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    江西省番茄綿疫病菌對嘧菌酯的敏感性檢測及抗性風險分析

    2021-02-05 09:38:12何烈干李湘民黃瑞榮馬輝剛
    農藥學學報 2021年1期
    關鍵詞:疫霉嗎啉嘧菌

    何烈干, 鄒 芬, 李湘民, 黃瑞榮, 馬輝剛

    (江西省農業(yè)科學院 植物保護研究所,南昌 330200)

    番茄綿疫病,又稱褐色腐敗病、番茄掉蛋,是由寄生疫霉Phytophthora parasitica Dast、辣椒疫霉Phytophthora capsici Leonian 或茄疫霉Phytophthora melongenae Sawada 引起的一種卵菌病害[1-2]。該病在世界各地均有分布,一般田塊可導致減產30%~40%,重病田可達60%以上,甚至絕收,經濟損失嚴重[3-5]。番茄為江西主栽蔬菜之一,近年來種植面積大幅增加,但在每年5—6 月份的豐水季節(jié),綿疫病常暴發(fā)流行,發(fā)生面積數(shù)萬公頃,產量損失達35%以上 (文獻數(shù)據(jù)來源于地方農業(yè)局)。因生產上缺乏有效抗病品種,目前化學防治仍是防治該病的最主要措施[6]。長期以來,甲霜靈一直是防治綿疫病等卵菌病害的特效藥劑,但疫霉菌等易對其產生抗藥性,部分地區(qū)疫霉菌已對該藥產生了抗藥性[7-10],因此,近年來轉而使用其他類型的殺菌劑來防治該病害。嘧菌酯是先正達公司根據(jù)天然產物strobilurins A 仿生合成的一種甲氧基丙烯酸酯類殺菌劑,其作用機制是通過抑制細胞色素b 和c1 之間的電子傳遞而阻止細胞的ATP 合成,從而抑制其線粒體呼吸而發(fā)揮殺菌作用[11]。嘧菌酯殺菌活性高、殺菌譜廣、持效期長、高效低毒,對卵菌病害具有良好的殺菌活性[12-14],但由于其作用位點單一,因此,病原菌對其易產生抗性[15]。目前國內外尚未見有關番茄綿疫病菌對嘧菌酯的敏感性報道。為掌握番茄綿疫病菌對該藥抗性現(xiàn)狀,本研究測定了番綿疫病菌對嘧菌酯的敏感性,并對其抗性風險進行分析,以指導田間科學用藥和殺菌劑抗性管理。

    1 材料與方法

    1.1 供試材料

    1.1.1 供試培養(yǎng)基

    10% V8 培養(yǎng)基:將100 mL V8營養(yǎng)汁、0.2 g CaCO3、900 mL 去離子水和18 g瓊脂粉置于三角瓶中,搖勻,在121 ℃高壓蒸汽滅菌鍋中滅菌20 min。待冷卻至60 ℃時倒入培養(yǎng)皿中。

    選擇性培養(yǎng)基:待上述培養(yǎng)基冷卻至50 ℃左右時,加入利福平20 mg、氨芐青霉素200 mg 和制霉菌素100 mg,混勻,倒入平皿中。

    1.1.2 供試菌株 于2018—2019 年在江西于都、安義、萬載、瑞昌、余江、貴溪和樂平等番茄主產區(qū)的綿疫病重發(fā)田塊采集典型病果,先用自來水沖洗3 min,再用滅菌水沖洗。在病健交界處切取0.5 cm × 0.5 cm 方形小塊,經75%酒精和3%次氯酸鈉消毒后置于選擇性培養(yǎng)基上。待形成微小菌落后,在其邊緣切取菌絲塊,移入不含抗菌素的10% V8 培養(yǎng)基中培養(yǎng)。如此重復3 次,得到純培養(yǎng)物。共分離純化得到58 株菌株,根據(jù)形態(tài)學特征和ITS 測序結果,鑒定病原菌均為辣椒疫霉Phytophthoracapsici Leonian。將菌株轉接至試管斜面上,加入滅菌石蠟油覆蓋菌面,在10 ℃左右避光保存?zhèn)溆?。菌株命名采用地名漢語拼音首字母+序號,如YX1 表示永新地區(qū)1 號菌株。

    1.1.3 試驗藥劑 96% 嘧菌酯 (azoxystrobin)原藥,由先正達 (蘇州) 作物保護有限公司提供。試驗時先用少許丙酮溶解并配制成質量濃度為100 μg/mL 的母液,待10% V8 培養(yǎng)基溶化后,并冷卻至50 ℃時,加入適量母液,充分振蕩搖勻后倒入培養(yǎng)皿中,即制得含梯度濃度藥劑的平板。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 辣椒疫霉對嘧菌酯的敏感性檢測 采用菌絲生長速率法[16]測定番茄辣椒疫霉對嘧菌酯的敏感性。先進行預備試驗,將供試菌株活化后轉接到含 0、0.1、1、10、100 μg/mL 嘧菌酯的 10%V8 培養(yǎng)基中,25 ℃黑暗培養(yǎng)7 d 后,根據(jù)菌絲生長情況將嘧菌酯質量濃度梯度設置為0.05、0.15、0.45、1.35 和4.05 μg/mL,以不加農藥作為對照。在菌落邊緣打取直徑5 mm 的菌餅,菌面朝下置于含系列質量濃度嘧菌酯的培養(yǎng)基平板中央。每處理重復3 次。在生化培養(yǎng)箱中于25 ℃黑暗培養(yǎng)5~7 d,當對照中菌落直徑達到7 cm 以上時,用十字交叉法測量各處理的菌落增長直徑,計算抑制率。將抑制率轉化成幾率值,求出毒力回歸方程y = a + bx,根據(jù)毒力回歸方程計算有效抑制中濃度 (EC50) 和相關系數(shù) (r)。

    1.2.2 抗性突變體的獲得及抗性水平的測定 將敏感菌株YD5 在10% V8 培養(yǎng)基上于25 ℃下培養(yǎng)7 d 后,在黑暗條件下,將菌落置于距紫外燈 (20 W、波長254 nm) 下方約20 cm 處照射120 s,保持菌落處于黑暗環(huán)境中60 min, 以降低光修復。用直徑為5 mm 的打孔器在菌落邊緣迅速打取菌餅,轉接至含10 μg/mL 嘧菌酯的10% V8 培養(yǎng)基上,立即置于恒溫培養(yǎng)箱中于25 ℃下黑暗培養(yǎng),能夠迅速生長的為疑似突變體。將這些疑似突變體轉移到不含嘧菌酯的10% V8 培養(yǎng)基上活化培養(yǎng)3 代,轉接至含 10 μg/mL 嘧菌酯的 10% V8 培養(yǎng)基上驗證其抗藥性。將各抗性突變體轉接至含不同質量濃度嘧菌酯的10% V8 培養(yǎng)基上培養(yǎng),計算藥劑對菌絲生長的抑制率 (%),并求出毒力回歸方程y = a + bx 和 EC50值 (μg/mL)。

    根據(jù)各突變體的EC50值與其親本菌株 (YD5)的比值計算抗性倍數(shù),根據(jù)抗性倍數(shù)將各突變體的抗性水平劃分為敏感、低抗、中抗和高抗[17],其中:抗性倍數(shù)≤3 的為敏感菌株 (S);3<抗性倍數(shù)≤10 的為低抗菌株 (LR);10<抗性倍數(shù)≤100 的為中抗菌株 (MR);100<抗性倍數(shù)的為高抗菌株(HR)。

    1.2.3 突變體的抗性遺傳穩(wěn)定性 將抗性突變體轉接到無藥10% V8 培養(yǎng)基上連續(xù)轉代培養(yǎng)8 代后,分別計算各突變體第2 代、第4 代、第6 代和第8 代對嘧菌酯的抗性倍數(shù),根據(jù)其抗性倍數(shù)的變化情況,分析抗藥性狀在無藥劑選擇壓力下的遺傳穩(wěn)定性。

    1.2.4 抗性突變體的生物學性狀

    致病力:待抗性突變體和敏感菌株在10%V8 培養(yǎng)基上黑暗培養(yǎng)7 d 后,收集游動孢子制成每毫升含104個游動孢子的懸浮液,采用葉片噴霧法于番茄苗期5~6 葉時接種。單個菌株接種10 株,重復3 次。接種后24 h 內保持相對濕度100%、黑暗和25 ℃;此后保持相對濕度75%以上、光暗交替和25~28 ℃。7~9 d后調查病情,比較敏感菌株和突變體的致病力差異。

    生長速率及產孢量:在抗性突變體和敏感菌株的菌落邊緣打取直徑5 mm 的菌餅,菌面朝下置于10% V8 培養(yǎng)基上于25 ℃下黑暗培養(yǎng),每隔2 d 測量菌落直徑,計算菌株平均生長速率。培養(yǎng)7 d 后用無菌水洗下孢子囊,置于4 ℃冰箱中預冷30 min,促使游動孢子充分釋放,用血球計數(shù)板測定各菌株的游動孢子量。

    孢子萌發(fā)率:將相同濃度的抗性突變體和敏感菌株的游動孢子懸浮液 (1 × 104個/mL) 100 μL均勻涂布于水瓊脂培養(yǎng)基上,23 ℃培養(yǎng)24 h 后,在顯微鏡下觀測每個處理的休止孢子,共觀察10 個視野,計算孢子萌發(fā)率。

    1.2.5 交互抗藥性測定 采用菌絲生長速率法[18],測定敏感菌株YD5 及其突變體對烯酰嗎啉和甲霜靈的敏感性 (EC50),分析嘧菌酯抗性突變體對烯酰嗎啉和甲霜靈是否有交互抗性。

    2 結果與分析

    2.1 病原菌對嘧菌酯的敏感性

    測定了2018—2019 年從江西各地采集分離到的58 個辣椒疫霉菌株對嘧菌酯的敏感性。結果(表1) 表明:嘧菌酯對辣椒疫霉菌絲生長有較強的抑制作用,其 EC50值介于 0.186 7~1.623 9 μg/mL之間,平均 EC50值為 (0.860 6 ± 0.331 8) μg/mL,EC50值最高值與最低值相差8.7 倍,菌株群體對嘧菌酯的敏感性差異不顯著。從EC50值地理分布看,萬載菌株平均EC50值最高,達1.022 2 μg/mL,其次為安義,平均EC50值為0.924 0 μg/mL,瑞昌和于都的最低,平均 EC50值分別為0.739 8 μg/mL和0.737 4 μg/mL,地區(qū)間差異較小。

    表1 江西辣椒疫霉對嘧菌酯的敏感性Table 1 Sensitivity to azoxystrobin of Phytophthora capsici in Jiangxi Province

    對所測58 個菌株的EC50值進行階段分布劃分,統(tǒng)計每個階段內菌株分布的數(shù)目及頻率。結果顯示 (圖 1),EC50值在 0.15~0.45、>0.45~0.75、>0.75~1.05、>1.05~1.35 和>1.35~1.65 μg/mL 的菌株數(shù)分別為 6 株、15 株、21 株、12 株和4 株,分別占樣本總數(shù)的10.34%、25.86%、36.21%、20.69% 和6.90%。從圖中可以看出,58 個菌株對嘧菌酯的敏感性頻率分布呈單峰曲線,接近正態(tài)分布,未出現(xiàn)抗藥性亞群體,因此,本次測定的病原菌對嘧菌酯的平均EC50值(0.860 6 ± 0.331 8) μg/mL,可作為江西省辣椒疫霉對嘧菌酯的敏感性基線。

    2.2 抗性突變體的獲得及抗性水平

    通過紫外線照射敏感菌株YD5 (EC50值接近敏感基線) 120 s 后,從20 000 個菌餅中獲得4 個抗性突變體 (YD5-1、YD5-2、YD5-3 和 YD5-4),突變頻率僅為0.02%,說明江西辣椒疫霉對嘧菌酯產生抗性變異的頻率較低。

    菌絲生長速率法測定的抗性突變體在含系列質量濃度 (0、1、2、5、20、10 和 20 μg/mL) 嘧菌酯V8培養(yǎng)基上的生長量結果見表2。4 個突變體的 EC50值在 4.452 1~7.812 1 μg/mL 之間,抗性倍數(shù)介于5.3~9.3 之間,均屬于低抗水平。

    表2 辣椒疫霉抗性突變體對嘧菌酯的敏感性Table 2 Sensitivity to azoxystrobin of resistant mutants of Phytophthora capsici

    2.3 突變體的抗性遺傳穩(wěn)定性

    經紫外線照射得到的4 個低抗性菌株YD5-1、YD5-2、YD5-3 和YD5-4,在無藥培養(yǎng)基上連續(xù)轉代培養(yǎng)8 代后發(fā)現(xiàn),各抗性菌株的抗性水平變化不顯著,抗性倍數(shù)均介于3~10 之間,仍為低抗菌株 (表3),說明上述4 個突變體的抗性能穩(wěn)定遺傳。

    表3 番茄辣椒疫霉突變體對嘧菌酯抗性遺傳穩(wěn)定性Table 3 Genetic stability of resistance to azoxystrobin in the mutants of Phytophthora capsici

    2.4 抗性突變體的生物學性狀

    從表4 可以看出:除突變體YD5-4 的致病力低于親本菌株外,其余突變體與親本菌株YD5 的致病力間不存在顯著性差異;突變體YD5-2 的生長速率與親本菌株相當,其余3 個突變體均顯著下降;在產孢量方面,突變體YD5-3 與親本菌株不存在顯著性差異,而突變體YD5-1、YD5-2 和YD5-4 的產孢量顯著低于親本菌株,說明抗藥性產生后其無性繁殖能力有明顯變化;親本菌株與所有抗性突變體的孢子萌發(fā)率不存在顯著差異性。

    表4 抗藥突變體與親本菌株間生物學性狀比較Table 4 Comparison of biological traits between resistant mutants and their parent

    2.5 交互抗藥性

    采用菌絲生長速率法測定了敏感菌株YD5及其4 個嘧菌酯抗性突變體對烯酰嗎啉和甲霜靈的敏感性。結果表明,4 個抗性突變體對烯酰嗎啉的抗性倍數(shù)為0.8~1.4,對甲霜靈的抗性倍數(shù)為0.8~1.3。4 個突變體對烯酰嗎啉和甲霜靈的敏感性表現(xiàn)一定程度的降低或增加,說明嘧菌酯與烯酰嗎啉和甲霜靈之間均不存在交互抗性 (表5)。

    表5 突變體和敏感菌株YD5 對烯酰嗎啉和甲霜靈的敏感性比較Table 5 Sensitivity comparison of resistant mutants and susceptible strain YD5 to dimethomorph and metalaxyl

    3 結論與討論

    本研究結果表明:2018—2019 年從江西省番茄主產區(qū)采集分離得到的58 個辣椒疫霉菌株對嘧菌酯仍有較高的敏感性,其對嘧菌酯的敏感性基線為 (0.860 6 ± 0.331 8) μg/mL。58 個菌株的菌絲生長對嘧菌酯的敏感性頻率呈正態(tài)分布,田間未出現(xiàn)抗性菌株,這與Emil 等[19]、Qin 等[20]和姜彥全等[21]關于疫霉菌的研究結果相符。鑒于此,目前江西地區(qū)仍可使用嘧菌酯防治綿疫病。但辣椒疫霉具有易變異性等特點,長期使用單一藥劑有產生抗藥性的風險,應定期加強田間菌株的抗藥性監(jiān)測,掌握病原菌的敏感性變化動態(tài),適時制定防治策略。

    為評估辣椒疫霉對嘧菌酯的抗性風險,本研究通過紫外線照射敏感菌株,成功誘導出4 個低抗菌株,未獲得中、高抗菌株,抗性突變率為0.02%。對突變體的抗藥性進行遺傳穩(wěn)定性分析,發(fā)現(xiàn)經過8 次轉代培養(yǎng)后,其抗性水平變化不顯著,抗性能夠穩(wěn)定遺傳,且突變體的致病力與親本菌株不存在顯著性差異,多數(shù)突變體的生長速率與產孢量均顯著低于親本敏感菌株,而在孢子萌發(fā)率方面兩者不存在顯著性差異。綜上可知,雖然目前生產上江西辣椒疫霉尚未出現(xiàn)抗嘧菌酯菌株,但存在抗性突變體產生的可能性,且這種抗性遺傳很穩(wěn)定,不易喪失,突變體致病力也不減弱,由此推斷,病菌對嘧菌酯的抗性風險為中等,因此,生產上應該注意對嘧菌酯抗性的管理,應注意輪用或換用作用機理不同殺菌劑。

    針對目前生產上常見的交互抗藥性問題,本研究選用生產上防治番茄綿疫病的常規(guī)藥劑烯酰嗎啉和甲霜靈與嘧菌酯進行交互抗藥性分析,證實嘧菌酯與烯酰嗎啉和甲霜靈間均不存在交互抗性。郭梁等[22]和李成斌等[23]研究認為,疫霉菌對甲霜靈和嘧菌酯不存在交互抗性;袁善奎等[18]研究表明,疫霉菌對嘧菌酯和烯酰嗎啉無交互抗性。張海良等[24]測定了江西辣椒疫霉菌對甲霜靈的敏感性,結果發(fā)現(xiàn),108 個菌株均為敏感菌株,未出現(xiàn)抗藥性病原菌亞群體,且在生產中甲霜靈對卵菌病害防效較為顯著。因此,建議生產上可將該藥劑與烯酰嗎啉、甲霜靈以及其他作用機理不同的殺菌劑混用或交替使用,以緩解殺菌劑對抗藥性的選擇壓力,延長藥劑的使用期限。

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