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    miR-24-3p靶向MMP-16對鼻咽癌5-8F細胞侵襲、遷移和裸鼠成瘤的影響①

    2020-09-30 06:17:32李夢嬌任建蘭劉俊玲郎錦義
    中國免疫學(xué)雜志 2020年13期
    關(guān)鍵詞:實驗檢測

    徐 杰 徐 鵬 李夢嬌 任建蘭 劉俊玲 郎錦義

    (西南醫(yī)科大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院腫瘤科,瀘州 646000)

    鼻咽癌(nasopharyngeal carcinoma,NPC)是常見的頭頸部腫瘤,具有明顯區(qū)域性,常見于我國華南地區(qū)[1]。目前我國大部分NPC患者病理類型為低分化型或未分化型非角化性癌,占比95%以上,平均自然生存時間約為18.7個月[2,3]。微小RNA(miRNA)是一類長度約22 bp的內(nèi)源性非編碼RNA,是生物體內(nèi)重要的轉(zhuǎn)錄基因調(diào)控因子,在細胞增殖與凋亡中發(fā)揮重要作用[4,5]。王路等[6]研究表明,miR-24與NPC的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。李吉茜等[7]研究表明其可抑制NPC細胞增殖。本文研究miR-24-3p 靶向作用于MMP-16對NPC 5-8F細胞侵襲、遷移和裸鼠成瘤的影響,闡明其作用機制,為NPC治療提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1材料

    1.1.1細胞組織標(biāo)本 NPC 5-8F細胞購自中國科學(xué)院細胞庫。收集NPC患者腫瘤樣本及癌旁組織34例,男18例,女16例,年齡23~67歲,平均年齡(45.13±10.25)歲;體質(zhì)量40~82 kg,平均體質(zhì)量(61.28±8.59)kg,低分化鱗狀細胞癌30例,泡狀核細胞癌患者4例。癌旁組織為用免疫組化ABC法染色距病灶2 cm的組織,光鏡下可見細胞漿或核被染成黃色或棕色,-80℃冰箱備用。

    1.1.2實驗動物 SPF級3周齡雄性裸鼠30只,由北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供,許可證號:SCXK(京)2017-0022,5只/籠,飼養(yǎng)于我院動物中心實驗室。

    1.1.3藥物與試劑 RPMI1640培養(yǎng)液、胎牛血清和0.25%胰蛋白酶均購自美國Gibco公司;MMP-16抗體購自北京傲銳東源生物科技有限公司;LipofecamineTM2000購自美國ThermoFisher公司; Reverse transcriptase Kit反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自上海聯(lián)邁生物工程有限公司;TRIzol、SYBR PCR Master Mix試劑盒購自日本TOYOBO公司;中性福爾馬林、酒精、二甲苯購自天津科密歐有限公司。

    1.1.4儀器 BS-124s 型電子天平購自北京賽多斯儀器系統(tǒng)有限公司;TDL-5 型臺式離心機購自上海安亭科學(xué)儀器廠;光學(xué)顯微鏡購自東莞市同創(chuàng)儀器有限公司;切片機購自德國Leica公司;低溫離心機購自湖南恒諾離心機有限公司;蛋白電泳及轉(zhuǎn)膜儀購自美國Bio-Rad公司;ABI9700 PCR儀購自上海賽默生物科技發(fā)展有限公司。

    1.2方法

    1.2.1建模 參考文獻[8],裸鼠右前肢皮下接種過表達miR-24 的5-8F細胞,3.5×107個/ml、0.2 ml/只,隔日觀察腫瘤生長情況及小鼠一般情況。

    1.2.2細胞培養(yǎng) NPC 5-8F細胞培養(yǎng)于含10%FBS、100 U/ml 青霉素和100 U/ml鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)基,37℃、5%CO2,取對數(shù)生長期細胞進行實驗。

    1.2.3細胞轉(zhuǎn)染 細胞傳代培養(yǎng)于6孔板,培養(yǎng)24 h后進行細胞轉(zhuǎn)染。根據(jù)轉(zhuǎn)染試劑盒說明書將目的基因miR-24-3p轉(zhuǎn)染于5-8F細胞(轉(zhuǎn)染前1 d接種2.5×105個細胞至含2 ml完全培養(yǎng)基的6孔板,鋪板密度為45%左右,siRNA濃度為30 nmol/L,6 h 后棄培養(yǎng)基換成完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),48 h后收集細胞,進行后續(xù)實驗。

    1.2.4RT-PCR檢測MMP-16及miR-24-3p表達 TRIzol試劑提取組織樣本及各組細胞總RNA,測定RNA濃度和純度,莖環(huán)法逆轉(zhuǎn)錄,Reverse transcriptase Kit反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,PCR擴增,SYBR PCR Master Mix試劑盒檢測miR-24-3p和MMP-16表達水平。引物均采用Primer 3網(wǎng)站設(shè)計,由Takara公司合成。MMP-16引物序列:F:5′-CTGAAGCTGATGAAGCAGCC-3′,R:5′-AGTCCAAGAG-AATGGCCGAG-3′,miR-24-3p引物序列:F:5′-TGCTGTGTAGTGTTTCCTACTTTATGG-3′,R:5′-CCTGTTGTAGTGTTTCCTTTTATGGAG-3′。

    1.2.5熒光素酶報告實驗檢測miR-24與MMP-16靶向關(guān)系 擴增包含靶基因與miRNA互補位點的3′UTR序列及mutant序列,上下游引物5′端各含有不同的酶切位點,電泳檢測目的條帶,觀察條帶大小,試劑盒純化PCR產(chǎn)物備用,配制連接反應(yīng)混合液,接種/轉(zhuǎn)染后于96孔板加入1×Passive Lysis Buffer,20 μl/孔,移液槍反復(fù)吸打裂解細胞吸出15 μl,加入至luciferase assay substrate混勻,酶標(biāo)儀500 nm處檢測并記錄數(shù)據(jù),2次測得數(shù)據(jù)的比值代表各孔樣本的相對熒光強度。

    1.2.6Transwell實驗檢測細胞侵襲情況 將轉(zhuǎn)染后的細胞傳代培養(yǎng)于基質(zhì)膠預(yù)包被的Transwell小室,1×105個/ml,取細胞懸液200 μl加入Transwell小室上室,無血清培養(yǎng)液培養(yǎng),小室下層加入含血清的細胞培養(yǎng)液。培養(yǎng)24 h后用無菌棉簽擦去小室內(nèi)細胞,用結(jié)晶紫對侵襲至小室下層的細胞進行染色,每孔隨機選取5個視野進行計數(shù),每組設(shè)3個復(fù)孔,重復(fù)3次。

    1.2.7Western blot檢測蛋白表達 取對數(shù)期細胞,吸除培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基保存于滅菌離心管。1 200 r/min 離心10 min后加入裂解液重懸細胞,BCA法測定蛋白濃度,加入5×SDS凝膠電泳緩沖液,100℃變性 10 min,待電泳分離完全后,半干法將蛋白移至PVDF膜,5%脫脂奶粉室溫封閉2 h后加入各檢測蛋白的特異性一抗(GAPDH 1∶10 000)和(兔抗MMP-16,1∶1 000),4℃孵育過夜,加二抗(1∶1 000),孵育2 h,TBS洗凈,以β-actin為內(nèi)參,顯色液顯色后行吸光度分析,計算各蛋白相對表達量。

    1.2.8劃痕實驗檢測細胞遷移 實驗前1 d于12孔板背面劃平行的5條直線,消毒滅菌后置于無菌環(huán)境備用。第2天將細胞傳代培養(yǎng)于12孔板,1×105個/ml,轉(zhuǎn)染48 h,10 μl槍頭垂直于培養(yǎng)板背面橫線劃痕。預(yù)冷PBS洗滌3次,每次5 min,加入無血清培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)24 h,分別于0 h和24 h于熒光顯微鏡下每孔隨機選取3個視野記錄。

    1.2.9免疫組化檢測MMP-16陽性表達 取各組裸鼠腫瘤組織樣本,多聚甲醛固定,制成組織切片,MMP-16免疫組化染色:將組織切片用二甲苯溶液浸泡5 min/次,重復(fù)2次;后梯度乙醇水合,依次在無水乙醇、95%乙醇、85%乙醇、70%乙醇中浸泡5 min;PBS浸洗3次,加入2滴3% H2O2-甲醇溶液,孵育10 min,PBS清洗3次;加入血清封閉20 min,一抗、二抗依次室溫孵育30 min,PBS清洗3次,DAB顯色、復(fù)染、脫水封片,顯微鏡下觀察組織中蛋白表達。

    1.3統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS20.0軟件和GraphPda Prism5軟件對數(shù)據(jù)進行處理和分析,方差分析采用單因素方差分析,當(dāng)組間差異有統(tǒng)計學(xué)意義時,進一步采用SNK方法進行比較;P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義,本研究所有檢驗均為雙側(cè)檢驗。

    2 結(jié)果

    2.1miR-24-3p表達情況 與NPC腫瘤樣本相比,癌旁組織miR-24-3p表達顯著升高(P<0.05,圖1A)。與空白對照組相比,陰性對照組miR-24-3p表達差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與陰性對照組相比,目的基因組miR-24-3p表達顯著升高(P<0.05,圖1B)。

    圖1 miR-24-3p表達情況Fig.1 Expressions of miR-24-3pNote:Compared with mimic-NC,*.P<0.05.

    2.2Transwell檢測細胞侵襲情況 與空白對照組相比,陰性對照組細胞侵襲情況無明顯變化,且單位面積內(nèi)侵襲細胞數(shù)目差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與陰性對照組相比,目的基因組單位面積內(nèi)侵襲細胞數(shù)目顯著降低(P<0.05),見圖2。

    圖2 Transwell檢測細胞侵襲情況(×400)

    2.3劃痕實驗檢測細胞遷移情況 與空白對照組相比,陰性對照組細胞遷移情況無顯著變化,且24 h細胞劃痕愈合率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與陰性對照組相比,目的基因組24 h細胞劃痕愈合率顯著降低(P<0.05),見圖3。

    圖3 劃痕實驗檢測細胞遷移情況(×400)Fig.3 Cell migration detected by scratch assay(×400)Note:Compared with mimic-NC,*.P<0.05.

    2.4miR-24 與MMP-16靶向關(guān)系 miR-24 與MMP-16存在互補位點,見圖4A;NPC腫瘤樣本MMP-16表達顯著高于癌旁組織(P<0.05),見圖4B;與空白對照組相比,陰性對照組MMP-16表達差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖4C;與陰性對照組相比,目的基因組MMP-16表達顯著降低(P<0.05),見圖4D;與陰性對照組相比,目的基因組MMP-16蛋白表達顯著降低(P<0.05);miR-24 mimic顯著降低MMP-16野生質(zhì)粒的熒光素酶活性,但對其突變質(zhì)粒熒光素酶活性無明顯影響,表明miR-24 與MMP-16存在靶向調(diào)控關(guān)系。

    圖4 miR-24 與MMP-16靶向關(guān)系檢測情況Fig.4 Detection on targeting relationship between miR-24 and MMP-16Note:Compared with mimic-NC,*.P<0.05.

    2.5過表達miR-24對5-8F細胞裸鼠成瘤的影響 與空白對照組相比,目的基因組裸鼠腫瘤組織miR-24-3p表達顯著升高(P<0.05,圖5A),腫瘤重量顯著降低(P<0.05,圖5B),MMP-16蛋白表達顯著降低(P<0.05,圖5C),MMP-16陽性率顯著降低(P<0.05,圖5D)。

    圖5 miR-24過表達對5-8F細胞裸鼠成瘤及MMP-16表達的影響Fig.5 Effect of miR-24 overexpression on tumor formation and MMP-16 expression in 5-8F cells in nude miceNote:Compared with Control,*.P<0.05.

    3 討論

    近年來miRNA在惡性腫瘤發(fā)生、發(fā)展中的作用受到廣泛關(guān)注。張?;ǖ萚9]研究表明,基因治療可通過抑制miRNA的翻譯來沉默對應(yīng)的靶基因,從而調(diào)節(jié)其生物學(xué)過程。田翎含等[10]研究表明,miRNA在腫瘤中可能起癌基因或抑癌基因作用。miRNA在惡性腫瘤發(fā)生、發(fā)展中主要通過2種方式發(fā)揮作用,作為抑癌因子抑制原癌基因的激活,或通過下調(diào)腫瘤抑制因子水平或下調(diào)抑癌基因表達引發(fā)癌癥并促進腫瘤生長[11]。汪祖益等[12]研究表明,miRNA在調(diào)控鼻咽癌細胞增殖、 運動、 侵襲、轉(zhuǎn)移及治療敏感性方面發(fā)揮重要作用。惡性腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移分為黏附、降解和遷移3個步驟,其轉(zhuǎn)移必須進入血管,在血液中存活,遷移出血管,侵襲外周組織。在腫瘤早期,MMP16介導(dǎo)細胞外基質(zhì)及基底膜降解,為腫瘤增殖創(chuàng)造微環(huán)境。

    本研究Transwell實驗結(jié)果顯示,miR-24-3p高表達的目的基因組細胞侵襲數(shù)目顯著降低,說明miR-24-3p高表達可有效抑制腫瘤細胞侵襲,劃痕實驗發(fā)現(xiàn)miR-24-3p高表達的目的基因組細胞的遷移能力顯著降低,說明miR-24-3p高表達可有效抑制腫瘤細胞遷移,因此miR-24-3p可靶向調(diào)控MMP-16抑制鼻咽癌5-8F細胞的生長、侵襲及遷移。

    腫瘤細胞的增殖和轉(zhuǎn)移需要水解腫瘤細胞外基質(zhì)蛋白,穿越基底膜屏障進入循環(huán)系統(tǒng),從而發(fā)生轉(zhuǎn)移。基質(zhì)金屬蛋白酶是一種能降解細胞外基質(zhì)預(yù)防腫瘤細胞侵襲轉(zhuǎn)移的金屬離子的蛋白水解酶,比較常見的為Ⅱ型:MMP-2、MMP-9,可降解細胞外基質(zhì)結(jié)構(gòu)蛋白,抑制腦膠質(zhì)瘤細胞U87的侵襲及轉(zhuǎn)移抑制[13];基質(zhì)金屬蛋白酶組織抑制劑是特異的內(nèi)生 MMPs 抑制劑[14]。趙聰?shù)萚15]研究表明MMPs抑制劑可直接或間接抑制 MMPs活性,使MMPs含量增加或Timps含量減少,破壞腫瘤細胞屏障從而抑制腫瘤細胞侵襲轉(zhuǎn)移。腫瘤從原位增殖到侵襲轉(zhuǎn)移,除必須具有降解細胞外基質(zhì)的能力外,還必須具備黏附基質(zhì)生長、遷移的能力。MMPs 是一種能降解細胞外基質(zhì)和血管基底膜的鋅離子依賴性內(nèi)肽酶,在腫瘤細胞突破基底膜屏障而浸潤轉(zhuǎn)移中起重要作用[16]。本研究顯示,miR-24-3p高表達的目的基因組鼻咽癌5-8F細胞中MMP-16蛋白表達及陽性率顯著降低且鼻咽癌5-8F細胞侵襲、遷移能力顯著降低,說明miR-24-3p可通過降低MMP-16表達抑制鼻咽癌5-8F細胞的細胞活性及增殖、遷移、侵襲等惡性生物學(xué)行為,與Kang等[17]結(jié)論一致。

    綜上所述,miR-24-3p可通過靶向MMP-16抑制鼻咽癌5-8F細胞增殖、侵襲和遷移,同時裸鼠實驗發(fā)現(xiàn)miR-24-3p可有效抑制腫瘤生長,其作用機制可能與降低MMP-16表達有關(guān)。本研究涉及的蛋白表達較少,且未涉及相關(guān)信號通路,miR-24-3p通過信號通路對裸鼠鼻咽癌的作用機制仍需進一步研究。

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