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    miR-138靶向OX40L對實驗性自身免疫性腦脊髓炎幼鼠的作用機制研究①

    2020-09-30 06:17:24趙秀英符之富符彬莎李文華
    中國免疫學(xué)雜志 2020年13期
    關(guān)鍵詞:小鼠

    趙秀英 符之富 符彬莎 李文華

    (海南省人民醫(yī)院,海南醫(yī)學(xué)院附屬海南醫(yī)院,???570311)

    自身免疫性腦炎是兒童較常見的腦部疾病。這種腦炎由多種免疫介導(dǎo),主要癥狀包括精神障礙、行為異常、記憶衰退、癲癇等癥狀,嚴(yán)重影響兒童健康,通常需要多學(xué)科聯(lián)合治療[1]。研究顯示,T細(xì)胞對全身免疫穩(wěn)態(tài)的維持至關(guān)重要[2],然而經(jīng)過十多年的研究,對自身免疫應(yīng)答過程中T細(xì)胞的分子應(yīng)答機制尚未完全明確。有研究顯示,microRNA(miRNA)是生物體內(nèi)的關(guān)鍵基因,可調(diào)節(jié)T細(xì)胞的增殖和凋亡等生物學(xué)行為,這說明miRNA對T細(xì)胞介導(dǎo)的免疫穩(wěn)態(tài)至關(guān)重要[3,4]。研究顯示,miR-138在大腦中富集,可調(diào)節(jié)多種生物學(xué)過程,如小鼠海馬神經(jīng)元中樹突棘的形態(tài)發(fā)生;也有研究表明miR-138在癌癥中具有多方面的作用,但miR-138與免疫系統(tǒng)間的互作機制尚不清楚[5-8]。因此,本研究將通過構(gòu)建實驗性自身免疫性腦脊髓炎(experimental autoimmune encephalomyelitis,EAE)小鼠模型,獲取自身免疫性腦炎中的關(guān)鍵細(xì)胞,在細(xì)胞水平探究miR-138對T細(xì)胞增殖和凋亡的影響及分子機制。

    1 材料與方法

    1.1材料

    1.1.1實驗動物 健康SPF級C57BL/6小鼠購于廣東省醫(yī)學(xué)實驗動物中心,體質(zhì)量15~18 g,5周齡,雌雄各半。

    1.1.2主要試劑 MOG35-55多肽購于上海翱博生物公司;含卡介苗弗氏完全免疫佐劑(FCA)購于上海遠(yuǎn)慕生物科技有限公司;百日咳結(jié)核桿菌毒素PTX購于美國Sigma公司;percoll分離液、FACS緩沖液購于上海穎心實驗室設(shè)備有限公司;小鼠FC Block抗體、CD45-PE抗體、TLR3抗體、TLR4抗體及FIZZ-1抗體購于北京百奧萊博科技有限公司;Lipofectamine 2000試劑盒購于美國Invitrogen公司;PrimeScript miRNA cDNA試劑盒購于大連寶生物工程有限公司;TRIzol試劑盒、CD4+T細(xì)胞陰性分選免疫磁珠試劑盒、BCA試劑盒、ECL試劑盒及定點誘變試劑盒購于北京賽因坦科技有限公司。

    1.2方法

    1.2.1構(gòu)建EAE小鼠模型 取40只C57BL/6小鼠,隨機挑選15只作為對照組,其余25只用于構(gòu)建EAE小鼠模型。將人工合成的MOG35-55多肽(200 μg)溶解于200 μl PBS緩沖液,與200 μl含4 mg/ml卡介苗的FCA在真空中完全混勻,30 min后制備完成。同時,將200 μl PBS緩沖液與等量FCA溶液乳化,用于對照組小鼠。將上述制備好的2種混合乳液在第0天分別注射于小鼠雙側(cè)背部脊椎旁分4點皮下,在各組小鼠免疫后的第0天和第2天腹腔注射200 ng PTX,至此EAE小鼠模型構(gòu)建完成。

    1.2.2EAE小鼠模型神經(jīng)功能評分 本研究中EAE小鼠模型的神經(jīng)功能評分按照6分法進行,具體評分規(guī)則如下:0分:無明顯疾病癥狀;0.5分:尾巴部分無力,出現(xiàn)拖尾癥狀;1.0分:尾巴完全癱瘓,尾巴變軟,完全無力;2.0分:雙后肢無力;2.5分:后肢部分癱瘓,單后肢完全癱瘓;3.0分:雙后肢完全癱瘓,被動翻身后不能自行恢復(fù);3.5分:雙后肢完全癱瘓,前置部分癱瘓;4.0分:四肢完全癱瘓;5.0分:瀕死狀態(tài);6.0分:死亡。

    1.2.3分離活化小膠質(zhì)細(xì)胞 取處于發(fā)病高峰期的EAE組小鼠及同時期的對照組小鼠各5只,將小鼠窒息處死后在無菌條件下獲取各組小鼠的腦組織及脊髓。在室溫條件下將腦組織與脊髓置于含0.25%胰酶及1 mmol/L的EDTA混合液中消化,15 min 后用含10%胎牛血清的IMDM培養(yǎng)基終止消化。消化后的細(xì)胞800 g離心10 min,收集離心后的細(xì)胞沉淀并使用percoll分離液分離,900 g離心 7 min 后再次收集細(xì)胞沉淀。收集的細(xì)胞沉淀置于400 μl的FACS緩沖液中重懸,加入FC Block冰浴 30 min 后800 g離心5 min,再次以50 μl的FACS重懸,調(diào)整細(xì)胞密度為1×106個/ml后加入抗CD11b-FITC及抗CD45-PE流式抗體,避光冰浴30 min 后800 g離心5 min棄上清,用FACS緩沖液重懸后使用流式細(xì)胞儀分選小膠質(zhì)細(xì)胞。

    1.2.4免疫熒光染色 取處于對數(shù)生長期的各組細(xì)胞,以1.5×105個/孔的密度接種于帶有滅菌蓋玻片的6孔板中,接種后于37℃、5%CO2的恒溫培養(yǎng)箱中孵育24 h。去除蓋玻片后按照二步雙染色法處理,在熒光顯微鏡下觀察TLR3、TLR4及FIZZ-1的表達。

    1.2.5細(xì)胞轉(zhuǎn)染 將各組處于對數(shù)生長期的細(xì)胞接種至含RPMI1640培養(yǎng)基的6孔板中,在37℃、5%CO2的恒溫培養(yǎng)箱中孵育72 h,按照Lipofectamine 2000試劑盒說明書將合成的脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染至各組細(xì)胞內(nèi),12 h后將各組細(xì)胞轉(zhuǎn)移至含完全培養(yǎng)基的6孔板中保存以用于后續(xù)實驗。

    1.2.6RT-qPCR實驗 使用TRIzol試劑盒提取各組細(xì)胞內(nèi)的總RNA,使用PrimeScript miRNA cDNA試劑盒合成cDNA,使用Step OnePlusTM實時PCR系統(tǒng)進行反應(yīng),反應(yīng)條件為95℃ 5 min,95℃ 20 s,60℃ 30 s,共進行40個循環(huán)。U6及GAPDH分別作為miR-138和OX40L mRNA的內(nèi)參,使用2-ΔΔCt法計算miR-138及OX40L mRNA的相對表達水平。引物序列如下:miR-138(F:5′-GTATTGACTAGATTAATCACTGT-3′;R:5′-TCTCCGCATCACCACAGAA-G-3′),OX40L mRNA(F:5′-CCTACATCTGCCTGC-ACTTCTC-3′;R:5′-TGATGACTGAGTTGTTCTGCA-CC-3′),U6(F:5′-CTCGCTTCGGCAGCACA-3′;R:5′-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3′),GAPDH(F:5′-GTCTCCTCTGACTTCAACAGCG-3′;R:5′-ACCACCC-TGTTGCTGTAGCCAA-3′)。

    1.2.7CD4+T細(xì)胞的分離 取對照組小鼠5只,在無菌條件下取其外周血,按照小鼠CD4+T細(xì)胞陰性分選免疫磁珠試劑盒說明書分離CD4+T細(xì)胞,F(xiàn)ACS檢測獲取的CD4+T細(xì)胞純度。

    1.2.8CD4+T細(xì)胞增殖活性檢測 取處于對數(shù)生長期的CD4+T細(xì)胞及活化小膠質(zhì)細(xì)胞,經(jīng)胰酶消化后制備成細(xì)胞懸液,在37℃、5%CO2的恒溫培養(yǎng)箱中間接共培養(yǎng)96 h,每間隔24 h使用MTT比色法檢測CD4+T細(xì)胞的增殖活性。

    1.2.9細(xì)胞凋亡檢測 自CD4+T細(xì)胞及活化小膠質(zhì)細(xì)胞間接共培養(yǎng)后,每24 h收集懸浮的T細(xì)胞,按照Annexin V-FITC-PI試劑盒說明書檢測T細(xì)胞的凋亡水平。

    1.2.10Western blot 在各組細(xì)胞按照1.2.5中的方法轉(zhuǎn)染48 h后,用RIPA裂解緩沖液提取小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)總蛋白,用BCA試劑盒檢測蛋白濃度。取適量蛋白質(zhì)在SDS-PAGE凝膠中分離,并轉(zhuǎn)移至PVDF膜。用含5%脫脂奶粉的緩沖液封閉2 h后在蛋白質(zhì)樣品中加入鼠抗人OX40L抗體(1∶1 000)或GAPDH單克隆抗體(1∶2 000)在4℃條件下孵育過夜。加入相應(yīng)的山羊抗兔二抗(1∶2 000)后在室溫下孵育1 h,使用ECL試劑盒顯影后拍照分析。

    1.2.11雙熒光素酶報告基因?qū)嶒?使用定點誘變試劑盒誘變產(chǎn)生OX40L-MUT,并將其與OX40L-WT克隆至pMIR-REPORT熒光素酶報告載體中。使用Lipofectamine 2000試劑盒將pMIR-OX40L-WT、pMIR-OX40L-MUT、miR-NC及miR-138 mimics共轉(zhuǎn)染至小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi),在37℃、5%CO2的條件下將轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞置于含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng)48 h,使用雙熒光素酶報告基因系統(tǒng)分析相對熒光素酶活性。

    1.3統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS21.0軟件分析數(shù)據(jù),t檢驗用于分析兩組間差異,單因素方差分析用于比較多組間差異,以P<0.05表示差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1EAE模型的鑒定 將40只小鼠隨機分為對照組(15只)和EAE組(25只)。EAE組小鼠自免疫后的5 d后開始發(fā)病,大部分表現(xiàn)為尾部無力,后肢無力等癥狀。在16 d左右進入發(fā)病高峰期,小鼠均出現(xiàn)四肢癱瘓甚至大小便失禁等癥狀。在25 d左右時進入緩解期,在此期間內(nèi)EAE組小鼠體重逐漸增加,癥狀有不同程度的緩解。對照組小鼠在此期間內(nèi)體重增加正常,未出現(xiàn)不良癥狀。EAE組與對照組小鼠體重及神經(jīng)功能評分變化如圖1,小鼠發(fā)病情況見表1。

    圖1 EAE小鼠模型鑒定Fig.1 Identification of EAE mouse modelNote:A.Changes in body weight of mice;B.Changes of neurological function scores in mice.

    表1 小鼠發(fā)病情況對照表

    2.2小膠質(zhì)細(xì)胞的分選與鑒定 經(jīng)抗體標(biāo)記處理后的單核細(xì)胞利用流式細(xì)胞儀分選,結(jié)果顯示EAE組小鼠中小膠質(zhì)細(xì)胞的活化比例為21%,對照組小鼠小膠質(zhì)細(xì)胞的活化比例為11%,符合預(yù)期結(jié)果,見圖2A。免疫熒光實驗結(jié)果顯示,EAE組活化小膠質(zhì)細(xì)胞TLR3、TLR4及活化小膠質(zhì)細(xì)胞特異性標(biāo)志物FIZZ-1的表達相較于對照組顯著增加,見圖2B。

    圖2 小膠質(zhì)細(xì)胞的分選與鑒定Fig.2 Sorting and identification of microgliaNote:A.Flow cytometry sorting microglial chart;B.TLR3,TLR4 and FIZZ-1 immunofluorescence staining results.

    2.3活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)miR-138的表達水平 RT-qPCR檢測結(jié)果顯示,miR-138在EAE組小鼠模型腦組織中的表達水平顯著下調(diào)(P<0.05,圖3A),同時,在分離的EAE組小鼠活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)miR-138的表達水平也顯著下調(diào)(P<0.05,圖3B),因此后續(xù)實驗選擇EAE組小鼠活化小膠質(zhì)細(xì)胞(簡稱活化小膠質(zhì)細(xì)胞)進行。RT-qPCR結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miR-138 mimics后活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)miR-138表達水平較轉(zhuǎn)染miR-NC的細(xì)胞顯著上升(P<0.05,圖3C)。將轉(zhuǎn)染miR-NC或miR-138 mimics的活化小膠質(zhì)細(xì)胞與T細(xì)胞共培養(yǎng),以MTT比色法檢測T細(xì)胞增殖,結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miR-138 mimics的活化小膠質(zhì)細(xì)胞與T細(xì)胞共培養(yǎng)會顯著抑制T細(xì)胞的增殖(P<0.05,圖3D)。凋亡結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miR-138 mimics的活化小膠質(zhì)細(xì)胞會顯著促進T細(xì)胞的凋亡(P<0.01,圖3E)。

    圖3 miR-138在活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)低表達Fig.3 Low expression of miR-138 in activated microgliaNote:A.miR-138 expression in mouse brain tissue;B.miR-138 expression in microglia;C.Transfection efficiency test;D.MTT colorimetric method to detect T cell proliferation;E.Flow cytometry to detect T cell apoptosis.#.P<0.05 vs Control group;*.P<0.05,**.P<0.01 vs miR-NC group.

    2.4OX40L是miR-138的下游靶基因 生物信息學(xué)數(shù)據(jù)庫預(yù)測結(jié)果顯示,OX40L蛋白是miR-138的下游靶基因,結(jié)合位點見圖4A。雙熒光素酶報告基因?qū)嶒烇@示,OX40L-WT組中轉(zhuǎn)染miR-138 mimics的熒光素酶活性顯著降低(P<0.01),且OX40L-MUT組中轉(zhuǎn)染miR-138 mimics對熒光素酶活性基本無影響(圖4B)。此外,Western blot結(jié)果表明,轉(zhuǎn)染miR-138 mimics后會顯著抑制活化小膠質(zhì)細(xì)胞OX40L的表達(P<0.01),RT-qPCR檢測也顯示過表達miR-138會抑制活化小膠質(zhì)細(xì)胞OX40L mRNA的表達(P<0.001,圖4C、D)。

    圖4 OX40L為miR-138的下游靶基因Fig.4 OX40L is downstream target gene of miR-138Note:A.Binding site of miR-138 and OX40L;B.Dual luciferase reporter gene test;C.Western blot detection of OX40L protein expression;D.RT-qPCR detection of OX40L mRNA protein expression.**.P<0.01,***.P<0.001 vs miR-NC group.

    2.5小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)miR-138/OX40L分子軸調(diào)控T細(xì)胞的增殖與凋亡 RT-qPCR結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miR-138 mimics會顯著上調(diào)其在活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)的表達(P<0.01,圖5A)。轉(zhuǎn)染si-OX40L或pc-OX40L會顯著下調(diào)或上調(diào)OX40L mRNA在活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)的表達(P<0.01),Western blot實驗結(jié)果與RT-qPCR結(jié)果一致,且同時過表達miR-138和OX40L并未對活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)OX40L的表達量產(chǎn)生顯著影響,圖5B、C。MTT檢測結(jié)果顯示,敲低活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)OX40L的表達會顯著抑制T細(xì)胞的增殖(P<0.05),相反,過表達OX40L會顯著促進T細(xì)胞的增殖(P<0.05),但同時過表達活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)miR-138和OX40L并未對T細(xì)胞的增殖產(chǎn)生顯著影響(P<0.05,圖5D)。凋亡結(jié)果顯示,敲低活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)OX40L的表達會促進T細(xì)胞凋亡(P<0.001),過表達OX40L則會抑制T細(xì)胞凋亡(P<0.001),同時過表達活化小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)miR-138和OX40L并未對T細(xì)胞的凋亡產(chǎn)生影響(圖5E)。

    圖5 小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)miR-138/OX40L分子軸對T細(xì)胞的增殖與凋亡的影響Fig.5 Effect of miR-138/OX40L molecular axis in microglia on proliferation and apoptosis of T cellsNote:A,B.Transfection efficiency test;C.MTT colorimetric method to detect T cell proliferation;D.Western blot detection of OX40L protein expression;E.Flow cytometry to detect T cell apoptosis.##.P<0.01 vs miR-NC group;*.P<0.05,**.P<0.01,***.P<0.001 vs Control group.

    3 討論

    兒童自身免疫性腦炎系自身免疫性反應(yīng)導(dǎo)致的中樞神經(jīng)系統(tǒng)性疾病,是由于神經(jīng)元蛋白影響神經(jīng)遞質(zhì)傳遞及興奮性的自身免疫性抗體所致。臨床中以抗N-甲基-D-天門冬氨酸受體腦炎和自身免疫性邊緣葉腦炎最為常見,其中抗N-甲基-D-天門冬氨酸受體腦炎約占所有病例的80%以上[9]。小膠質(zhì)細(xì)胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)具有免疫活性的細(xì)胞,是中樞神經(jīng)系統(tǒng)微環(huán)境變化檢測最敏感的指標(biāo)之一[10]。在正常中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi),小膠質(zhì)細(xì)胞一直處于靜止?fàn)顟B(tài),持續(xù)監(jiān)測周圍環(huán)境變化。當(dāng)中樞神經(jīng)系統(tǒng)受到外界刺激后,活化的小膠質(zhì)細(xì)胞會分泌一些重要的免疫因子,在疾病中發(fā)揮重要作用。研究顯示,小膠質(zhì)細(xì)胞的活化發(fā)生在自身免疫性腦炎的發(fā)病早期[11],且小鼠的自身免疫性腦炎通過T細(xì)胞誘導(dǎo),結(jié)合二者在時間與空間上的聯(lián)系,筆者推測小膠質(zhì)細(xì)胞與T細(xì)胞之間存在一定的互作。

    miRNA是一類內(nèi)源性非編碼RNA,可以與mRNA的3′非編碼區(qū)結(jié)合,在轉(zhuǎn)錄后影響靶基因的翻譯與表達。miR-138是中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)重要的調(diào)節(jié)因子,Ren等[12]研究顯示,miR-138通過MLK3/JNK/MAPK信號通路抑制小鼠小膠質(zhì)細(xì)胞的凋亡。本研究發(fā)現(xiàn),miR-138在EAE組小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)的水平顯著下調(diào),且過表達小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)miR-138的表達會顯著影響T細(xì)胞的增殖活性和凋亡水平,結(jié)果表明miR-138在自身免疫性腦炎的過程中發(fā)揮重要作用,且證實了筆者的前期推測。免疫共刺激分子OX40及其配體(OX40 ligand,OX40L)與T細(xì)胞的凋亡、增殖、細(xì)胞因子的表達密切相關(guān)[13]。Wang等[14]研究發(fā)現(xiàn),OX40L在小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)的表達水平對維持T細(xì)胞的增殖及多種因子的分泌提供了分子基礎(chǔ)。生物信息學(xué)數(shù)據(jù)庫預(yù)測結(jié)果顯示,OX40L與miR-138在3′非翻譯區(qū)有部分互補結(jié)合序列,并通過實驗證實OX40L是miR-138的下游靶基因。此外,過表達OX40L在小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)的表達會顯著促進T細(xì)胞的增殖并抑制凋亡,這與Wang等[14]研究結(jié)果一致。同時過表達OX40L與miR-138在小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)的表達對T細(xì)胞的增殖與凋亡并未產(chǎn)生顯著影響。

    通過上述研究發(fā)現(xiàn),EAE會導(dǎo)致小膠質(zhì)細(xì)胞活化并下調(diào)miR-138表達,同時通過miR-138/OX40L分子軸上調(diào)OX40L在小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)的表達,進而影響T細(xì)胞的增殖和凋亡,可能對EAE的治療產(chǎn)生一定效果。

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