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    外施肌醇對黃瓜幼苗低溫抗性的影響

    2021-03-14 05:54:04苗田田余宏軍蔣衛(wèi)杰
    中國蔬菜 2021年2期
    關(guān)鍵詞:肌醇抗壞血酸黃瓜

    苗田田 李 強(qiáng) 余宏軍 劉 鵬 郝 佳 蔣衛(wèi)杰

    (中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所,北京 100081)

    黃瓜(Cucumis sativusL.)起源于亞熱帶地區(qū),喜溫不耐寒,對低溫敏感性較高(安志信 等,2006)。我國是世界上黃瓜栽培面積最大的國家,作為設(shè)施栽培最重要的蔬菜作物之一,隨著設(shè)施栽培的普及推廣,黃瓜在我國北方地區(qū)的反季節(jié)栽培中易受到低溫影響,引起產(chǎn)量和品質(zhì)的大幅度下降(李彩霞 等,2019)。在我國冬季和早春栽培中黃瓜受到低溫傷害,幼苗生長緩慢或者停止生長,葉片黃化萎縮,嚴(yán)重時能夠造成植株死亡(李淑菊等,2020)。因此,提高黃瓜的低溫抗性在生產(chǎn)中有重要作用。

    肌醇(inositol),又稱環(huán)己六醇,分子式為C6H12O6,相對分子質(zhì)量為180.16,有9 種異構(gòu)體,較重要且普遍存在的是肌肉肌醇(myo-inositol,MI)(楊楠 等,2017),本試驗(yàn)中使用的肌醇即肌肉肌醇。肌醇在植物生長和發(fā)育過程中參與信號傳導(dǎo)、營養(yǎng)儲存、細(xì)胞壁生成、滲透調(diào)節(jié)(Majumder et al.,1997;Loewus &Murthy,2000;Pendaries et al.,2005;Sengupta et al.,2012)等生命活動。肌醇也是抗壞血酸(ascorbate,ascorbic acid,AsA)的底物之一(圖1),AsA 作為植物重要的抗氧化劑,在植物受到低溫、強(qiáng)光、鹽脅迫和干旱等脅迫時含量增加,它是植物體內(nèi)活性氧(ROS)清除劑(Rao et al.,1995;Mittler,2002;Yurena et al.,2014)。肌醇合成AsA 過程中的關(guān)鍵酶是肌醇加氧酶(MIOX),研究發(fā)現(xiàn),與野生型擬南芥相比,過表達(dá)MIOX轉(zhuǎn)基因擬南芥植株AsA 含量增加了2~3 倍(Lorence et al.,2004),過表達(dá)MIOX轉(zhuǎn)基因植株葉片肌醇含量顯著低于野生型擬南芥肌醇含量(Endres &Tenhaken,2009);在轉(zhuǎn)基因SlMIOX番茄上外施肌醇能夠提高AsA 含量,同時提高番茄的逆境抗性(Munir et al.,2020)。

    肌醇作為細(xì)胞中重要的一類糖類物質(zhì),近年來開始受到人們關(guān)注。脅迫條件下外施肌醇的水稻、玉米和小麥幼苗抗氧化酶活性顯著提高,丙二醛(MDA)和過氧化氫含量顯著降低(郭元飛 等,2014;姚慧和夏凱,2014;袁紅梅 等,2014)。大麥發(fā)芽過程中添加肌醇、α-淀粉酶、纖維素酶、蛋白酶、植酸酶和庫爾巴哈值都顯著提高(張善飛 等,2012)。但是目前外施肌醇在蔬菜上的應(yīng)用以及對肌醇代謝相關(guān)基因水平變化的研究還鮮見報(bào)道。本試驗(yàn)以黃瓜材料9930 為研究對象,苗期低溫條件下噴施肌醇,觀測在冷脅迫下黃瓜外觀、干鮮質(zhì)量變化,以及植株抗冷性相關(guān)生理指標(biāo);并采用RT-PCR 技術(shù),分析肌醇代謝相關(guān)基因在低溫脅迫下的響應(yīng)和水平變化,為外施肌醇對黃瓜抗冷性的影響提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    試驗(yàn)于2017 年10—12 月在中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所無土栽培課題組人工氣候室內(nèi)進(jìn)行,選用材料為黃瓜(Cucumis sativus)遺傳背景清晰的測序品種 9930(由本所顧興芳老師贈與,本課題組自行繁種)。選取飽滿的黃瓜種子進(jìn)行催芽,用50 ℃溫水浸泡30 min,5%次氯酸鈉溶液遮光浸泡15 min,清水沖洗2~3 次,放置于28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培育24 h,種子露白后在穴盤中播種育苗。待黃瓜長至三葉一心,選用生長狀態(tài)一致的幼苗進(jìn)行低溫和1 次噴施肌醇處理。肌醇濃度為0.8 g·L-1,由國藥集團(tuán)生化試劑公司提供。

    1.2 試驗(yàn)處理與取樣時間

    試驗(yàn)分別在常溫和低溫人工氣候室進(jìn)行,相對濕度為65%,光照強(qiáng)度為150 μmol·m-2·s-1,光周期為12 h/12 h(晝/夜)。設(shè)置3 個處理:常溫對照(CK),晝夜溫度為28 ℃/18 ℃,葉面噴施0 g·L-1肌醇(即噴施蒸餾水,下同);低溫對照(T1),保持晝夜溫度為6 ℃,葉面噴施0 g·L-1肌醇;低溫處理(T2),保持晝夜溫度為6 ℃,葉面噴施0.8 g·L-1肌醇,以葉片均勻附著一層小水珠為準(zhǔn)。每個處理100 株,3 次重復(fù),每個重復(fù)包含3 株黃瓜葉片。

    1.3 植物生物量的測定

    低溫處理72 h 后,將CK、T1 處理和T2 處理的黃瓜幼苗轉(zhuǎn)移至常溫條件下培養(yǎng)6 d 回暖,回暖后用萬分之一天平測定植株鮮質(zhì)量,將植株鮮樣置于烘箱105 ℃殺青15 min,80 ℃恒溫72 h,然后用電子天平稱量植株干質(zhì)量。

    1.4 電解質(zhì)外滲率的測定

    電解質(zhì)外滲率的測定參考張平艷等(2014)的方法,分別在低溫處理后0、3、6、12、24、48、72 h 取黃瓜葉片樣品,每個處理用打孔器取0.5 g鮮樣,用蒸餾水洗凈后浸泡在20 mL 蒸餾水中,抽氣3 次,每次20 min,放置2 h,其間多次搖動,測定此時的電導(dǎo)率,記為EC1。將組織沸水浴10 min,使得組織完全被殺死,冷卻至室溫后測定此時的電導(dǎo)率,記為EC2。同時測定蒸餾水的電導(dǎo)率記為EC,試驗(yàn)重復(fù)3 次。電解質(zhì)外滲率(El)的計(jì)算公式為:El=100 ×(EC1 -EC)/(EC2 -EC)。

    1.5 生理指標(biāo)的測定

    分別在低溫處理后0、3、6、12、24、48、72 h 取黃瓜葉片樣品,AsA、總抗壞血酸(Total AsA,T-AsA)和脫氫抗壞血酸(DHA)含量參照Zhang 等(2016)的方法測定;脯氨酸、丙二醛含量的測定參考王學(xué)奎(2006)的方法;采用試劑盒(蘇州科銘生物技術(shù)有限公司,中國)測定H2O2、含量;采用試劑盒(蘇州科銘生物技術(shù)有限公司,中國)測定抗氧化酶SOD(超氧化物歧化酶)、POD(過氧化物酶)、CAT(過氧化氫酶)活性;可溶性糖和可溶性蛋白含量分別采用蒽酮比色法和考馬斯亮藍(lán)染色法測定。

    1.6 實(shí)時熒光定量PCR(qRT-PCR)分析

    分別在低溫處理后0、3、6、12、24、48、72 h 取黃瓜葉片,葉片用錫紙包裹迅速置于液氮中,保存在超低溫冰箱中。采用Trizol 方法提取植物樣品中的總RNA(Zhang et al.,2016),用滅菌的超純水溶解RNA,并用NanoDrop(Bio-Rad,美國)測定樣品RNA 濃度和OD260/OD280值,然后根據(jù)所測濃度調(diào)節(jié)最終RNA 濃度為1 000 ng·μL-1,并用試劑盒(Fermentas,美國)對樣品RNA 進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,反轉(zhuǎn)錄合成的cDNA 即為qRT-PCR 的模板。qRT-PCR 的體系共15 μL,其中包含:7.5 μL iQ SYBR Green Supermix,目的基因上下游引物(10 μmol·L-1)各0.3 μL,cDNA 模板0.75 μL,滅菌超純水6.15 μL。試驗(yàn)中全部的qRT-PCR 均以黃瓜管家基因Actin作為內(nèi)參基因,其熒光定量值作為計(jì)算內(nèi)標(biāo),參照Livak 和Schmittgen(2001)的2-ΔΔCt方法計(jì)算樣品目的基因相對表達(dá)量,每個樣品均設(shè)置3 次技術(shù)性重復(fù)。

    試驗(yàn)中根據(jù)測序黃瓜9930 材料數(shù)據(jù)庫中的基因序列,用Primer 5.0 設(shè)計(jì)不同目的基因的特異性引物(表1),所有引物合成和測序委托生工生物工程(上海)股份有限公司完成。qRT-PCR 將在iQTM5 多重實(shí)時熒光定量PCR 儀器(Bio-Rad,美國)上進(jìn)行,具體程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)變性30 s;40個PCR 循環(huán)(95 ℃變性5 s,再60 ℃退火30 s);溶解曲線分析以20 ℃·s-1快速升溫至95 ℃,迅速降低(20 ℃·s-1)至65 ℃持續(xù)15 s,再以0.1 ℃·s-1的速度升高至95 ℃,在達(dá)到退火溫度時采集熒光。

    表1 特異性引物設(shè)計(jì)

    1.7 數(shù)據(jù)處理

    采用SPSS 16.0 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理及結(jié)果分析,采用Duncan 法進(jìn)行多重比較及差異顯著性分析。采用Graphpad Prism 5.0 作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 低溫脅迫下外施肌醇對黃瓜幼苗長勢、幼苗生物量和電解質(zhì)外滲率的影響

    由圖2 可以看出,低溫處理72 h 后,T1 處理的植株第1 片真葉葉脈變黃,第3 片真葉整體變黃失綠且萎縮,T2 處理的植株第1 片真葉葉邊緣變黃,第3 片真葉受傷害較小。

    低溫脅迫回暖6 d 后,T2 處理的植株干、鮮質(zhì)量均顯著高于T1 處理,但顯著低于CK,可見低溫脅迫下植株干、鮮質(zhì)量降低,噴施肌醇對黃瓜幼苗冷害有緩解作用。低溫脅迫下植株的電解質(zhì)外滲率明顯增加,且呈持續(xù)升高的趨勢。低溫處理后0~12 h,T1 和T2 處理的電解質(zhì)外滲率升高但兩處理間無顯著差異,處理24 h 后T1 處理的電解質(zhì)外滲率顯著高于T2 處理。其中低溫處理48 h 時T1 與T2 處理相差最大,T2 處理的電解質(zhì)外滲率比T1 處理降低了20.44%(圖3)。

    2.2 低溫脅迫下外施肌醇對黃瓜幼苗抗壞血酸含量的影響

    由圖4 可知,在低溫條件下黃瓜幼苗葉片中AsA、T-AsA 和DHA 含量呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢。T2 處理的AsA 含量在處理后12 h 達(dá)到最大值,此時T2 和T1 處理分別比CK 增加了131.27%和46.49%;在處理后12 h 和24 h,T2 處理的AsA 含量顯著高于T1 處理,且在處理后72 h,T2 處理的AsA 含量顯著高于T1 處理和CK。T2 處理的T-AsA含量在處理后12 h 達(dá)到最大值,是CK 的2.91 倍,T1、T2 和CK 三者之間呈現(xiàn)顯著差異。低溫條件下T1 和T2 處理的DHA 含量整體看來沒有顯著差異。在低溫處理后3 h 時,T2 處理的DHA 含量顯著高于CK;低溫處理后12 h 和24 h,T1 和T2 處理的DHA 含量顯著高于CK;而在低溫處理后72 h,T1 和T2 處理的DHA 含量顯著低于CK。

    2.3 低溫脅迫下外施肌醇對黃瓜幼苗MDA、H2O2、和滲透物質(zhì)含量的影響

    隨著低溫處理時間的延長,黃瓜幼苗葉片中的MDA 含量呈持續(xù)升高的趨勢(表2),處理48 h 時,T1、T2 和CK 三者之間的MDA 含量差異顯著,與CK 相比,T1 和T2 處理的MDA 含量分別增加了103.03%和75.76%。低溫處理6~72 h,T1 和T2處理黃瓜幼苗葉片的H2O2含量顯著高于CK,且T1 處理在低溫后12~48 h 一直顯著高于T2 處理。低溫處理3~6 h 和24~72 h,T1 和T2 處理的含量顯著高于CK,在低溫處理48~72 h,T1 處理的含量顯著高于T2 處理。

    低溫處理后黃瓜幼苗葉片中脯氨酸含量顯著高于CK,處理24 h 時T2 處理的脯氨酸含量顯著高于T1 處理,比T1 處理提高了155.50%。隨著低溫處理時間的延長,黃瓜幼苗葉片中可溶性蛋白含量呈先增加后降低的趨勢,T1 和T2 處理的可溶性蛋白含量從處理12 h 開始顯著高于CK。低溫處理下黃瓜幼苗葉片中可溶性糖含量整體呈增加的趨勢,在低溫處理24 h 和48 h,T2 處理的可溶性糖含量顯著高于T1 處理,分別比T1 處理高出54.62%和17.02%;在低溫處理72 h 時,T1 和T2 處理的可溶性糖含量與CK 相比分別提高了124%和149%,均與CK 差異顯著。

    2.4 低溫脅迫下外施肌醇對黃瓜幼苗抗氧化酶的影響

    如圖5 所示,與CK 相比,T1 和T2 處理的抗氧化酶活性均有提高的趨勢。在低溫處理后0~6 h 內(nèi),T1、T2 處理的SOD 和POD 活性沒有顯著差異;低溫處理24 h 后,T2 處理的SOD 和POD活性一直高于T1 處理,且24 h 時達(dá)到最高,并與T1 處理差異顯著;在72 h 時,T2 處理的POD 和CAT 活性顯著高于CK 和T1 處理,此時T2 處理的POD 和CAT 活性分別比CK 提高了62.44%和83.87%。

    2.5 低溫脅迫下外施肌醇對黃瓜幼苗肌醇代謝相關(guān)基因表達(dá)水平的影響

    由圖6-A 可見,低溫處理和外施肌醇能夠顯著影響肌醇代謝相關(guān)基因的表達(dá)水平。肌醇代謝相關(guān)酶有肌醇半乳糖苷合酶(Gols)、磷脂酰肌醇合酶(PIS)和肌醇加氧酶MIOX(Taji et al.,2002;Pendaries et al.,2005;Zhuo et al.,2012),其中肌醇加氧酶基因CsMIOX1迅速響應(yīng),低溫處理后3 h 其表達(dá)水平顯著高于其他基因,T2 處理的CsMIOX1基因相對表達(dá)量超出T1 處理的2 倍左右。對CsMIOX1基因進(jìn)行低溫處理72 h 內(nèi)水平變化分析發(fā)現(xiàn)(圖6-B),低溫脅迫處理3~12 h,CsMIOX1的相對表達(dá)量增加,且外施肌醇的T2 處理的CsMIOX1的相對表達(dá)量一直顯著高于T1 處理,3 h 時T2 處理CsMIOX1的相對表達(dá)量最大,與CK 相比,T1 處理和T2 處理的CsMIOX1表達(dá)量分別上升了3.68 倍和10.64 倍;12 h 時,T1、T2處理與CK 相比分別上升1.44、3.65 倍。在處理后期,T2 處理和T1 處理的CsMIOX1表達(dá)水平?jīng)]有顯著差異。說明低溫條件下外施肌醇能夠改變肌醇代謝基因的表達(dá)水平,其中CsMIOX1基因水平強(qiáng)烈響應(yīng)低溫脅迫和噴施外源肌醇。

    3 討論與結(jié)論

    低溫脅迫是影響植物正常生長的不利因素之一,尤其是早春和冬季黃瓜設(shè)施栽培中,低溫是作物生長的主要限制因子。有研究發(fā)現(xiàn)外源肌醇能夠提高水稻低溫抗性(郭元飛 等,2014),但是肌醇在蔬菜作物上的應(yīng)用研究鮮有報(bào)道。與常規(guī)噴施外源物質(zhì)不同的是,肌醇是AsA 合成過程肌醇途徑的底物,說明肌醇除了作為滲透物質(zhì)調(diào)節(jié)細(xì)胞滲透壓,還可以作為底物合成關(guān)鍵的抗氧化物質(zhì)AsA(Valluru &Ende,2011)。AsA 作為植物逆境條件下產(chǎn)生的非酶抗氧化物質(zhì),在植物受到低鹽、臭氧、紫外線、低氮、低溫脅迫時含量提高(Zhang et al.,2016),AsA 能夠?qū)2O2還原為脫氫抗壞血酸(DHA),AsA 和DHA 在抗壞血酸-谷胱甘肽循環(huán)中相互轉(zhuǎn)化(許英 等,2015)。本試驗(yàn)結(jié)果表明,整體來看,低溫脅迫下黃瓜幼苗中AsA 和T-AsA含量有所增加,且噴施肌醇可以進(jìn)一步提高AsA及T-AsA 的含量。

    本試驗(yàn)中低溫處理初期,T1、T2 處理的黃瓜幼苗MDA、H2O2和含量顯著增加,但是二者沒有顯著差異。植物受到脅迫產(chǎn)生活性氧激活抗氧化酶系統(tǒng),通過自身抗氧化酶活性來清除活性氧維持正常代謝(Miller,2004;Rubio et al.,2005),低溫處理開始階段噴施肌醇的T2 處理的抗氧化酶系統(tǒng)活性和滲透物質(zhì)含量與未噴施肌醇的T1 處理沒有顯著差異。低溫處理12 h 時,T2 處理的AsA和T-AsA 含量最高,且顯著高于T1 處理;此時T2 處理的H2O2含量顯著低于T1 處理,但T1 和T2 處理的抗氧化酶系統(tǒng)活性還沒有顯著差異。低溫處理3 h 時,與CK 相比噴施肌醇的T2 處理的DHA 含量顯著增加,說明低溫開始后植株內(nèi)已有的AsA 在清除活性氧之后被氧化為DHA(Noctor,2006)。低溫處理12~48 h 時,T2 處理的H2O2含量一直顯著低于T1 處理,從24 h 開始,T2 處理的SOD 和POD 活性才開始高于T1 處理,抗氧化酶活性的升高使植株抗性增加(錢恒彥 等,2019),此時T2 處理的脯氨酸和可溶性糖含量顯著高于T1處理;至低溫處理48 h 時,T2 處理的過氧化氫含量、含量、MDA 含量均顯著低于T1 處理,可能是由于植株累積的AsA 能夠清除活性氧,減少了抗氧化酶系統(tǒng)壓力,從而植株受低溫?fù)p傷較小。以上現(xiàn)象說明,在低溫處理開始后,外施肌醇的植株內(nèi)迅速累積AsA,葉片吸收肌醇后生成更多的AsA(Lorence et al.,2004;Endres &Tenhaken,2009),這個結(jié)果與在轉(zhuǎn)基因番茄上飼喂肌醇提高了AsA 含量結(jié)果一致(Munir et al.,2020)。

    有研究發(fā)現(xiàn)MIOX基因與抗性顯著相關(guān)。MIOX基因受環(huán)境脅迫調(diào)控,干旱條件誘導(dǎo)MIOX表達(dá),過表達(dá)MIOX基因能夠提高植株抗氧化酶活性和抗堿性,在水稻中過表達(dá)OsMIOX能夠通過降低轉(zhuǎn)基因植株內(nèi)自由基含量來提高水稻抗旱性(王海光 等,2007;Duan et al.,2012;Chen et al.,2015)。與野生型植株相比,過表達(dá)MIOX4擬南芥轉(zhuǎn)基因植株的AsA 含量提高了2~3 倍(Lorence et al.,2004);飼喂肌醇后過表達(dá)MIOX轉(zhuǎn)基因擬南芥內(nèi)肌醇含量一直低于野生型植株(Endres &Tenhaken,2009)。根據(jù)本試驗(yàn)研究結(jié)果,低溫處理誘導(dǎo)黃瓜幼苗CsMIOX1表達(dá),外施肌醇后肌醇加氧酶作用的底物增加,CsMIOX1進(jìn)一步被誘導(dǎo)表達(dá),從而生成更多抗壞血酸抵抗低溫脅迫,此結(jié)果與Munir 等(2020)的研究結(jié)果一致。

    本試驗(yàn)結(jié)果表明,低溫脅迫下外施肌醇能夠顯著增加植株干鮮質(zhì)量,降低電解質(zhì)外滲率,緩解低溫?fù)p害。肌醇作為底物生成更多抗壞血酸,抗壞血酸的累積能夠清除活性氧,抗氧化酶系統(tǒng)活性升高;此外,肌醇加氧酶基因表達(dá)水平在外施肌醇后顯著上升,進(jìn)一步說明MIOX 發(fā)揮作用使肌醇生成了更多抗壞血酸。綜上所述,外施肌醇能夠提高黃瓜幼苗的抗壞血酸含量和抗氧化酶活性,提高植株的抗冷性。

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