靳世輝張茜 羅偉濠葉友忠
作者單位:423000 郴州 1郴州市第一人民醫(yī)院神經(jīng)外科;412007 株洲 2株洲市中心醫(yī)院特需病區(qū);423000 郴州3郴州市第一人民醫(yī)院轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)研究所
膠質(zhì)瘤是顱內(nèi)常見的原發(fā)惡性腫瘤,治療方法主要以手術(shù)治療為主,輔以放療、化療等綜合治療,但是治療效果欠佳,加之復(fù)發(fā)率高,致使預(yù)后較差[1-2]。miRNA作為非編碼小分子單鏈RNA,主要參與轉(zhuǎn)錄后調(diào)控,在惡性腫瘤中發(fā)揮重要的調(diào)控作用。miR-205-5p作為一種高度保守的miRNA,既往研究顯示在多種腫瘤中差異表達(dá)并參與調(diào)控腫瘤細(xì)胞增殖和侵襲,且根據(jù)腫瘤來源和侵襲性的不同miR-205-5p還可扮演不同角色,例如在乳腺癌、前列腺癌、鼻咽癌中主要發(fā)揮抑癌作用[3-7]。但對(duì)膠質(zhì)瘤生物學(xué)功能的影響及分子作用機(jī)制目前仍未明確。本課題組前期通過生物信息學(xué)分析預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn) Runt相關(guān)因子2(runt-related gene 2,Runx2)可能是miR-205-5p的靶基因,且兩者互為靶向關(guān)系,基于此本研究進(jìn)一步深入探討miR-205-5p對(duì)膠質(zhì)瘤細(xì)胞增殖、侵襲和遷移的影響及其與Runx2的靶向關(guān)系,以期闡明膠質(zhì)瘤的發(fā)病機(jī)制及挖掘新的治療靶點(diǎn)。
1.1.1 臨床樣本 收集2018年6月至2019年12月于郴州市第一人民醫(yī)院神經(jīng)外科就診的58例新發(fā)神經(jīng)膠質(zhì)瘤患者的膠質(zhì)瘤組織和癌旁組織(距癌邊緣外≥2 cm)標(biāo)本。所有標(biāo)本均經(jīng)病理證實(shí)為神經(jīng)膠質(zhì)瘤,患者術(shù)前均未接受過任何有關(guān)神經(jīng)膠質(zhì)瘤的治療。本研究獲得郴州市第一人民醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn),患者或家屬知情同意并自愿參加。
1.1.2 細(xì)胞系 人膠質(zhì)瘤細(xì)胞株U251、T98G和人星形膠質(zhì)細(xì)胞HA均購自中國(guó)科學(xué)院生物化學(xué)與細(xì)胞生物學(xué)研究所。
1.1.3 主要試劑 miR-205-5pmimics及其陰性對(duì)照(NC mimics)由廣州銳博生物科技公司合成;miR-205-5p引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。轉(zhuǎn)染試劑 LipofectamineTM2000、RNA提取試劑TRIzol均購自Thermo Fisher公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒GoScript?Kit購自Promage公司;Real-time PCR試劑LightCycler?480 SYBR?Green I Master購自Roche公司;Transwell小室、Matrigel膠購自CORNING公司;Cell Counting Kit-8購自DOJINDO Laboratories公司;兔抗Runx2單克隆抗體、鼠抗β-actin多克隆抗體、二抗羊抗兔IgG、二抗兔抗鼠IgG均購自abcam公司;ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司。
所有細(xì)胞均接種至含10%胎牛血清、100 IU/mL青霉素和100 μg/mL鏈霉素酶的DMEM培養(yǎng)基,并置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中,避光常規(guī)培養(yǎng)和傳代。
選取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的U251細(xì)胞和T98G細(xì)胞,用胰蛋白酶消化后,按1×105/孔接種于6孔板中常規(guī)培養(yǎng),待細(xì)胞融合度達(dá)75%左右,按照LipofectamineTM2000(Invitrogen)轉(zhuǎn)染試劑說明書的方法,將miR-205-5p mimics及NC mimics分別轉(zhuǎn)染至U251細(xì)胞和T98G細(xì)胞,于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)12 h。收集各組細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
采用TRIzol Regent(Invitrogen)提取膠質(zhì)瘤組織和細(xì)胞中的總RNA,并用NanoDrop 2000檢測(cè)樣品的濃度和純度。按照GoScriptrTM逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書的操作步驟,將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,使用SYBR Prime Script miRNA RT PCR試劑盒在LC480系統(tǒng)檢測(cè)miR-205-5p表達(dá)水平。PCR反應(yīng)序列:miR-205-5p上游引物為 5′-TCCACCGGAGTCTGTCTCAT-3′,下游引物為 5′-GCTGTCAACGATACGCTACG-3′;U6 snRNA上游引物為 5′-GGGTGCTCGTTCGGC-3′,下游引物為5′-TGGTGTCGTGAGTCG-3′。PCR 反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性 1 min;95 ℃變性 10 s,60 ℃延伸 30 s,40個(gè)循環(huán)。以 U6 snRNA 為內(nèi)參,用 2-ΔΔCt法計(jì)算 miR-205-5p mRNA的相對(duì)表達(dá)水平。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
將轉(zhuǎn)染12 h后的U251和T98G細(xì)胞按1×103/孔的密度接種至4個(gè)96孔板,每組設(shè)6個(gè)復(fù)孔,并置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。分別于鋪板12 h、24 h、48 h和72 h取出1板,向每孔加入20 μL CCK-8溶液,繼續(xù)孵育2 h,用酶標(biāo)儀測(cè)定450 nm波長(zhǎng)處的光密度(OD)值,并以O(shè)D值為縱坐標(biāo),時(shí)間為橫坐標(biāo),繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
將轉(zhuǎn)染12 h后的U251細(xì)胞和T98G細(xì)胞以500/孔的密度接種至6孔板,每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔,并于37℃、5%CO2中培養(yǎng)。待克隆形成后,用PBS洗滌,4%多聚甲醛固定20 min,0.5%結(jié)晶紫染色20 min,自來水洗滌并干燥后,再用PBS清洗,拍照、計(jì)數(shù)大于50個(gè)細(xì)胞的克隆數(shù)并計(jì)算克隆形成率??寺⌒纬陕?(克隆數(shù)/接種細(xì)胞數(shù))×100%。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
將轉(zhuǎn)染后的U251和T98 G細(xì)胞分別接種于12孔板,待細(xì)胞融合至80%~90%時(shí),用無菌的10 μL槍頭在各組細(xì)胞中劃出3~5條等距平行線,然后在無血清培養(yǎng)基中培養(yǎng)24 h。分別于0 h和24 h用光學(xué)顯微鏡拍攝圖像,記錄每個(gè)時(shí)間點(diǎn)的劃痕面積,計(jì)算細(xì)胞的劃痕愈合率。
轉(zhuǎn)染24 h后的U251和T98G細(xì)胞用無血清培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞密度至5×104/mL,取100 μL加入含Matrigel膠的Transwell小室上室,在下室中加入600 μL含血清的培養(yǎng)基。常規(guī)培養(yǎng)48 h后,侵襲細(xì)胞用4%多聚甲醛固定,0.5%結(jié)晶紫染色,在光學(xué)顯微鏡下隨機(jī)選擇5個(gè)視野計(jì)數(shù)侵襲細(xì)胞數(shù)。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
通過生物信息學(xué)軟件TargetScan 7.2預(yù)測(cè)miR-205-5p與Runx2的結(jié)合位點(diǎn)。將預(yù)測(cè)的Runx2 mRNA 3′UTR區(qū)域與miR-205-5p的結(jié)合位點(diǎn)片段(WT)和突變片段(MUT)合成并克隆到psiCHECK-2雙熒光素酶報(bào)告基因載體,構(gòu)建重組質(zhì)粒Runx2-3′UTR-WT和Runx2-3′UTR-MUT。將上述兩種重組質(zhì)粒與NC mimics或miR-205-5p mimics共轉(zhuǎn)染至U251細(xì)胞,于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)36 h。裂解細(xì)胞30 min后,取10 μL細(xì)胞裂解液加入96孔熒光檢測(cè)板中,按照雙熒光素酶檢測(cè)系統(tǒng)操作步驟檢測(cè)細(xì)胞的熒光素酶活性。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
收集各組細(xì)胞并提取細(xì)胞總蛋白,用BCA法測(cè)定蛋白濃度后,加入loading buffer,沸水孵育5 min后,各組取等量蛋白質(zhì)樣品,用10%SDS-PAGE分離,轉(zhuǎn)至PDVF膜,5% 的脫脂牛奶4℃封閉1 h,加入 Runx2 一抗(1∶1 000)和 β-actin 一抗(1∶2 000)并于4℃孵育過夜后,用PBST沖洗3次,再加入標(biāo)記了辣根過氧化物酶的二抗并于室溫孵育2 h,用PBST沖洗3次,加入ECL發(fā)光試劑,曝光、顯影,用凝膠成像儀成像,并掃描灰度值以計(jì)算蛋白相對(duì)表達(dá)水平。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
采用SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計(jì)量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,膠質(zhì)瘤組織與癌旁組織中miR-205-5p的表達(dá)水平比較采用配對(duì)t檢驗(yàn)。膠質(zhì)瘤細(xì)胞U251和T98G與人星形膠質(zhì)細(xì)胞HA中miR-205-5p的表達(dá)水平比較采用單因素方差分析,若組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,進(jìn)一步采用Dunnett檢驗(yàn)進(jìn)行多重比較。各細(xì)胞處理組與對(duì)照組的比較均采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。生長(zhǎng)曲線比較采用重復(fù)測(cè)量方差分析。miR-205-5p表達(dá)水平與臨床特征的關(guān)系采用χ2檢驗(yàn),以雙側(cè)P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
qRT-PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,膠質(zhì)瘤組織中miR-205-5p表達(dá)水平低于癌旁組織,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=7.922,P<0.01),見圖 1;HA、U251 和 T98G 細(xì)胞中 miR-205-5p的表達(dá)水平差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=245.232,P<0.001);與HA細(xì)胞相比,U251和T98G細(xì)胞中miR-205-5p的表達(dá)均降低(均P<0.01),見圖1B。
根據(jù)膠質(zhì)瘤組織中miR-205-5p的表達(dá)均值(1.23)將患者分為 miR-205-5p高表達(dá)組(23例)和低表達(dá)組(35例)。miR-205-5p的表達(dá)水平與腫瘤直徑和病理分級(jí)均有關(guān)(均 P<0.05),而與患者年齡、性別無關(guān)(均 P>0.05),見表 1。
圖1 miR-205-5p在膠質(zhì)瘤組織和細(xì)胞系中的表達(dá)Fig.1 Expression of miR-205-5p in glioma tissues and cell lines
表1 miR-205-5p表達(dá)與膠質(zhì)瘤患者臨床病理特征的關(guān)系[n(%)]Tab.1 Correlation between the expression of miR-205-5p and clinicopathological features in patients with glioma[n(%)]
qRT-PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miR-205-5p mimics后,U251細(xì)胞和T98G細(xì)胞中miR-205-5p表達(dá)水平均高于 NC mimics組(t=7.393,P=0.002;t=22.480,P<0.001),見圖2A。CCK-8、平板克隆形成、劃痕和Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)結(jié)果顯示,與NC mimics組比較,過表達(dá)miR-205-5p可抑制U251和T98G細(xì)胞的增殖(F=12.137、14.223,均 P<0.001)、克隆形成(t=3.983,P=0.016;t=4.240,P=0.013)、遷移(t=4.965,P=0.007;t=3.161,P=0.034)和侵襲(t=5.889,P=0.004;t=4.918,P=0.007)能力,見圖 2B~F。
圖2 miR-205-5p對(duì)U251和T98G細(xì)胞增殖、克隆形成、遷移和侵襲能力的影響Fig.2 Effects of miR-205-5p expression on the proliferation,clone formation,migration and invasion of U251 and T98G cells
通過生物信息學(xué)軟件TargetScan 7.2分析和預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn),miR-205-5p可與 Runx2 mRNA的 3′-UTR結(jié)合,見圖3A。雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)測(cè)定結(jié)果表明,與NC mimics組相比,miR-205-5p mimics與Runx2-3′UTR-WT共轉(zhuǎn)染可抑制U251細(xì)胞的熒光素酶活性(t=5.543,P=0.005),而與 Runx2-3′UTR-MUT共轉(zhuǎn)染時(shí)的熒光素酶活性無明顯變化(t=0.563,P=0.603),表明miR-205-5p直接與Runx2 mRNA的3′UTR 相互作用,見圖3B。Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示,與NC mimics組相比,過表達(dá)miR-205-5p可下調(diào)U251和T98G細(xì)胞的Runx2的蛋白表達(dá)水平(t=14.102、12.325,均 P<0.001),見圖 3C。
圖3 miR-205-5p靶向調(diào)控Runx2的表達(dá)Fig.3 miR-205-5p targeted the expression of Runx2
膠質(zhì)瘤生長(zhǎng)迅速,侵襲性強(qiáng),手術(shù)后易復(fù)發(fā)等特點(diǎn)是其預(yù)后較差的主要原因。miRNA作為生命過程的重要調(diào)控分子,近年來已被證實(shí)在細(xì)胞生長(zhǎng)、增殖、凋亡、遷移、能量代謝及免疫功能等過程中起重要的調(diào)控作用[8]。在膠質(zhì)瘤中miRNA也發(fā)揮重要作用,如miR-93-5p通過靶向MMP2可抑制膠質(zhì)瘤細(xì)胞增殖和轉(zhuǎn)移[9],而miR-125a-3p通過靶向抗氧化基因NRG1抑制膠質(zhì)瘤進(jìn)展[10]。MENG 等[11]在膠質(zhì)瘤組織中發(fā)現(xiàn)miR-205-5p呈低表達(dá)且與其惡性程度相關(guān),而過表達(dá)miR-205-5p抑制了膠質(zhì)瘤細(xì)胞增殖能力。本研究同時(shí)檢測(cè)miR-205-5p在膠質(zhì)瘤組織和細(xì)胞系中的表達(dá),同樣發(fā)現(xiàn)miR-205-5p呈低表達(dá),且低表達(dá)患者的惡性程度更高。進(jìn)一步構(gòu)建miR-205-5p過表達(dá)的膠質(zhì)瘤U251和T98G細(xì)胞模型,也發(fā)現(xiàn)過表達(dá)miR-205-5p能顯著抑制膠質(zhì)瘤細(xì)胞生長(zhǎng)、克隆形成、遷移和侵襲的能力,提示在膠質(zhì)瘤中miR-205-5p主要發(fā)揮抑癌基因功能而參與其進(jìn)展,可能是膠質(zhì)瘤潛在的診斷及治療靶點(diǎn)。
Runx2是Runx轉(zhuǎn)錄因子家族中的成員之一,作為一種轉(zhuǎn)錄因子最早被發(fā)現(xiàn)能通過激活Wnt信號(hào)通路促進(jìn)骨肉瘤的發(fā)生發(fā)展[12],隨后發(fā)現(xiàn)在乳腺癌、結(jié)直腸癌、非小細(xì)胞肺癌等發(fā)生發(fā)展中Runx2也發(fā)揮重要的調(diào)控作用[13]。近年來研究也顯示Runx2可能參與調(diào)控膠質(zhì)瘤細(xì)胞增殖和侵襲轉(zhuǎn)移。Runx2在膠質(zhì)瘤組織中高表達(dá),可通過cAMP/PKA信號(hào)通路促進(jìn)膠質(zhì)瘤細(xì)胞的惡性表型[14],目前已被認(rèn)為是多種miRNA的靶點(diǎn)調(diào)控膠質(zhì)瘤的發(fā)生發(fā)展,如miR-122[15]、miR-152[16]、miR-217[17]等。本研究通過生物信息學(xué)預(yù)測(cè)miR-205-5p與Runx2 mRNA存在結(jié)合位點(diǎn),提示Runx2可能是miR-205-5p的靶標(biāo);雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)證實(shí)miR-205-5p可與Runx2的3′UTR區(qū)域結(jié)合,且在膠質(zhì)瘤細(xì)胞中過表達(dá)miR-205-5p能下調(diào)Runx2蛋白的表達(dá)水平,說明miR-205-5p靶向調(diào)控Runx2的表達(dá),提示miR-205-5p可能通過靶向Runx2調(diào)控膠質(zhì)瘤的發(fā)生發(fā)展。
綜上所述,miR-205-5p在膠質(zhì)瘤組織和細(xì)胞系中低表達(dá),過表達(dá)miR-205-5p可抑制膠質(zhì)瘤細(xì)胞的增殖、遷移和侵襲,其機(jī)制可能與靶向調(diào)控Runx2有關(guān),有望成為膠質(zhì)瘤診斷和治療的新靶點(diǎn)。