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    響應(yīng)面法優(yōu)化苔干多糖的提取工藝及其體外抗氧化研究

    2020-08-26 12:19:06方頌平姚洪禮冉景春張志祥童夢茹
    安徽科技學(xué)院學(xué)報 2020年3期
    關(guān)鍵詞:影響實驗

    邢 爽,方頌平,姚洪禮*,冉景春,張志祥,童夢茹,閔 慧,

    (1.亳州學(xué)院 生物與食品工程系,安徽 亳州 236800;2.亳州學(xué)院 配制酒工程技術(shù)研究中心,安徽 亳州 236800)

    苔干,又稱貢菜,一年生草本植物,是安徽亳州渦陽縣義門鎮(zhèn)的名貴特產(chǎn),其富含蛋白質(zhì)、果膠及多種氨基酸、維生素和人體必須的微量元素及碳水化合物,有“天然保健品,植物營養(yǎng)素”之美稱[1]。多糖是一類普遍存在于生物體中且含量較多的天然高分子聚合物,由醛糖或酮糖通過糖苷鍵連接而成的[2]。研究發(fā)現(xiàn),植物多糖不僅是植物生物膜及其他細(xì)胞結(jié)構(gòu)中的必不可少的組成成分,同時具有多重功效如抗腫瘤、降血糖、降血脂、抑菌、抗氧化性等,且毒副作用均小[3-4]。多糖的抗氧化性是其抗腫瘤、降血壓、降血脂的作用機(jī)制之一[5-6],研究表明人類的多種疾病和氧化應(yīng)激、免疫力息息相關(guān),如多糖的抗腫瘤功能是通過增強(qiáng)機(jī)體免疫功能間接發(fā)揮抗腫瘤作用,而幾乎人體系統(tǒng)的疾病與氧化應(yīng)激密切相關(guān),多糖則可以發(fā)揮抗氧化作用降低氧化應(yīng)激水平[7-8],目前對植物多糖抗氧化性的研究主要關(guān)注在多糖清除自由基的能力上[9-10]。

    本文主要研究苔干多糖的提取工藝、除蛋白純化工藝及其抗氧化性,采用單因素結(jié)合響應(yīng)面的實驗方法優(yōu)化苔干多糖的提取、除蛋白純化工藝,探討苔干多糖清除DPPH·自由基、超氧陰離子自由基及羥基自由基的能力,以期為充分開發(fā)苔干的營養(yǎng)價值提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    苔干產(chǎn)地為安徽亳州渦陽縣義門鎮(zhèn)苔干種植基地。

    無水乙醇、三氯乙酸、苯酚、正丁醇、七水合硫酸亞鐵、Tris-HCl 緩沖液、水楊酸、濃硫酸、氯仿等均為分析純,購于國藥試劑公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    超微粉碎機(jī),可見分光光度計,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,JK-500B超聲波儀,恒溫干燥箱等均為國產(chǎn)常規(guī)儀器設(shè)備。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 苔干的預(yù)處理 選取質(zhì)量佳的苔干,80 ℃烘干,得到苔干的干物質(zhì),粉碎,過80目篩網(wǎng),得到苔干粉,密封保存至干燥器中。

    1.3.2 苔干多糖提取工藝研究

    1.3.2.1 料液比對苔干多糖提取率的影響 采用超聲波輔助水提醇沉法提取苔干中的多糖。準(zhǔn)確稱取苔干粉末5.0 g,加入到250 mL錐形瓶中,分別按照料液比1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50(g/mL)加入80 ℃的蒸餾水,置于超聲波中輔助浸提,超聲功率設(shè)置為350 W,提取溫度為80 ℃,提取時間為120 min,提取次數(shù)為1次。提取完畢后過濾,將濾液用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀減壓濃縮,其中水浴溫度設(shè)置為60~70 ℃,轉(zhuǎn)速為50 r/min,最終使?jié)饪s液的體積為原濾液體積的20%。在強(qiáng)烈攪拌的狀態(tài)下向濃縮的提取物中緩慢加入4倍體積乙醇(95%),4 ℃下靜置12 h[11],抽濾,得沉淀,烘干,得到粗多糖,稱重并測定多糖的含量,計算提取率。

    1.3.2.2 提取時間對苔干多糖提取率的影響 選擇最佳的料液比,提取時間分別設(shè)置為60、90、120、150、180 min,其他實驗條件同1.3.1.1,考察提取時間對苔干多糖得率的影響。

    1.3.2.3 提取溫度對苔干多糖提取率的影響 選擇最佳的料液比及提取時間,提取溫度與加入的蒸餾水溫度分別設(shè)置為50、60、70、80、90 ℃,其他實驗條件同1.3.2.1,考察提取溫度對苔干多糖得率的影響。

    1.3.2.4 提取次數(shù)對苔干多糖提取率的影響 選擇最佳的料液比、提取時間及提取溫度,提取次數(shù)分別設(shè)置為1、2、3、4 次,其他實驗條件同1.3.2.1,考察提取次數(shù)對苔干多糖提取率的影響。

    1.3.2.5 超聲功率對苔干多糖提取率的影響 選擇最佳的料液比、提取時間、提取溫度及提取次數(shù),超聲功率分被設(shè)置為100、150、200、250、300、350、400 W,其他實驗條件同1.3.2.1節(jié)所述,考察超聲功率對苔干多糖提取率的影響。

    1.3.2.6 苔干多糖提取的響應(yīng)面實驗 結(jié)合單因素的實驗結(jié)果,設(shè)計優(yōu)化苔干多糖提取率的響應(yīng)面實驗。根據(jù) Design-Expert 8.0 中 Box-Behnken 的中心組合試驗設(shè)計原理[12],進(jìn)行響應(yīng)面實驗設(shè)計,實驗因素及水平設(shè)計見表1,以苔干多糖提取率為響應(yīng)值。對各因素及響應(yīng)值進(jìn)行多元線性回歸和二項式擬合,通過對回歸方程的分析及各因素交互作用的響應(yīng)面圖形分析,尋求最優(yōu)苔干多糖的提取工藝。

    表1 Box-Behnken實驗因素及水平設(shè)計表

    1.3.3 苔干多糖除蛋白純化方法的研究 為獲得多糖提取率較高的苔干多糖,以苔干粗多糖為研究對象,比較 Sevage 法、TCA 法、木瓜蛋白酶法的除蛋白效果。

    1.3.3.1 Sevage 法除蛋白 取一定量苔干粗多糖溶液,分別按多糖與Sevage試劑的比例為2∶1、1∶1、1∶2、1∶3、1∶4,加入Sevage試劑(氯仿∶正丁醇=5∶1),震蕩30 min,然后以4000 r/min離心10 min,棄去有機(jī)層和蛋白質(zhì)沉淀層,重復(fù)上述操作,直至無變性蛋白質(zhì)出現(xiàn),測定上清液的多糖含量,計算多糖的保留率[13]。

    1.3.3.2 TCA 法除蛋白 取一定量的苔干粗多糖溶液,分別加入20%三氯乙酸(TCA)至終濃度為1%、3%、6%、9%、12%、15%,震蕩搖勻,在4 ℃條件下靜置2 h后,4000 r/min離心15 min,棄去沉淀,將上清液用2 mol/L NaOH溶液調(diào)pH至中性,測定上清液中多糖含量,計算多糖的保留率[14]。

    1.3.3.3 木瓜蛋白酶法除蛋白 取一定量的苔干粗多糖溶液,木瓜蛋白酶溶液添加量分別為1%、2%、3%、4%、5%,調(diào)節(jié)溶液pH為6,酶解溫度設(shè)置為50 ℃,酶解2 h,酶解后糖液放入沸水浴滅酶5 min,冷卻至室溫。4000 r/min離心10 min,棄去沉淀,取上層清液測定多糖含量,計算多糖的保留率[15]。

    1.3.4 苔干多糖的抗氧化性研究 測定苔干多糖對DPPH·、羥基自由基及超氧陰離子自由基的清除能力[16-18]。

    1.4 多糖提取率、純化率的測定

    采用苯酚-硫酸法測定苔干多糖的含量。

    多糖提取率的計算方法:多糖提取率=粗多糖質(zhì)量×多糖含量/苔干粉質(zhì)量×100%;

    多糖保留率的計算方法:多糖保留率=脫蛋白后多糖含量/脫蛋白前多糖含量×100%。

    1.5 多糖抗氧化性的測定

    1.5.1 DPPH·清除率計算公式 DPPH·清除率=[(A0-Ax)/A0]×100%(A0為空白對照液的吸光度;Ax為待測溶液的吸光度)。

    1.5.2 羥自由基清除率計算公式 羥自由基清除率=[(A0-Ax)/A0]×100%(A0為空白對照液的吸光度;Ax為待測溶液的吸光度)。

    1.5.3 超氧陰離子自由基清除率的計算公式 超氧陰離子自由基清除率=[(A0-Ax)/A0]×100%。(A0為空白對照液的吸光度;AX為待測溶液的吸光度)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

    采用苯酚-硫酸法測得葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線,標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程為y=1.0519x+0.028,R2=0.9931。

    2.2 苔干多糖提取工藝研究

    2.2.1 單因素實驗

    2.2.1.1 料液比對苔干多糖提取率的影響 料液比對苔干多糖提取率的的影響見圖1。從結(jié)果來看,料液比對苔干多糖的提取率有一定影響,隨著料液比的升高,苔干多糖的提取率先升高后降低,其中料液比1∶30時,提取率最高,為5.26%。在一定范圍內(nèi)料液比升高,有利于苔干多糖的溶出,但料液比升高會影響超聲輔助提取多糖的效率,導(dǎo)致提取率降低。

    圖1 料液比對苔干多糖提取率的影響

    2.2.1.2 提取時間對苔干多糖提取率的影響 選取最佳的料液比,提取時間對苔干多糖提取率的影響如圖2所示。隨著提取時間的增加,苔干多糖的提取率呈現(xiàn)先升后降的趨勢,其中90 min時提取率最高,為5.46%。多糖是活性物質(zhì),采用超聲輔助提取時,時間對多糖的提取是累加效應(yīng),時間延長,超聲波對多糖的破壞程度增加,導(dǎo)致多糖破壞,提取率降低。

    圖2 提取時間對苔干多糖提取率的影響

    2.2.1.3 提取溫度對苔干多糖提取率的影響 選取最佳的料液比及提取時間,提取溫度對苔干多糖提取率的影響如圖3所示,可以看出,提取溫度的升高有利于苔干多糖的溶出,提取溫度為80 ℃時苔干多糖的提取率最高,為5.52%。溫度繼續(xù)升高,加之超聲波的作用,有可能破壞多糖,導(dǎo)致提取率降低。

    圖3 提取溫度對苔干多糖提取率的影響

    2.2.1.4 提取次數(shù)對苔干多糖提取率的影響 提取次數(shù)對苔干多糖的提取率具有一定的影響(圖4),從圖中可以看出,提取次數(shù)越高,苔干多糖的提取率升高,提取4次時提取率最高,為6.12%,提取3~4次時提取率升高的不顯著,考慮到時間、能耗及后續(xù)濃縮、醇沉?xí)r間及成本,苔干多糖提取2次較佳。

    圖4 提取次數(shù)對苔干多糖提取率的影響

    2.2.1.5 超聲功率對苔干多糖提取率的影響 超聲功率對苔干多糖提取率的影響如圖5所示,可以看出,超聲功率對苔干多糖的提取有一定影響,隨著超聲功率的增加,苔干多糖的提取率先升高后降低,超聲功率為200 W時苔干多糖的提取率最高為6.21%,一定程度的超聲有助于苔干多糖的提取,但是超聲功率過大對多糖的破壞作用增強(qiáng),造成苔干多糖提取率有所下降。

    圖5 超聲功率對苔干多糖提取率的影響

    2.2.2 響應(yīng)面實驗 采用 Design-Expert.V8.0.6軟件,對苔干多糖提取率的響應(yīng)面實驗條件設(shè)計及結(jié)果見表2。根據(jù)各因素對實驗結(jié)果的影響進(jìn)行二次回歸模型的擬合,擬合后得到下式:Y=6.3+0.24A-0.025B-0.31C-0.12AB+0.28AC-0.34BC-0.72A2-0.12B2-0.57C2,其中Y為苔干多糖的提取率,A、B、C分別是液料比、提取溫度、提取時間的編碼。

    對表2數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸分析,結(jié)果如表3所示。

    表2 響應(yīng)面實驗設(shè)計及結(jié)果

    表3 回歸方程各項的方差分析

    響應(yīng)面各因素交互作用分析結(jié)果如圖6所示。

    圖6 響應(yīng)面各因素交互作用圖

    由 Design-Expert.V8.0.6軟件分析,苔干多糖的最佳提取條件為料液比為1∶30.70、提取溫度83.57 ℃,提取時間79.21 min,苔干多糖的提取率為6.56%。結(jié)合實際實驗條件,設(shè)置料液比為1∶31、提取溫度為84 ℃、提取時間為80 min,提取次數(shù)為2次,進(jìn)行驗證實驗(平行3次),在此實驗條件下,苔干多糖的提取率為6.41%±0.11%,實際測定值與理論值相近,說明擬合模型擬合良好。

    2.3 苔干多糖脫蛋白純化方法研究

    圖7表示采用 Sevage 法對苔干多糖脫蛋白純化的研究。從圖7可以看出,隨著 Sevage 試劑添加量升高苔干多糖的保留率降低,其中 Sevage 試劑添加量為4:1時多糖保留率最高,為80.34%。

    圖7 Sevage 試劑添加量對苔干多糖保留率的影響

    采用TCA法對苔干多糖脫蛋白純化的研究結(jié)果如圖8所示,隨著加入的三氯乙酸濃度的升高,苔干多糖的保留率先升后降,TCA濃度為9%時苔干多糖的保留率最高,為83.41%。

    圖8 三氯乙酸濃度對苔干多糖保留率的影響

    采用木瓜蛋白酶法對苔干多糖脫蛋白純化的研究結(jié)果如圖9所示,可以看出,隨著酶液添加量的增加探桿多糖保留率升高,其中酶液添加量為5%時多糖保留率最高,為85.98%。

    圖9 木瓜蛋白酶添加量對苔干多糖保留率的影響

    以苔干多糖保留率為指標(biāo),3種脫蛋白方法的研究相比較而言,采用木瓜蛋白酶除蛋白的效果最佳。

    2.4 苔干多糖的抗氧化性研究

    圖11 苔干多糖濃度對羥基自由基的清除能力的影響

    圖12 苔干多糖濃度對超氧陰離子自由基的清除能力的影響

    圖10~12分別表示苔干多糖對DPPH·、羥基自由基及超氧陰離子自由基的清除能力??梢钥闯觯S著多糖濃度的升高,多糖對DPPH·、羥基自由基及超氧陰離子自由基的清除能力均增強(qiáng),其中苔干多糖對DPPH·的最大清除率為59.65%,對羥基自由基最大的清除率為49.31%,對超氧陰離子自由基最大的清除率為63.93%。結(jié)果表明苔干多糖具有一定的抗氧化性,但與Vc清除DPPH·、羥基自由基及超氧陰離子自由基能力相比,苔干多糖的抗氧化性不如Vc。

    圖10 苔干多糖濃度對DPPH·的清除能力的影響

    3 結(jié)論

    本文對苔干多糖的研究,主要從以下幾個方面進(jìn)行。

    (1)首先,采用超聲波輔助水提法提取苔干多糖,分別進(jìn)行了單因素實驗和響應(yīng)面實驗分析,得出了苔干多糖的最佳提取工藝:料液比為1∶30.07、提取溫度83.57 ℃,提取時間79.22 min,提取次數(shù)2次,超聲功率為200 W;此外,因素影響程度的大小順序為提取時間>水料比>提取溫度。根據(jù)實際情況,苔干多糖的提取條件可選擇為料液比為1∶31、提取溫度84 ℃,提取時間80 min,提取次數(shù)2次,超聲功率200 W。

    (2)其次,以苔干多糖保留率為指標(biāo),選取Sevage 法、TCA法、木瓜蛋白酶法對苔干多糖的進(jìn)行除蛋白,發(fā)現(xiàn)相比 Sevage 法、TCA法除蛋白,采用木瓜蛋白酶除蛋白的效果最佳。

    (3)最后,研究苔干多糖的抗氧化性,并與Vc進(jìn)行對比,發(fā)現(xiàn)苔干多糖具有一定的抗氧化能力,苔干多糖在一定濃度范圍內(nèi),隨著多糖濃度的升高,苔干多糖對DPPH·、羥基自由基及超氧陰離子自由基的清除能力增強(qiáng),其中苔干多糖對DPPH·的最大清除率為59.65%,對羥基自由基最大的清除率為49.31%,對超氧陰離子自由基最大的清除率為63.93%。

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