竇 敏 ,鄭英霞,韓 麗,趙 倩
1. 上海交通大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室,上海 200025;2. 上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院檢驗(yàn)科,上海 200092
胃癌是消化道常見(jiàn)的腫瘤之一,是全世界發(fā)病率排名第四位的惡性腫瘤,其死亡率在所有癌癥中排名第三位[1]。亞洲地區(qū)胃癌的發(fā)病率和死亡率較高,尤其是日本、韓國(guó)、蒙古和中國(guó),在中國(guó)胃癌已經(jīng)成為引起死亡的第二大腫瘤[2]。2015 年的統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)[3]顯示,在中國(guó)胃癌的致死率較高,有約50 萬(wàn)的死亡病例。胃癌發(fā)病的分子生物學(xué)因素復(fù)雜,與許多腫瘤基因、抑癌基因有關(guān)。因而揭示胃癌發(fā)生與發(fā)展的機(jī)制對(duì)診斷與治療胃癌具有重大意義[4]。
蛋白質(zhì)精氨酸甲基轉(zhuǎn)移酶(protein arginine methyltransferases,PRMTs)家族是一類(lèi)能夠甲基化組蛋白或非組蛋白精氨酸基團(tuán)的酶類(lèi)。精氨酸甲基化是重要的翻譯后修飾,參與各種細(xì)胞過(guò)程的調(diào)節(jié)[5]。其中PRMT4 也稱(chēng)為共激活蛋白相關(guān)精氨酸甲基轉(zhuǎn)移酶1(coactivator-associated arginine methyltransferase 1,CARM1),能夠使蛋白底物的精氨酸殘基非對(duì)稱(chēng)性地二甲基化[6]。PRMT4 是PRMTs 家族中第一個(gè)功能上與基因轉(zhuǎn)錄活性有關(guān)的成員[7],參與調(diào)節(jié)許多細(xì)胞過(guò)程。PRMT4 已被證實(shí)在多種腫瘤中表達(dá)增強(qiáng),如乳腺癌[8]、前列腺癌[9]、結(jié)直腸癌[10]等,其過(guò)表達(dá)不僅刺激大量致癌通路關(guān)鍵因子,如FOS(Fos protooncogene)、E2F1(E2F transcription factor 1)、Wnt/β-連環(huán)蛋白(β-catenin)、核受體共激活因子3(nuclear receptor coactivator 3,NCOA3,又稱(chēng)AIB1)等,而且為腫瘤的生長(zhǎng)和侵襲與轉(zhuǎn)移提供一個(gè)有利的微環(huán)境[11-12]。目前,有研究[13]表明,隨著胃癌的進(jìn)展、胃癌干細(xì)胞干性增強(qiáng),PRMT4 表達(dá)量明顯上調(diào),提示PRMT4 可能促進(jìn)胃癌干細(xì)胞的干性,但其確切機(jī)制不甚明了。除此之外,PRMT4在胃癌中的作用還沒(méi)有得到深入的研究。
本文在胃癌臨床組織標(biāo)本檢測(cè)的基礎(chǔ)上,體外利用胃癌細(xì)胞株探索PRMT4 在胃癌中的表達(dá)、在胃癌生長(zhǎng)和發(fā)展中的作用及潛在的機(jī)制,以期為胃癌的診斷和治療提供證據(jù)。
ABI 7900 實(shí)時(shí)定量PCR 儀(ABI,美國(guó))、無(wú)菌超凈工作臺(tái)(Labconco,美國(guó))、倒置熒光顯微鏡(Olympus,JPN)、細(xì)胞培養(yǎng)箱(Revco,美國(guó))、低溫水平離心機(jī)(HITACHI,日本)、小型EP 管離心機(jī)(Eppendorf,德國(guó))、生物安全柜(上海力申科學(xué)儀器,中國(guó))、純水儀(Merk Millipore,美國(guó))、FACS Canto Ⅱ流式細(xì)胞儀(BD,美國(guó))、垂直電泳儀及膜轉(zhuǎn)移裝置(Bio-Rad,美國(guó))、Odyssey 雙色紅外熒光成像系統(tǒng)(LI-COR,美國(guó))、GloMax 20/20 發(fā)光檢測(cè)儀(Promega,美國(guó))。
人胃癌細(xì)胞株MGC-803、MKN-45、SGC-7901 均購(gòu)于中國(guó)科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院;細(xì)胞培養(yǎng)所用高糖DMEM 培養(yǎng)基、胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、雙抗、胰酶(Gibco,美國(guó)),蛋白裂解液、一抗稀釋液(碧云天,中國(guó)),RNA 提取試劑盒(Qiagen,德國(guó)),mRNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒及SYBR Premix ExTaq 定量PCR 試劑盒(TaKaRa,中國(guó)),細(xì)胞轉(zhuǎn)染試劑盒l(wèi)ipo3000(Thermo Fisher,美國(guó)),Annexin V/7-AAD 凋亡試劑盒、遷移試劑盒、侵襲試劑盒(BD,美國(guó))。短發(fā)夾RNA(short hairpin RNA,shRNA)由上海吉?jiǎng)P生物設(shè)計(jì)合成,PCR引物由上海工程有限公司設(shè)計(jì)合成。
蛋白質(zhì)印跡法(Western blotting)所用抗體包括:PMRT4 蛋 白、β-catenin,活 化 的β-catenin[non-phospho (active) β-catenin,ABC]、糖原合成酶激酶3β(glycogen synthase kinase-3β,GSK3β);磷酸化糖原合成酶激酶3β(phospho glycogen synthase kinase-3β,p-GSK3β)、C-myc(cellular-myelocytomatosis viral oncogene) 蛋 白、N- 鈣 黏 蛋白(N-cadherin)和β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)??贵w貨號(hào)及來(lái)源如下:PRMT4(NBP2-37645,Genetex,美國(guó)),β-catenin、ABC、N-cadherin、C-myc(8480、19807、13116、18583,Cell Signaling, 美 國(guó)),GSK3β、p-GSK3β(sc-71186、sc-81496,Santa Cruz,美國(guó)),β-actin(A1978,Sigma,美國(guó))。
1.3.1 免疫組織化學(xué)檢測(cè) 使用谷歌生物商品化的胃癌組織芯片(含32 對(duì)胃癌和癌旁組織)進(jìn)行免疫組織化學(xué)實(shí)驗(yàn)。組織芯片置于56 ℃恒溫箱烘烤2 h 后分別浸入二甲苯及無(wú)水乙醇浸泡進(jìn)行脫蠟與水化;將其放入緩沖液,置于微波爐中加熱,使容器內(nèi)液體溫度維持在92 ~98 ℃,持續(xù)10 ~15 min。取出容器,冷卻10 ~20 min;封閉液封閉15 min,加入一抗,4 ℃孵育過(guò)夜;1×PBS 洗滌3 次,加入二抗,室溫孵育2 h,1×PBS 洗滌3 次后加入親和素 - 生物素 - 過(guò)氧化物酶復(fù)合物,室溫孵育30 min。1×PBS 洗滌3 次,進(jìn)行二氨基聯(lián)苯胺(diaminobenzidine,DAB)染色,蘇木精復(fù)染,脫水并封片。染色結(jié)果評(píng)分根據(jù)陽(yáng)性細(xì)胞的百分率被定為:<5%,0 分;5%~25%,1分;26%~50%,2 分;51%~75%,3 分;>75%,4 分。對(duì)每對(duì)胃癌組織和癌旁組織的評(píng)分結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
1.3.2 數(shù)據(jù)庫(kù)分析 在UALCAN 網(wǎng)站上分析PRMT4在34 例正常組織和415 例胃癌組織中的表達(dá)差異。UALCAN 網(wǎng)站樣本均來(lái)自TCGA(The Cancer Genome Atlas)數(shù)據(jù)庫(kù)。在Oncomine 數(shù)據(jù)庫(kù)分析了2 個(gè)樣本庫(kù)的胃癌組織,分別為80 例正常組織與80 例胃癌組織、19 例正常組織與31 例彌漫性胃腺癌組織。生存期分析在Kaplan-Meier Plotter 網(wǎng)站上進(jìn)行,樣本庫(kù)包含1 051 例胃癌組織;總生存期分析中含有275 例低表達(dá)PRMT4 的胃癌患者和601 例高表達(dá)PRMT4 的胃癌患者信息,無(wú)病進(jìn)展生存期中含有241 例低表達(dá)PRMT4 的胃癌患者和400 例高表達(dá)PRMT4 的胃癌患者信息;樣本編 號(hào) 為GSE14210、GSE15459、GSE22377、GSE29272、GSE51105 和GSE62254。
1.3.3 細(xì)胞培養(yǎng) 細(xì)胞培養(yǎng)均使用DMEM 培養(yǎng)基在含有5% CO2的37 ℃恒溫孵育箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)基中添加10% FBS 以及100 U/mL 青霉素和100 μg/mL 鏈霉素。
1.3.4 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染 沉默和過(guò)表達(dá)PRMT4(NM-199141)均采用質(zhì)粒瞬時(shí)轉(zhuǎn)染的方法。沉默PRMT4 所用質(zhì)粒名稱(chēng)GV493,2個(gè)敲減序列分別為 ATGACTTGAGCAGTGTTAT(SH1) 和 AGAACATGATGCAGGACTA(SH2), 對(duì) 照序列為T(mén)TCTCCGAACGTGTCACGT(NC)。過(guò)表達(dá)所用質(zhì)粒名稱(chēng)GV146,克隆位點(diǎn)Xho Ⅰ/EcoR Ⅰ,長(zhǎng)度為1 874 bp。轉(zhuǎn)染前1 日,將待轉(zhuǎn)染的胃癌細(xì)胞接種6 孔板。第2 日,按lipo3000 試劑盒明書(shū)配制轉(zhuǎn)染預(yù)混合液,室溫靜置20 min。去除培養(yǎng)基,1×PBS 洗滌2 次,加入不含抗生素、含10% FBS 的DMEM 培養(yǎng)液,然后加入轉(zhuǎn)染預(yù)混合液,充分混勻。在含有5% CO2的37 ℃恒溫孵育箱中培養(yǎng)過(guò)夜后,換成含抗生素和10% FBS 的DMEM 完全培養(yǎng)液,轉(zhuǎn)染48 h 后收集細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
1.3.5 MTT 增殖實(shí)驗(yàn) 在MGC-803 和MKN-45 細(xì)胞中敲減PRMT4,分為SH1 組、SH2 組和NC 組;在SGC-7901 細(xì)胞中過(guò)表達(dá)PRMT4,分為過(guò)表達(dá)質(zhì)粒(OVER)和空載(VECTOR)2 組;之后進(jìn)行MTT 增殖實(shí)驗(yàn)。將處于對(duì)數(shù)期且狀態(tài)良好的細(xì)胞,按每孔1 000 個(gè)接種于96孔板中,周邊孔加等體積PBS,置于細(xì)胞培養(yǎng)箱中;24 h后,向96 孔板每孔中加入20 μL MTT 溶液,4 h 后去除培養(yǎng)液,每孔中加入200 μL 二甲基亞砜(DMSO),振蕩5 min,使細(xì)胞內(nèi)結(jié)晶充分溶解;使用酶標(biāo)儀在波長(zhǎng)490 nm 下測(cè)定吸光度。連續(xù)檢測(cè)5 d,根據(jù)吸光度值繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線(xiàn)。
1.3.6 平板克隆形成實(shí)驗(yàn) 細(xì)胞分組同1.3.5。取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的對(duì)數(shù)期的細(xì)胞,以每孔250 個(gè)接種于6 孔板中。細(xì)胞培養(yǎng)箱中持續(xù)培養(yǎng)4 ~6 周,直到形成肉眼可見(jiàn)的克隆后,棄培養(yǎng)基,用1×PBS 洗滌3 次,使用4%的多聚甲醛固定液固定細(xì)胞15 min;去除固定液,用1×PBS 洗滌3次,用0.05%結(jié)晶紫溶液染色15 min,使用1×PBS 洗滌后風(fēng)干。拍照并記錄所形成的細(xì)胞克隆數(shù)目。
1.3.7 細(xì)胞凋亡分析 細(xì)胞分組同1.3.5。首先用胰酶消化細(xì)胞,進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),用1×binding buffer 稀釋細(xì)胞,最終稀釋成1×106個(gè)/mL 單細(xì)胞懸液。吸取100 μL 細(xì)胞懸液至流式管中,分別加入5 μL PE-Annexin V 和5 μL 7-ADD。輕輕混勻后室溫避光反應(yīng)15 min。最后每管中加入400 μL 1×binding buffer,并在1 h 內(nèi)上機(jī)檢測(cè)。分別計(jì)算早期凋亡和中晚期凋亡細(xì)胞比例。
1.3.8 細(xì)胞遷移和侵襲實(shí)驗(yàn) 細(xì)胞分組同1.3.5。遷移實(shí)驗(yàn)采用8 μm PET(聚酯)膜Corning Transwell inserts(插入式細(xì)胞培養(yǎng)皿),侵襲實(shí)驗(yàn)采用基質(zhì)膠(matrigel)預(yù)包被的8 μm Corning Transwell inserts。實(shí)驗(yàn)前預(yù)先將Transwell inserts 從冰箱拿出至室溫平衡30 min。含matrigel 的小室要預(yù)先放置在24 孔板中,上層加無(wú)血清DMEM 培養(yǎng)基,37℃細(xì)胞培養(yǎng)箱預(yù)平衡2 h。消化并洗滌細(xì)胞計(jì)數(shù),用含1% FBS 的DMEM 培養(yǎng)液重懸細(xì)胞使得最終的細(xì)胞密度達(dá)到5×104個(gè)/mL。24 孔板的孔中加入750 μL 含有10% FBS 的DMEM 培養(yǎng)液,insert 小室中加入500 μL 細(xì)胞懸液。將24 孔板培養(yǎng)48 h 后,取出小室,洗滌固定以及染色,最后擦去小室內(nèi)部未遷移到下面的細(xì)胞,晾干,用顯微鏡在200 倍下觀(guān)察,隨機(jī)選取5 個(gè)不同的視野拍照。
1.3.9 熒光素酶報(bào)告實(shí)驗(yàn) 在MGC-803 細(xì)胞中敲減PRMT4,分為SH2 組和NC 組,之后進(jìn)行熒光素酶報(bào)告實(shí)驗(yàn)。TOP[含有野生型的T 細(xì)胞因子(T cell factor)結(jié)合序列] /FOP(含有突變的TCF 結(jié)合序列)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染24 h后,將培養(yǎng)板取出,1×PBS 洗3 次;加入100 μL 裂解液,室溫振蕩孵育15 min,收集裂解液至EP 管中,4 ℃、13 000×g 離心10 min;吸取10 μL 蛋白裂解液加至50 μL螢火蟲(chóng)熒光素酶檢測(cè)試劑中,迅速混勻,放入GloMax 20/20 發(fā)光檢測(cè)儀中檢測(cè)熒光強(qiáng)度;加入50 μL 終止液,再次檢測(cè)熒光強(qiáng)度。根據(jù)熒光強(qiáng)度計(jì)算TOP/FOP 質(zhì)粒熒光素酶活性比值。
1.3.10 RNA 提取和real-time PCR 檢測(cè) 細(xì)胞分組同1.3.9。使用RNA 提取試劑盒抽取細(xì)胞株中RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA。Real-time PCR 反應(yīng)體系10 μL:SYBR Premix EX Taq 5 μL,PCR 上 游 引 物(10 μmol/L)0.2 μL,PCR 下游引物(10 μmol/L) 0.2 μL,Rox 參比染料0.2 μL,模板cDNA 1 μL,dd H2O 3.4 μL。反應(yīng)條件:預(yù)變性95 ℃ 10 s;PCR 反 應(yīng)95 ℃ 5 s,60 ℃ 20 s,72 ℃ 15 s,循 環(huán)40 次。使用ABI 7900 實(shí)時(shí)定量PCR 儀進(jìn)行擴(kuò)增。每組設(shè)置3 個(gè)復(fù)孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。管家基因Actin 作為內(nèi)對(duì)照。使用公式2-ΔΔCT進(jìn)行不同組間基因表達(dá)差異的比較。檢測(cè)基因包括:PRMT4、C-myc、細(xì)胞周期蛋白D1(cyclin D1)、survivin、基質(zhì)金屬蛋白酶7(matrix metallopeptidase 7,MMP-7)、淋巴樣增強(qiáng)因子-1(lymphoid enhancer binding factor 1,LEF1)、Wnt 信號(hào)通路抑制因子(Dickkopf Wnt signaling pathway inhibitor 1,DKK1)以及AXIN2。引物序列見(jiàn)表1。
表1 Real-time PCR 檢測(cè)基因引物序列 Tab 1 Forward and reverse primers of real-time PCR
1.3.11 Western blotting 在MGC-803 和MKN-45 細(xì) 胞中敲減PRMT4,分為SH2 組和NC 組;在SGC-7901 細(xì)胞中過(guò)表達(dá)PRMT4,分為OVER 組和VECTOR 組。將經(jīng)過(guò)定量的蛋白與蛋白上樣緩沖液按比例加好后置于沸水浴中煮5 min,12 000×g 離心5 min,將管壁上蒸發(fā)的水離心至管底,振蕩混勻后上樣。以恒壓90 V 進(jìn)行電泳直到溴酚藍(lán)指示劑到達(dá)分離膠底部時(shí)停止。將聚偏氟乙烯(PVDF)膜用甲醇活化1 min 后,連同濾紙、電轉(zhuǎn)夾板浸泡在電轉(zhuǎn)液中;將電轉(zhuǎn)夾板取出,從下到上按照白板、海綿墊、2 層濾紙、PVDF 膜、分離膠、2 層濾紙、海綿墊和黑板的順序?qū)㈦娹D(zhuǎn)夾板固定好,放入電轉(zhuǎn)槽中;恒壓100 V 2 h 后,將PVDF 膜用5%牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)封閉,室溫置于搖床上1 h 后用一抗孵育,4 ℃過(guò)夜;回收一抗,用TBST 洗膜后用二抗室溫孵育1 h;棄掉二抗并用TBST 洗膜后用Odyssey 雙色紅外熒光成像系統(tǒng)曝光。
為了研究PRMT4 在胃癌中的表達(dá),在蛋白水平上,采用免疫組織化學(xué)技術(shù)分析了PRMT4 在32 對(duì)癌組織和癌旁組織中的表達(dá)水平,發(fā)現(xiàn)PRMT4 在胃癌組織中高表達(dá)(圖1A)。在基因水平上,用TCGA 數(shù)據(jù)庫(kù)來(lái)分析PRMT4 在胃癌中的表達(dá),發(fā)現(xiàn)PRMT4 在胃癌中的表達(dá)水平較正常組織顯著增高(圖1B)。另外,還用Oncomine數(shù)據(jù)庫(kù)分析了2 個(gè)樣本庫(kù)的胃癌組織(圖1C),同樣發(fā)現(xiàn)PRMT4 的表達(dá)水平在胃癌中顯著增高,與正常組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P=0.000)。
圖1 PRMT4 在胃癌中的表達(dá)Fig 1 PRMT4 expression in gastric cancer
為了探究PRMT4 對(duì)胃癌患者生存期的影響,我們通過(guò)在Kaplan-Meier Plotter 網(wǎng)站上分析胃癌患者的生存期發(fā)現(xiàn),高表達(dá)PRMT4 的胃癌患者的總體生存期(圖2A)和無(wú)病進(jìn)展生存期(圖2B)較低表達(dá)PRMT4 的胃癌患者明顯縮短,且差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P=0.000)。綜上可見(jiàn),PRMT4 在胃癌中高表達(dá)且高表達(dá)PRMT4 的胃癌患者生存期顯著縮短。
圖2 胃癌患者PRMT4 表達(dá)與其生存期的關(guān)系Fig 2 Relationship between expression of PRMT4 and survival time in patients with gastric cancer
為進(jìn)一步研究PRMT4 在胃癌中的生物學(xué)功能,分別在PRMT4 表達(dá)相對(duì)較高的2 個(gè)胃癌細(xì)胞株MGC-803 和MKN-45 中進(jìn)行沉默實(shí)驗(yàn)。分別轉(zhuǎn)染2 個(gè)位點(diǎn)的shRNAs(SH1 和SH2),shRNAs 轉(zhuǎn) 染 后PRMT4 的 蛋 白 水 平 較NC 明顯下降(圖3A),證明利用干擾技術(shù)有效地抑制了PRMT4 的表達(dá)。在用shRNAs 敲低PRMT4 的表達(dá)后,通過(guò)MTT 實(shí)驗(yàn)連續(xù)5 d 檢測(cè)轉(zhuǎn)染后胃癌細(xì)胞的增殖情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn)SH1 和SH2 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞較NC 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞的增殖能力顯著降低(圖3B)。同樣用克隆形成實(shí)驗(yàn)也驗(yàn)證了這一結(jié)果,SH1 和SH2 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞較NC 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞形成的克隆數(shù)明顯減少(圖3C)。繼而利用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞的周期與凋亡情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn),沉默PRMT4對(duì)胃癌細(xì)胞的周期沒(méi)有明顯改變,而SH1 和SH2 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞凋亡要明顯多于NC 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞(圖3D),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。綜上可見(jiàn),沉默PRMT4 抑制胃癌細(xì)胞的生長(zhǎng)和克隆形成能力,促進(jìn)胃癌細(xì)胞的凋亡。
圖3 沉默PRMT4 抑制胃癌細(xì)胞的體外增殖,促進(jìn)胃癌細(xì)胞的凋亡Fig 3 Deletion of PRMT4 suppressed gastric cancer cell proliferation in vitro, and induced gastric cancer cell apoptosis
分別轉(zhuǎn)染NC、SH1 和SH2 后,利用inserts 小室及包裹有matrigel 基質(zhì)膠的inserts 小室評(píng)估胃癌細(xì)胞的轉(zhuǎn)移和浸潤(rùn)的能力。結(jié)果表明:轉(zhuǎn)染SH1 和SH2 后的胃癌細(xì)胞遷移至inserts 小室及帶基質(zhì)膠inserts 小室下面的數(shù)量較NC 明顯減少(圖4),且差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。說(shuō)明沉默PRMT4 后,胃癌細(xì)胞轉(zhuǎn)移及向周?chē)M織浸潤(rùn)的能力均明顯下降。
圖4 沉默PRMT4 抑制胃癌細(xì)胞的體外侵襲與遷移Fig 4 Deletion of PRMT4 suppressed gastric cancer cell migration and invasion in vitro
在PRMT4 表達(dá)相對(duì)較低的胃癌細(xì)胞株SGC-7901 中進(jìn)行過(guò)表達(dá)實(shí)驗(yàn),過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染有效(圖5A)。MTT實(shí)驗(yàn)連續(xù)5 d 檢測(cè)轉(zhuǎn)染后胃癌細(xì)胞的增殖情況,發(fā)現(xiàn)過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞增殖能力較VECTOR 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞顯著增高(圖5B)??寺⌒纬蓪?shí)驗(yàn)也驗(yàn)證了這一結(jié)果,過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞較VECTOR 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞形成的克隆數(shù)明顯增加(圖5C)。過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞凋亡也明顯少于VECTOR 轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞(圖5D)。另外,轉(zhuǎn)染過(guò)表達(dá)質(zhì)粒后的胃癌細(xì)胞遷移至inserts 小室及帶基質(zhì)膠inserts 小室下面的數(shù)量較VECTOR 明顯增加(圖5E、F),差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。綜上可見(jiàn),過(guò)表達(dá)PRMT4促進(jìn)胃癌細(xì)胞的生長(zhǎng)和克隆形成能力,抑制胃癌細(xì)胞的凋亡,并促進(jìn)胃癌細(xì)胞的侵襲與遷移能力。
圖5 過(guò)表達(dá)PRMT4 促進(jìn)胃癌細(xì)胞的體外增殖、侵襲與遷移Fig 5 Overexpression of PRMT4 induced gastric cancer cell proliferation, migration and invasion in vitro
在胃癌中,Wnt/β-catenin 信號(hào)通路存在異?;罨痆14],從而導(dǎo)致胃癌的發(fā)生和發(fā)展。為了研究PRMT4 在Wnt/β-catenin 信號(hào)通路中發(fā)揮的潛在作用,首先檢測(cè)了干擾PRMT4 后胃癌細(xì)胞中內(nèi)源性轉(zhuǎn)錄因子TCF 的轉(zhuǎn)錄活性。干擾實(shí)驗(yàn)均使用MGC-803 細(xì)胞和干擾效果較好的SH2 質(zhì)粒。結(jié)果發(fā)現(xiàn),干擾PRMT4 可以顯著抑制MGC-803 細(xì)胞中內(nèi)源性TCF 的轉(zhuǎn)錄活性(圖6A)。PCR 實(shí)驗(yàn)檢測(cè)了干擾PRMT4 后,Wnt/β-catenin 信號(hào)通路下游靶基因的表達(dá)水平變化;結(jié)果顯示:沉默PRMT4 可降低MGC-803 細(xì)胞Wnt 下游靶基因C-myc、cyclin D1、survivin、MMP-7、 LEF1 和AXIN2 的表達(dá),升高DKK1 的表達(dá)(圖6B)。Western blotting 實(shí)驗(yàn)檢測(cè)了Wnt/β-catenin 信號(hào)通路中關(guān)鍵蛋白β-catenin、ABC、GSK3β、p-GSK3β 以及下游靶基因蛋白C-myc 和N-cadherin 的表達(dá);結(jié)果顯示:PRMT4可能通過(guò)影響ABC、p-GSK3β 和Wnt 下游靶基因蛋白C-myc 和N-cadherin 發(fā)揮其對(duì)Wnt/β-catenin 信號(hào)通路的調(diào)節(jié)作用(圖6C)。
圖6 PRMT4 參與調(diào)控胃癌Wnt/β-catenin 信號(hào)通路的活性Fig 6 PRMT4 regulated Wnt/β-catenin signaling pathway in gastric cancer
胃癌在我國(guó)具有較高的發(fā)病率和死亡率,其發(fā)生是多基因表達(dá)異常和多途徑導(dǎo)致的。目前胃癌的發(fā)病機(jī)制尚未完全明晰,因而我們選擇胃癌作為研究對(duì)象,從中挖掘與其發(fā)生發(fā)展相關(guān)的分子,以期為胃癌的診斷與治療提供潛在的靶標(biāo)。PRMT4 作為PRMTs 家族的一員,可以對(duì)多種蛋白質(zhì)進(jìn)行翻譯后修飾,引起表觀(guān)遺傳學(xué)的改變,它也可以通過(guò)與多種特異的轉(zhuǎn)錄因子和染色質(zhì)修飾酶相互作用調(diào)控多種重要的細(xì)胞信號(hào)通路。研究[15]已經(jīng)證實(shí)PRMT4 在多種腫瘤組織(結(jié)直腸癌、骨肉瘤、乳腺癌等)中表達(dá)升高并且促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的生長(zhǎng)增殖、侵襲與轉(zhuǎn)移。本文擬探索PRMT4 在胃癌中的作用。
通過(guò)數(shù)據(jù)庫(kù)分析發(fā)現(xiàn),胃癌組織的PRMT4 表達(dá)水平顯著高于正常組織,并且高表達(dá)PRMT4 的患者的總體生存期顯著縮短;組織芯片檢測(cè)也獲得了PRMT4 在胃癌組織高表達(dá)的結(jié)果。因此,進(jìn)一步研究PRMT4 在胃癌中的功能。研究發(fā)現(xiàn):干擾PRMT4 抑制了胃癌細(xì)胞的體外增殖、侵襲與轉(zhuǎn)移,促進(jìn)了胃癌細(xì)胞的凋亡;相反,過(guò)表達(dá)PRMT4 則促進(jìn)了胃癌細(xì)胞的體外增殖、侵襲與轉(zhuǎn)移,抑制了胃癌細(xì)胞的凋亡??梢?jiàn),PRMT4 在胃癌中扮演著癌基因的角色。
Wnt/β-catenin 信號(hào)通路是調(diào)節(jié)腫瘤細(xì)胞生長(zhǎng)機(jī)制中較經(jīng)典的信號(hào)通路,其異常活化存在于各種良性及惡性腫瘤[16],并且與患者預(yù)后有著密切的關(guān)系[17]。Wnt/β-catenin信號(hào)通路還參與表皮間質(zhì)化轉(zhuǎn)型(epithelial-mesenchymal transitions,EMT),且抑制Wnt 信號(hào)通路后可觀(guān)察到腫瘤細(xì)胞的凋亡增加,細(xì)胞增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移受到抑制[18]。胃癌的發(fā)生和發(fā)展離不開(kāi)Wnt/β-catenin 信號(hào)通路的調(diào)控。PRMT4 作為β-catenin 蛋白轉(zhuǎn)錄的一個(gè)重要調(diào)節(jié)器[19],已經(jīng)在結(jié)直腸癌[19]、骨肉瘤[20]等中被證實(shí)其通過(guò)調(diào)控Wnt/β-catenin 信號(hào)通路影響腫瘤細(xì)胞的生長(zhǎng)。因此我們也想了解在胃癌細(xì)胞中PRMT4 是否參與調(diào)控Wnt/β-catenin 信號(hào)通路。實(shí)驗(yàn)結(jié)果證實(shí),干擾PRMT4 后顯著抑制了胃癌細(xì)胞中內(nèi)源性TCF 的轉(zhuǎn)錄活性,并且明顯降低了Wnt下游靶基因的表達(dá)。C-myc[21]、cyclin D1[22]、survivin[23]和 MMP-7[22]都是比較經(jīng)典的Wnt/β-catenin 信號(hào)通路靶基因,它們參與腫瘤細(xì)胞的增殖分化、凋亡[24]及侵襲與轉(zhuǎn)移;而轉(zhuǎn)錄因子Lef1[25]和β-catenin 降解復(fù)合物成員Axin2[26]都是Wnt/β-catenin 信號(hào)通路中重要的參與者;上述分子的表達(dá)水平降低均意味著Wnt 信號(hào)通路受到了抑制。對(duì)于DKK1來(lái)說(shuō),它既是下游的靶基因,也是Wnt 信號(hào)通路的抑制因子;通常Wnt 信號(hào)受到激活時(shí),DKK1 能夠負(fù)反饋性地升高;相反Wnt 信號(hào)受到抑制時(shí),DKK1 則降低。本研究中,我們認(rèn)為干擾PRMT4 后能夠抑制Wnt 信號(hào)通路,而PCR 結(jié)果顯示DKK1 表達(dá)水平反而升高,這可能是由于胃癌細(xì)胞缺失了DKK1 對(duì)于Wnt 信號(hào)通路的負(fù)反饋調(diào)節(jié),這一點(diǎn)還有待進(jìn)一步研究。隨后在Western blotting實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),干擾PRMT4 后可降低ABC、p-GSK3β 以及Wnt/β-catenin 信號(hào)通路下游蛋白C-myc 和N-cadherin的表達(dá)。過(guò)表達(dá)PRMT4 后可升高ABC、p-GSK3β 以及Wnt/β-catenin 信號(hào)通路下游蛋白C-myc 和N-cadherin 的表達(dá)。同樣驗(yàn)證了PRMT4 參與Wnt/β-catenin 信號(hào)通路的調(diào)節(jié)。C-myc 作為經(jīng)典靶蛋白之一,參與腫瘤細(xì)胞的增殖分化;N-cadherin 作為β-catenin 的下游分子可以與之結(jié)合,參與EMT,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的侵襲與轉(zhuǎn)移[27]。由此可見(jiàn),PRMT4 可能通過(guò)參與調(diào)控Wnt/β-catenin 信號(hào)通路,從而影響胃癌細(xì)胞的生長(zhǎng)、增殖以及侵襲與轉(zhuǎn)移。
總而言之,我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明了PRMT4 與胃癌的發(fā)生和發(fā)展有著重要的聯(lián)系。作為一種促癌基因,其或許可以為胃癌的診斷與治療提供新的思路。
參·考·文·獻(xiàn)
[1] Torre LA, Bray F, Siegel RL, et al. Global cancer statistics, 2012[J]. CA Cancer J Clin, 2015, 65(2): 87-108.
[2] Chen WQ, Zheng RS, Baade PD, et al. Cancer statistics in China, 2015[J]. CA Cancer J Clin, 2016, 66(2): 115-132.
[3] Koh JC, Loo WM, Goh KL, et al. Asian consensus on the relationship between obesity and gastrointestinal and liver diseases[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2016, 31(8): 1405-1413.
[4] Bilici A. Treatment options in patients with metastatic gastric cancer: current status and future perspectives[J]. World J Gastroenterol, 2014, 20(14): 3905-3915.
[5] Morales Y, Cáceres T, May K, et al. Biochemistry and regulation of the protein arginine methyltransferases (PRMTs)[J]. Arch Biochem Biophys, 2016, 590: 138-152.
[6] Feng Y, Maity R, Whitelegge JP, et al. Mammalian protein arginine methyltransferase 7 (PRMT7) specifically targets RXR sites in lysine- and arginine-rich regions[J]. J Biol Chem, 2013, 288(52): 37010-37025.
[7] El Messaoudi S, Fabbrizio E, Rodriguez C, et al. Coactivator-associated arginine methyltransferase 1 (CARM1) is a positive regulator of the cyclin E1 gene[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2006, 103(36): 13351-13356.
[8] Frietze S, Lupien M, Silver PA, et al. CARM1 regulates estrogen-stimulated breast cancer growth through up-regulation of E2F1[J]. Cancer Res, 2008, 68(1): 301-306.
[9] Seligson DB, Horvath S, Shi T, et al. Global histone modification patterns predict risk of prostate cancer recurrence[J]. Nature, 2005, 435(7046): 1262-1266.
[10] Blanc RS, Richard S. Arginine methylation: the coming of age[J]. Mol Cell, 2017, 65(1): 8-24.
[11] Majumder S, Liu Y, Ford OH, et al. Involvement of arginine methyltransferase CARM1 in androgen receptor function and prostate cancer cell viability[J]. Prostate, 2006, 66(12): 1292-1301.
[12] Al-Dhaheri M, Wu J, Skliris GP, et al. CARM1 is an important determinant of ERα-dependent breast cancer cell differentiation and proliferation in breast cancer cells[J]. Cancer Res, 2011, 71(6): 2118-2128.
[13] 吳玉云, 楊泓瑩, 覃勇, 等. 蛋白精氨酸N-甲基轉(zhuǎn)移酶4 上調(diào)八聚體結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子4 表達(dá)促進(jìn)胃癌細(xì)胞的干性[J]. 第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào), 2018, 40(8): 679-685.
[14] Song X, Xin N, Wang W, et al. Wnt/β-catenin, an oncogenic pathway targeted by H. pylori in gastric carcinogenesis[J]. Oncotarget, 2015, 6(34): 35579-35588.
[15] Poulard C, Corbo L, Le Romancer M. Protein arginine methylation/demethylation and cancer[J]. Oncotarget, 2016, 7(41): 67532-67550.
[16] Mohammed MK, Shao C, Wang J, et al. Wnt/β-catenin signaling plays an ever-expanding role in stem cell self-renewal, tumorigenesis and cancer chemoresistance[J]. Genes Dis, 2016, 3(1): 11-40.
[17] Pang Q, Hu W, Zhang X, et al. Wnt/β-catenin signaling pathway-related proteins (DKK-3, β-catenin, and c-MYC) are involved in prognosis of nasopharyngeal carcinoma[J]. Cancer Biother Radiopharm, 2019, 34(7): 436-443.
[18] Pasca di Magliano M, Biankin AV, Heiser PW, et al. Common activation of canonical Wnt signaling in pancreatic adenocarcinoma[J]. PLoS One, 2007, 2(11): e1155.
[19] Ou CY, LaBonte MJ, Manegold PC, et al. A coactivator role of CARM1 in the dysregulation of β-catenin activity in colorectal cancer cell growth and gene expression[J]. Mol Cancer Res, 2011, 9(5): 660-670.
[20] Li S, Cheng D, Zhu B, et al. The overexpression of CARM1 promotes human osteosarcoma cell proliferation through the pGSK3β/β-catenin/cyclinD1 signaling pathway[J]. Int J Biol Sci, 2017, 13(8): 976-984.
[21] He TC, Sparks AB, Rago C, et al. Identification of c-MYC as a target of the APC pathway[J]. Science, 1998, 281(5382): 1509-1512.
[22] Arya M, Thrasivoulou C, Henrique R, et al. Targets of Wnt/β-catenin transcription in penile carcinoma[J]. PLoS One, 2015, 10(4): e0124395.
[23] Chen X, Duan N, Zhang C, et al. Survivin and tumorigenesis: molecular mechanisms and therapeutic strategies[J]. J Cancer, 2016, 7(3): 314-323.
[24] Mineda A, Nishimura M, Kagawa T, et al. Resveratrol suppresses proliferation and induces apoptosis of uterine sarcoma cells by inhibiting the Wnt signaling pathway[J]. Exp Ther Med, 2019, 17(3): 2242-2246.
[25] Santiago L, Daniels G, Wang D, et al. Wnt signaling pathway protein LEF1 in cancer, as a biomarker for prognosis and a target for treatment[J]. Am J Cancer Res, 2017, 7(6): 1389-1406.
[26] Li Y, Jin K, van Pelt GW, et al. c-Myb enhances breast cancer invasion and metastasis through the Wnt/β-catenin/Axin2 pathway[J]. Cancer Res, 2016, 76(11): 3364-3375.
[27] Nadanaka S, Kinouchi H, Kitagawa H. Chondroitin sulfate-mediated N-cadherin/β-catenin signaling is associated with basal-like breast cancer cell invasion[J]. J Biol Chem, 2018, 293(2): 444-465.