥組HIF-1α mRNA相對表達(dá)量高于西藥組和聯(lián)合組(P<0.05),西藥組和聯(lián)合組之間無明顯差異(P>0.05)(表6)。

    圖3 HIF-1α 免疫組化圖像(DAB 染色,×400)。3A 空白組,正常BN 大鼠視網(wǎng)膜組織中HIF-1α 呈陽性表達(dá);3B 7 d 模型組;3C 7 d 中藥組;3D 21 d 中藥組;3E 7 d 西藥組;3F 21 d 西藥組;3G 7 d 聯(lián)合組;3H 21 d 聯(lián)合組。模型組和各治療組CNV 中HIF-1α 呈陽性表達(dá)

    圖4 VEGF 免疫組化圖像(DAB 染色,×400)。4A 空白組,正常BN 大鼠視網(wǎng)膜組織中VEGF 呈陽性表達(dá);4B 7 d 模型組;4C 7 d 中藥組;4D 21 d 中藥組;4E 7 d 西藥組;4F 21 d 西藥組;4G 7 d 聯(lián)合組;4H 21 d 聯(lián)合組。模型組和各治療組CNV 中VEGF 呈陽性表達(dá)

    表6 AKT、mTOR、HIF-1α 與VEGF mRNA 相對表達(dá)量δ(,n=9)

    表6 AKT、mTOR、HIF-1α 與VEGF mRNA 相對表達(dá)量δ(,n=9)

    注:δ 空白組設(shè)為1,其他組與其相除獲得相對值;※ 與模型組比較,P<0.05;# 與中藥組比較,P<0.05;&與西藥組比較,P<0.05;* 與聯(lián)合組比較,P<0.05

    2.3 Western blotting 檢測蛋白相對表達(dá)量

    模型組和治療組各目的蛋白相對表達(dá)量較空白組均有明顯增多(P<0.05)。模型組、中藥組AKT 蛋白相對表達(dá)量較西藥組、聯(lián)合組高(P<0.05)。除AKT蛋白以外,各治療組目的蛋白相對表達(dá)量均低于模型組(P<0.05)。各治療組mTOR 與VEGF 蛋白相對表達(dá)量由高到低依次為中藥組、西藥組和聯(lián)合組(P<0.05)。HIF-1α 蛋白相對表達(dá)量中藥組較高(P<0.05),西藥組與聯(lián)合組無明顯差異(P>0.05)(表7,圖5)。

    表7 AKT、mTOR、HIF-1α 與VEGF 蛋白相對表達(dá)量δ(,n=9)

    表7 AKT、mTOR、HIF-1α 與VEGF 蛋白相對表達(dá)量δ(,n=9)

    注:δ 內(nèi)參GAPDH 設(shè)為1,其他組與其相除獲得相對值;Δ 與空白組比較,P<0.05;※ 與模型組比較,P<0.05;# 與中藥組比較,P<0.05;&與西藥組比較,P<0.05;* 與聯(lián)合組比較,P<0.05

    圖5 Western blotting 圖像。1~5 依次為空白組、模型組、中藥組、西藥組和聯(lián)合組

    3 討論

    CNV 是AMD、病理性近視等多種嚴(yán)重?fù)p害視功能眼病的共同病理產(chǎn)物,其病因尚不十分明確,治療棘手。CNV 的形成與VEGF、白細(xì)胞介素-6 等多種細(xì)胞因子的作用有關(guān),其中AKT/mTOR/HIF-1α是調(diào)控VEGF 表達(dá)的主要信號通路之一[2]。

    VEGF 是目前已知促進(jìn)CNV 生成最關(guān)鍵的因子,VEGF-A 是最重要的家族成員,以往稱為VEGF,主要高表達(dá)于有新生血管的組織與細(xì)胞中,如腫瘤組織、缺血缺氧性眼病組織、胎兒組織等,而在正常人與動物組織中低表達(dá)。VEGF-A 不僅可以有選擇的促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞的有絲分裂、移行,誘導(dǎo)毛細(xì)血管形成來促進(jìn)新生血管的生成[3],還可以增加微小血管通透性,促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)形成,為新生血管的形成提供營養(yǎng)[4],促進(jìn)血管形成。

    PI3K/AKT/mTOR 信號通路是內(nèi)皮細(xì)胞中調(diào)控HIF-1α mRNA 翻譯的關(guān)鍵信號通路[5-6],生長因子、缺氧等因素可以激活PI3K/AKT/mTOR 信號通路[7],促使HIF-1α 蛋白表達(dá)的上調(diào),HIF-1 與靶基因的缺氧反應(yīng)元件結(jié)合,如VEGF,從而激活VEGF mRNA 的轉(zhuǎn)錄[2,8-10],進(jìn)而激活VEGF 的表達(dá),使內(nèi)皮細(xì)胞遷移促進(jìn)CNV 的形成。本研究中,模型組表達(dá)的AKT、mTOR、HIF-1α、VEGF 蛋白及mRNA 較空 白組均有顯著增強(qiáng)。氪激光誘導(dǎo)的BN 大鼠CNV 模型中,AKT/mTOR/HIF-1α/VEGF 信號通路的激活促進(jìn)了CNV 的生成。

    加減駐景方是亢澤峰教授治療AMD 和病理性近視等伴有CNV 眼底疾病的經(jīng)驗(yàn)用方,亢教授將AMD 歸為中醫(yī)眼科“瞳神絡(luò)病”的范疇[11-12]。清代名醫(yī)葉天士[13]有言:“久病必治絡(luò)—病久氣血推行不利,血絡(luò)之中必有瘀凝,故致病氣纏延不去,必疏其絡(luò)而病氣可盡也”。王清任[14]認(rèn)為:“元?dú)饧忍?,必不能達(dá)于血管,血管無氣,必停留而瘀”??航淌谡J(rèn)為,本病病機(jī)主要為肝腎不足,兼具氣血津液功能障礙,表現(xiàn)為瘀、痰、濕的本虛標(biāo)實(shí)證,治以補(bǔ)腎明目、活血通絡(luò)為要則,輔以利水滲濕、止血活血、益氣養(yǎng)血、溫陽通絡(luò)之藥。因此,組成了以“補(bǔ)腎明目、益氣活血、化瘀通絡(luò)”為治則的加減駐景方。

    方中菟絲子補(bǔ)腎益精,養(yǎng)肝明目,為平補(bǔ)陰陽之品,善滋補(bǔ)肝腎、益精養(yǎng)血而明目,《神農(nóng)本草經(jīng)》[15]言:“久服明目”。枸杞子,為平補(bǔ)腎精肝血之品,與菟絲子合用,常用于肝腎陰虛之內(nèi)障目昏,共為君藥。五味子酸咸,斂肺金滋腎水;楮實(shí)子,益精強(qiáng)陰;黃芪甘溫,益氣健脾補(bǔ)中,伍以甘溫之當(dāng)歸,湊健脾益氣補(bǔ)血之效,目得血而能視;以上共助君藥補(bǔ)益肝腎、益氣養(yǎng)血明目而為臣。三七,活血通竅。郁金,活血行氣,通利玄府清竅,又制臣藥之溫燥。三棱,破血行氣,《神農(nóng)本草經(jīng)疏》[16]曰:“從血藥則治血,從氣藥則治氣”,三者相合,散瘀行氣之力著。茯苓,滲濕健脾,消痰利水。合芪、歸,能補(bǔ)益心脾,使血行暢通、生血有源,又可防諸藥滋膩,合于桂枝,溫通血脈,化氣利水,共達(dá)行瘀利水之效。以上共為佐藥,減君臣藥之滋膩,又奏氣滯血瘀之效,使水行、絡(luò)脈通,減輕痰濕、血瘀等“邪阻”之證。加減駐景方中多種藥物具有耐缺氧、增加血流量、降低血管阻力、抑制VEGF表達(dá)等作用。如菟絲子具有增加冠狀動脈血流量與降低血管阻力作用[17],枸杞多糖有耐缺氧作用[18],三棱含藥血清有抑制血管內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)VEGF 的作用[19]。

    本研究中,各治療組均有抑制AKT/mTOR/HIF-1α/VEGF 信號通路活性的作用。西藥組與聯(lián)合組對AKT/mTOR/HIF-1α/VEGF 信號通路活性的抑制作用強(qiáng)于中藥組,加減駐景方通過降低AKT/mTOR/HIF-1α/VEGF 信號通路活性,發(fā)揮了抑制CNV 形成的作用,這可能與方藥中多種藥物耐缺氧、增加冠狀動脈血流量、抑制VEGF 表達(dá)的作用有關(guān)。

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