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    飼養(yǎng)水平對阿勒泰羊胃腸道發(fā)育、瘤胃發(fā)酵參數(shù)及瘤胃微生物區(qū)系的影響

    2021-04-23 02:14:26李宏宋淑珍高良霜郎俠劉立山宮旭胤魏玉兵吳建平
    草業(yè)學(xué)報(bào) 2021年4期
    關(guān)鍵詞:區(qū)系消化酶反芻動物

    李宏,宋淑珍,高良霜,郎俠,劉立山,宮旭胤,魏玉兵,吳建平,3**

    (1.甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院畜草與綠色農(nóng)業(yè)研究所,甘肅省牛羊種質(zhì)與秸稈飼料化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,甘肅 蘭州730070;2.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,甘肅 蘭州730070;3.西北師范大學(xué)新農(nóng)村發(fā)展研究院,甘肅 蘭州730070;4.平山湖蒙古族鄉(xiāng)畜牧獸醫(yī)站,甘肅張掖734000)

    反芻動物與單胃動物相比有著特殊的消化器官瘤胃,瘤胃是反芻動物發(fā)酵、消化和代謝的重要場所,飼料中約有70%~85%可消化物質(zhì)和50%粗纖維在瘤胃內(nèi)消化,瘤胃對反芻動物營養(yǎng)物質(zhì)消化和吸收起著至關(guān)重要的作用[1]。而瘤胃微生物是瘤胃發(fā)酵必不可缺少的物質(zhì)[2],對反芻動物的營養(yǎng)生理起著至關(guān)重要的作用,微生物區(qū)系非常復(fù)雜,隨飼料種類、營養(yǎng)水平、飼養(yǎng)環(huán)境、動物品種和年齡等的不同而發(fā)生變化[3-4],瘤胃微生物包括細(xì)菌、原蟲和真菌,以厭氧性纖毛蟲和細(xì)菌為主。瘤胃中的揮發(fā)性脂肪酸(volatile fatty acid,VFA)、菌體蛋白由瘤胃微生物厭氧發(fā)酵而產(chǎn)生,VFA為反芻動物提供70%~80%的能量,這將直接影響動物的生產(chǎn)性能[5-7]。纖維素酶等消化酶由瘤胃細(xì)菌所分泌[8],消化酶的活性受飼糧和腸道內(nèi)環(huán)境因素所調(diào)控[9]。動物對飼糧營養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收主要依賴于瘤胃中瘤胃微生物和各種消化酶,所以瘤胃發(fā)酵和瘤胃微生物對飼糧的利用率及營養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收有著巨大的影響[10]。阿勒泰羊主要分布在新疆北部的阿勒泰地區(qū)福??h、富蘊(yùn)縣、清河縣等地,因其尾臀合一碩大,又被稱為大尾羊或阿勒泰大尾羊[11],為肉脂兼用型綿羊品種。該羊耐粗飼、抗逆性強(qiáng),以其體型大、肉脂生產(chǎn)性能高而聞名[12-13]。阿勒泰羊在原產(chǎn)地終年放牧[14],由于生態(tài)環(huán)境保護(hù),牧場資源限制,傳統(tǒng)的放牧飼養(yǎng)已不適合現(xiàn)代畜牧業(yè)的發(fā)展要求,如何有效利用飼糧的營養(yǎng)水平改善瘤胃內(nèi)環(huán)境,調(diào)控瘤胃微生物數(shù)量,進(jìn)而調(diào)節(jié)動物的生產(chǎn)性能及降低養(yǎng)殖成本,促進(jìn)反芻動物對營養(yǎng)物質(zhì)的利用和吸收,是反芻動物營養(yǎng)研究的一個(gè)重要方向,且飼糧的營養(yǎng)水平對阿勒泰羊胃腸道發(fā)育、瘤胃發(fā)酵及瘤胃微生物區(qū)系的影響鮮有報(bào)道,為此本試驗(yàn)旨在探討短期不同飼養(yǎng)水平對肥臀羊阿勒泰羊胃腸道發(fā)育、瘤胃內(nèi)環(huán)境、消化酶活性及瘤胃微生物區(qū)系的影響,為通過營養(yǎng)水平調(diào)控阿勒泰羊生產(chǎn)提供思路。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    選取月齡相近(3~3.5月齡)、體重接近(19.16±0.54 kg)、臀型一致、健康狀況良好的阿勒泰羔羊30只,隨機(jī)分為3組,每組10只羊,單欄飼養(yǎng),自由采食60 d,參照NRC(2007)飼養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn)中維持能量(energy for maintenance,Em)需要,3個(gè)組分別按1.5(0.75 MJ·kg-1W0.75,1.5Em組)、1.0(0.50 MJ·kg-1W0.75,1.0Em組)和0.5倍Em(0.25 MJ·kg-1W0.75,0.5Em組)飼喂30 d。試驗(yàn)羊每隔10 d稱重,調(diào)整飼喂量。試驗(yàn)結(jié)束后每組選取9只羊按畜類屠宰加工通用技術(shù)條件(GB/T 17237-2008)的要求屠宰,并按采樣要求收集樣品。

    1.2 飼養(yǎng)與管理

    試驗(yàn)始于2018年7月30日止于2018年11月6日,在甘肅省張掖市平山湖鄉(xiāng)種羊場進(jìn)行,預(yù)試期10 d,正試期90 d。試驗(yàn)前一周,打掃清理羊舍,并對羊舍、羊欄、食槽等進(jìn)行消毒。試驗(yàn)開始前,試驗(yàn)羊逐個(gè)稱重、打耳標(biāo)和驅(qū)蟲(驅(qū)蟲后48 h內(nèi)徹底打掃羊舍)。每組10只,單欄飼養(yǎng),羊欄長3.0 m,寬2.0 m,配置飲水和采食一體的食槽,每天早上8:00、下午5:00分兩次飼喂,自由飲水。試驗(yàn)羊舍為彩鋼半開放式羊舍,溫度、光照、通風(fēng)等飼養(yǎng)環(huán)境條件一致。試驗(yàn)飼糧根據(jù)美國NRC(2007)肉用綿羊的需要標(biāo)準(zhǔn)配制,試驗(yàn)期綿羊飼糧的組成、基礎(chǔ)飼糧組成及營養(yǎng)水平見表1。

    表1 飼糧組成及營養(yǎng)水平Table 1 Composition and nutrient levels of experimental diets(Air-dry basis)

    1.3 樣品采集

    試驗(yàn)結(jié)束后,禁食、自由飲水12 h后將試驗(yàn)羊屠宰,屠宰后迅速分離出瘤胃,采集瘤胃內(nèi)容物及瘤胃液、瘤胃液經(jīng)4層紗布過濾后,裝于滅菌的凍存管-20℃內(nèi)保存,用于測定瘤胃發(fā)酵參數(shù)及消化酶活性;瘤胃內(nèi)容物置于滅菌的凍存管內(nèi)-80℃凍存,用于瘤胃微生物區(qū)系的測定。同時(shí),取出胃腸道測定重量及小腸長度。

    1.4 測定指標(biāo)及方法

    1.4.1 胃腸道發(fā)育 試驗(yàn)羊屠宰后迅速將瘤胃、網(wǎng)胃、瓣胃和皺胃內(nèi)容物清理干凈,然后稱總重,之后將瘤胃結(jié)扎分離出來進(jìn)行稱重。將小腸分離后清理內(nèi)容物進(jìn)行稱重,之后將小腸展開用皮尺測量長度,最后計(jì)算瘤胃指數(shù)和小腸指數(shù)。

    1.4.2 瘤胃液pH、氨態(tài)氮(NH3-N)、揮發(fā)性脂肪酸(VFA) 用便攜式酸度計(jì)直接測定瘤胃液pH,參照馮宗慈等[16]的方法改進(jìn)后測定瘤胃液NH3-N含量;利用日本島津(GC-2010 plus)氣相色譜儀測定VFA,采用內(nèi)標(biāo)法,內(nèi)標(biāo)為2-乙基丁酸(2EB),色譜柱:AT-FFAP(50 m×0.32 mm×0.25μm)毛細(xì)管柱。色譜柱程序升溫:溫度60℃保持1 min,以5℃·min-1升至115℃,不保留,再以15℃·min-1升至180℃,檢測器溫度260℃,進(jìn)樣口溫度250℃。

    1.4.3 消化酶活性 瘤胃液中淀粉酶、脂肪酶、胃蛋白酶活性的測定,采用南京建成生物工程研究所試劑盒[淀粉酶(C016-1-1)、脂肪酶(A054-2-1)、胃蛋白酶(A080-1-1)],測定步驟按照試劑盒說明書方法進(jìn)行,用北京六一生物科技有限公司全自動酶標(biāo)儀(WD-2102B)測定。

    1.4.4 瘤胃微生物區(qū)系 瘤胃微生物總DNA利用天根糞便基因組DNA提取試劑盒(DP-328)提取。提取的DNA用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測完整性和純度,用超微量分光光度計(jì)(Therm Nano Drop-2000)檢測OD260/280。微生物特異性引物序列見表2,所有引物均由上海生物工程有限公司合成。利用ABI QuantStudio-5熒光定量基因擴(kuò)增儀熒光定量PCR(RT-qPCR)比較閾值法測定微生物相對含量。PCR反應(yīng)體系及反應(yīng)參數(shù)參照天根SuperReal熒光定量預(yù)混試劑增強(qiáng)版(SYBR Green-FP205)說明書進(jìn)行。反應(yīng)體系20μL,2×SuperReal PreMix Plus 10μL,上下游引物各0.6μL,模板1μL,50×ROX Reference Dye 0.4μL,ddH2O 7.4μL。反應(yīng)參數(shù)為95℃預(yù)變性15 min,95℃變性10 s,60℃退火32 s,共計(jì)40個(gè)循環(huán)。

    表2 瘤胃微生物引物序列Table 2 The primer sequence of rumen microorganisms

    1.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

    采用2-ΔΔct法[20]計(jì)算目的菌相對含量,以總細(xì)菌為內(nèi)參基因。用Excel 2010整理數(shù)據(jù),然后采用SPSS 21.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行單因素方差分析(One-way ANOVA),用Duncan法進(jìn)行多重比較,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,顯著性差異判斷標(biāo)準(zhǔn)為P<0.05。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 飼養(yǎng)水平對綿羊胃腸道發(fā)育的影響

    隨飼養(yǎng)水平的降低,全胃、瘤胃、小腸重逐漸降低,1.5Em組的全胃重、瘤胃重顯著高于1.0Em和0.5Em組(P<0.05)。1.5Em組的全胃重分別比1.0Em、0.5Em組高37.74%、55.32%,瘤胃重分別比1.0Em、0.5Em組高39.02%、50.00%。3組間的小腸重量差異顯著(P<0.05),1.5Em組分別比1.0Em和0.5Em組高10.91%、41.86%(表3)。1.5Em組瘤胃占宰前活重比例顯著高于其他兩組(P<0.05),分別高于1.0Em、0.5Em組44.17%、38.40%。0.5Em組的小腸占宰前活重比例及小腸長度顯著低于其他兩組(P<0.05)。

    表3 飼養(yǎng)水平對綿羊胃腸道發(fā)育的影響Table 3 Effect of feeding level on the development of the gastrointestinal tract in sheep

    2.2 飼養(yǎng)水平對綿羊瘤胃發(fā)酵參數(shù)的影響

    隨飼養(yǎng)水平的降低,綿羊瘤胃液pH先升高后降低,且1.5Em組顯著低于1.0Em和0.5Em組(P<0.05),分別降低了8.48%、6.69%(表4)。NH3-N含量隨飼養(yǎng)水平的降低逐漸降低,但3組間差異不顯著(P>0.05)。1.0Em組的乙酸、丙酸、異丁酸、丁酸、異戊酸、戊酸、總酸及乙酸/丙酸均最低,且1.0Em組的丙酸含量與其他2組相比差異顯著(P<0.05),分別低于1.5Em、0.5Em組24.49%、24.70%。

    表4 飼養(yǎng)水平對綿羊瘤胃發(fā)酵參數(shù)的影響Table 4 Effect of feeding level on rumen fermentation in sheep

    2.3 飼養(yǎng)水平對綿羊瘤胃消化酶活性的影響

    隨飼養(yǎng)水平的降低,α-淀粉酶活性先降低后升高并且3組之間的差異顯著(P<0.05),1.5Em組分別比1.0Em、0.5Em組高102.07%、53.35%(表5)。脂肪酶活性和胃蛋白酶活性均隨飼養(yǎng)水平的降低而逐漸降低,且1.5Em組顯著高于其他兩組(P<0.05),1.5Em組脂肪酶分別比1.0Em、0.5Em組高76.45%、108.36%;胃蛋白酶分別比1.0Em、0.5Em組高63.20%、122.74%。

    表5 飼養(yǎng)水平對綿羊瘤胃消化酶活性的影響Table 5 Effect of feeding level on the activity of the digestive enzymes in the rumen

    2.4 飼養(yǎng)水平對綿羊瘤胃微生物區(qū)系的影響

    飼養(yǎng)水平對阿勒泰羊瘤胃微生物區(qū)系具有顯著影響(表6),瘤胃內(nèi)容物中真菌、原蟲的相對含量1.5Em組顯著高于1.0Em和0.5Em組(P<0.05),1.0Em和0.5Em組之間差異不顯著(P>0.05)。1.5Em組的真菌相對含量分別比1.0Em、0.5Em組高197.0%、228.9%,原蟲相對含量分別比1.0Em、0.5Em組高392.5%、212.7%。1.5Em組的產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌、白色瘤胃球菌的相對含量與1.0Em組相比差異顯著(P<0.05),但與0.5Em組相比差異不顯著(P>0.05),3組間的黃色瘤胃球菌相對含量差異均不顯著(P>0.05)。

    表6 飼養(yǎng)水平對阿勒泰羊瘤胃微生物區(qū)系的影響Table 6 Effect of feeding level on rumen microbial flora in Altay sheep

    3 討論

    3.1 飼養(yǎng)水平對綿羊胃腸道發(fā)育的影響

    反芻動物的胃腸道發(fā)育程度對動物的生產(chǎn)性能具有決定性作用[21],胃腸道的發(fā)育受遺傳因素和環(huán)境因素的影響,相對而言環(huán)境作為后天調(diào)控胃腸道發(fā)育的主要因素,更易于調(diào)控。瘤胃和小腸是反芻動物消化系統(tǒng)中最重要的器官,飼糧進(jìn)入瘤胃經(jīng)過充分的發(fā)酵,微生物消化后,送入小腸進(jìn)行吸收,發(fā)育良好的胃腸道對促進(jìn)飼糧消化吸收、提高飼糧轉(zhuǎn)化利用和充分發(fā)揮動物生產(chǎn)潛力具有重要的意義[22]。田豐等[23]報(bào)道,飼糧的營養(yǎng)水平顯著影響巴美肉羊的胃腸道和內(nèi)臟器官發(fā)育,高營養(yǎng)水平顯著提高了巴美肉羊的瘤胃及小腸重。祁敏麗等[24]的研究表明,隨飼糧營養(yǎng)水平的降低,湖羊羔羊的內(nèi)臟器官、胃腸道發(fā)育質(zhì)量及占宰前活重指數(shù)均顯著降低,且顯著抑制了瘤胃的發(fā)育。呂小康[25]以不同營養(yǎng)水平的飼糧飼喂海門山羊羔羊,結(jié)果發(fā)現(xiàn)隨飼糧營養(yǎng)水平的升高,山羊羔羊瘤胃重及瘤胃占復(fù)胃及宰前活重的比例均隨飼糧營養(yǎng)水平的升高而逐漸升高。本試驗(yàn)中隨飼養(yǎng)水平的降低,阿勒泰羊胃腸道重及其占宰前活重的比例均降低,這與前人的研究結(jié)果一致,這說明飼養(yǎng)水平顯著影響阿勒泰羔羊胃腸道發(fā)育。這可能是高飼養(yǎng)水平下動物所攝取的飼糧營養(yǎng)水平較高,進(jìn)入消化道后促進(jìn)了瘤胃及小腸肌肉的發(fā)育而使得其重量增大[26],也可能是在高飼養(yǎng)水平下飼糧的消化與代謝產(chǎn)生的刺激使消化道的重量增加并促進(jìn)消化道肌肉的發(fā)育[27]。

    3.2 飼養(yǎng)水平對綿羊瘤胃發(fā)酵參數(shù)的影響

    瘤胃是反芻動物獨(dú)有的消化器官,穩(wěn)定的瘤胃內(nèi)環(huán)境對反芻動物至關(guān)重要。pH、氨態(tài)氮(NH3-N)、揮發(fā)性脂肪酸(VFA)是評價(jià)瘤胃內(nèi)環(huán)境的主要指標(biāo),也反映了瘤胃的健康水平與發(fā)酵狀況[28]。pH是直觀反映瘤胃發(fā)酵情況的重要參數(shù)指標(biāo),瘤胃正常發(fā)酵的pH范圍為5.5~7.5[29]。本試驗(yàn)中瘤胃pH為6.69~7.31,均在正常范圍內(nèi),其規(guī)律為隨飼養(yǎng)水平的下降pH先升高后降低,說明飼養(yǎng)水平顯著影響瘤胃發(fā)酵情況,這與白大洋[30]在西門塔爾牛上的研究結(jié)果一致。這可能是因?yàn)殡S飼糧營養(yǎng)水平的提高,瘤胃中乙酸、丙酸比例升高進(jìn)而導(dǎo)致瘤胃pH下降。瘤胃中NH3-N主要來源于飼糧中的蛋白質(zhì)、非蛋白氮、微生物蛋白以及尿素循環(huán),其濃度高低主要反映瘤胃中微生物氮的供應(yīng)狀況[31]。過高和過低的NH3-N濃度,都不利于瘤胃微生物的生長,過高造成氮浪費(fèi),甚至引起動物氨中毒,過低會阻礙瘤胃微生物分解纖維素的效率[32],動物生產(chǎn)性能降低。Thao等[33]研究表明,促進(jìn)微生物繁殖生長的NH3-N適宜濃度為5~30 mg·dL-1,本試驗(yàn)中瘤胃NH3-N含量為5.88~7.61 mg·dL-1,均在正常范圍內(nèi),適于瘤胃微生物的生長。反芻動物70%~80%能量由瘤胃中的VFA提供[34],而乙酸、丙酸、丁酸是最主要的VFA,占VFA的95%左右,當(dāng)瘤胃液pH≥7時(shí),瘤胃上皮對VFA的吸收快慢依次為乙酸、丙酸、丁酸,反之則相反[1],這也可能是1.0Em、0.5Em組瘤胃液乙酸、丁酸含量顯著低于1.5Em組的原因之一。而1.0Em組的VFA含量最低,可能是在1.0Em飼養(yǎng)水平下瘤胃上皮對其吸收效率最佳。王堯悅[35]報(bào)道,飼糧的營養(yǎng)水平顯著影響VFA的含量。王桂超等[36]在對蒙古羔羊進(jìn)行營養(yǎng)限制后瘤胃中的VFA、異丁酸、丁酸、戊酸含量也顯著降低。夏傳齊[37]的研究也表明,高營養(yǎng)水平飼糧顯著提高荷斯坦奶公牛瘤胃液VFA、乙酸、丙酸、丁酸含量,本試驗(yàn)結(jié)果與上述報(bào)道相一致,這表明營養(yǎng)水平對反芻動物瘤胃發(fā)酵具有調(diào)控作用,顯著影響瘤胃發(fā)酵。

    3.3 飼養(yǎng)水平對綿羊瘤胃消化酶活性的影響

    動物品種、年齡、飼糧營養(yǎng)水平、消化道部位、外源酶制劑以及神經(jīng)和體液[38]是影響消化酶活性的重要因素,家畜對所攝入的營養(yǎng)物質(zhì)的消化程度與消化酶活性直接相關(guān)[39],動物的生長發(fā)育和生產(chǎn)與攝入的營養(yǎng)水平密切相關(guān),而動物胃腸道所產(chǎn)生的消化酶活性及其分泌量與動物對營養(yǎng)物質(zhì)消化吸收程度呈正相關(guān)[40]。陳軍強(qiáng)等[41]報(bào)道,對小尾寒羊進(jìn)行營養(yǎng)限飼后,瘤胃中纖維素酶的活性越低,并且限飼程度愈高,纖維素酶的活性降低程度越大。景小平等[42]對冷季補(bǔ)飼藏羊進(jìn)行研究表明,藏羊冷季補(bǔ)飼量越大,瘤胃及小腸的消化酶活性越強(qiáng),從而提高了藏羊的生長性能。本試驗(yàn)中除動物所攝入的營養(yǎng)水平不同外,其他因素均相同,其結(jié)果表明,試驗(yàn)羊隨采食量水平的降低,瘤胃酶活性逐漸降低,也進(jìn)一步說明采食量水平與消化酶活性顯著相關(guān)。

    3.4 飼養(yǎng)水平對綿羊瘤胃微生物區(qū)系的影響

    反芻動物出生后,隨著與母畜及周圍環(huán)境接觸,逐漸建立瘤胃微生物區(qū)系并不斷完善,瘤胃中微生物主要有細(xì)菌、真菌和原蟲,瘤胃微生物結(jié)構(gòu)和組成對于維持瘤胃內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)、促進(jìn)飼料消化吸收和動物的健康具有重要的作用[43],因此,調(diào)控瘤胃微生物區(qū)系在反芻動物營養(yǎng)研究中占有舉足輕重的作用。瘤胃微生物區(qū)系的組成受諸多因素的影響,其中飼糧是最重要的因素。產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌、白色瘤胃球菌、黃色瘤胃球菌是主要的纖維降解菌[44],針對瘤胃中主要的纖維降解菌,前人研究結(jié)果并不一致。王堯悅等[45]研究報(bào)道,隨飼糧營養(yǎng)水平的提高,灘羊瘤胃中黃色瘤胃球菌的數(shù)量均顯著升高。王斌星等[46]報(bào)道,隨飼糧能量水平的提高,育肥牦牛黃色瘤胃球菌的數(shù)量有降低的趨勢,但對產(chǎn)琥珀酸絲狀桿菌和白色瘤胃球菌無顯著影響。而另一方面,瘤胃原蟲含量在營養(yǎng)調(diào)控方面具有極大的負(fù)面效應(yīng),原蟲會阻礙纖維物質(zhì)的利用率,也會大大降低瘤胃中整個(gè)微生物蛋白質(zhì)的有效合成[47]。有研究結(jié)果表明,飼糧中添加大蒜油和植物提取物可顯著降低瘤胃原蟲含量[48-49],顯著提高反芻動物對飼糧的利用率[50]。本試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨營養(yǎng)水平的降低,真菌、原蟲相對含量顯著降低。黃色瘤胃球菌的相對含量3組之間無顯著差異,但1.0Em組相對含量最高,且原蟲含量最低,這表明1.0Em飼養(yǎng)水平可使動物對營養(yǎng)物質(zhì)的利用效率達(dá)到最佳。本試驗(yàn)是以控制飼糧采食量水平為基礎(chǔ),而使動物所攝入的營養(yǎng)水平不同對瘤胃微生物區(qū)系進(jìn)行調(diào)控,3組之間的瘤胃微生物相對含量各不同的原因可能是,在本試驗(yàn)條件下3組試驗(yàn)羊所攝入的營養(yǎng)水平不同,進(jìn)而影響了瘤胃微生物區(qū)系。

    4 結(jié)論

    在本試驗(yàn)條件下,綿羊瘤胃發(fā)酵參數(shù)中的pH先升高后降低、NH3-N含量逐漸降低,在1.0Em飼養(yǎng)水平下瘤胃對VFA的吸收最佳,真菌、原蟲的相對含量顯著降低有效改善了瘤胃微生物區(qū)系。

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