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    昆蟲細胞-桿狀病毒系統(tǒng)分泌表達的豬瘟病毒E2 蛋白及其免疫原性研究

    2020-07-02 07:07:36王遵寶李俊輝豆智華李森江
    關(guān)鍵詞:桿狀病毒豬瘟疫苗

    王遵寶,賀 筍,李俊輝,劉 宏,豆智華,鄭 侃,李森江,寇 春

    (天康生物股份有限公司,新疆 烏魯木齊 830032)

    豬瘟是由豬瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起的豬的一種急性、熱性、高度接觸性烈性傳染病,給中國和其他許多國家養(yǎng)豬業(yè)造成重大經(jīng)濟損失。雖然中國利用自行研制的豬瘟兔化弱毒疫苗進行強制免疫,有效控制了豬瘟的大規(guī)模流行,但豬瘟仍在中國部分地區(qū)呈散發(fā)、周期性流行。近年來的研究結(jié)果表明,CSFV 基因2 群已取代1 群,成為我國豬瘟流行的優(yōu)勢基因群,臨床中以慢性、非典型性豬瘟為主要表現(xiàn)形式,對養(yǎng)豬業(yè)的健康發(fā)展造成極為嚴重的危害[1-4]。Luo 等報道在華東地區(qū)溫和型豬瘟散發(fā)的豬場分離獲得了2.1d 亞型CSFV,攻毒結(jié)果表明豬瘟活疫苗對該株病毒只能提供臨床保護,經(jīng)病理解剖及免疫組化分析證實免疫豬存在組織損傷,熒光定量PCR(RT-qPCR)結(jié)果顯示免疫豬攻毒后存在排毒和帶毒情況,提示豬瘟活疫苗不能完全抵抗2.1d 亞型CSFV 對豬的攻擊[5]。 此外,由于豬瘟兔化弱毒疫苗在制造時易受BVDV、支原體、圓環(huán)病毒等血清外源病原污染,且在臨床使用過程中受母源抗體干擾較大,無法克服免疫耐受等問題,而且使用豬瘟活疫苗免疫后,無法用血清學(xué)方法快速鑒別疫苗免疫和CSFV 野毒感染的豬,是我國豬瘟凈化面臨的關(guān)鍵科學(xué)難題[6-7]。因此有必要研制保護譜廣、安全、可靠,不會與野毒發(fā)生重組變異、可進行鑒別診斷的新型標記豬瘟疫苗。研究表明,CSFV E2 蛋白位于病毒的囊膜表面,參與病毒的感染過程,是CSFV 的主要保護性抗原蛋白之一,能誘導(dǎo)機體產(chǎn)生中和抗體[8]。為研制、開發(fā)對不同亞群CSFV 均有保護力的豬瘟E2 亞單位疫苗,本研究以豬瘟兔化弱毒株(Hog cholera lapinized virus,HCLV)的E2 基因為基礎(chǔ),參考近年來國內(nèi)CSFV 流行株的E2 基因序列,并根據(jù)昆蟲細胞密碼子偏嗜性、簡并性對其進行優(yōu)化,使其與CSFV 基因1、2群病毒株的E2 基因編碼的氨基酸同源性最高,以提高E2 蛋白對不同亞群病毒株的交叉保護性。經(jīng)基因合成、構(gòu)建重組轉(zhuǎn)移載體及穿梭載體,最終將E2 基因轉(zhuǎn)染至桿狀病毒中,獲得了CSFV E2 重組蛋白(Bac-E2),并利用豬瘟抗體陰性豬評價了該蛋白的免疫原性及保護效力,為豬瘟亞單位疫苗的開發(fā)奠定了基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 主要實驗材料 優(yōu)化的CSFV E2 基因序列由上海英駿生物技術(shù)有限公司合成;SF9 細胞、High Five 細胞、PK-15 細胞、HCLV 細胞適應(yīng)株、豬瘟活疫苗(傳代細胞源)等均由天康生物股份有限公司傳代、保存和提供;CSFV 石門強毒株、豬瘟陽性血清購自中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所菌毒種保存保藏中心。

    pFastBac1 載 體、DH5s、DH10Bac 感 受 態(tài) 細 胞、Cellfectin 轉(zhuǎn)染試劑盒等均購自美國Invitrogen 公司;Mini BEST Viral RNA/DNA Extraction Kit、ExTaq DNA聚合酶、PCR Mix、Xho I、EcoR I 內(nèi)切酶等均購自寶生物(大連)工程有限公司;兔抗豬IgG-HRP、兔抗豬IgG-FITC 均購自Sigma 公司;His TrapTMHP 預(yù)裝柱購自GE 公司;ISA 660VG 佐劑購自法國賽彼科公司。4 周齡~5 周齡CSFV 中和抗體陰性豬,購自新疆天康畜牧科技有限公司。

    1.2 重組轉(zhuǎn)移質(zhì)粒pFast-E2 的構(gòu)建及鑒定 以HCLV 為基礎(chǔ),同時參考近年來國內(nèi)CSFV 流行株的E2 基因序列,根據(jù)昆蟲細胞密碼子偏嗜性對其進行優(yōu)化和修飾,并在其N 端引入保護堿基、酶切位點、包含ATG 的Kozak 轉(zhuǎn)錄起始序列及6-His Tag后,由上海英俊生物技術(shù)有限公司合成。將人工合成的E2 基因序列經(jīng)EcoR I、Xho I 雙酶切后克隆至轉(zhuǎn)移載體pFastBac1 中構(gòu)建重組質(zhì)粒pFast-E2,并經(jīng)測序鑒定。將其進一步轉(zhuǎn)化至含有穿梭桿粒的DHl0Bac 感受態(tài)細胞,經(jīng)PCR 鑒定獲得重組桿粒Bac?mid-E2。參考Cellfectin 轉(zhuǎn)染試劑盒說明書,將其轉(zhuǎn)染于生長狀態(tài)良好的SF9 細胞,27 ℃恒溫培養(yǎng)72 h~96 h 待細胞出現(xiàn)病變后,收集上清,提取核酸進行PCR 擴增并測序鑒定,將其作為第一代重組桿狀病毒,記為P1,命名為:Rb-E2。以10%接種比例分別在SF9細胞中盲傳、擴增,至P5代時收集上清用于后續(xù)試驗及檢測。重組病毒的PCR 鑒定引物序列如下:E2-F1:5'-CACCATGGCATTTCTCATCTGCTTGGT A-3'/E2-R1:5'-AAATTCTGCGAAGTAATCTGAGTG-3'

    1.3 重組桿狀病毒的間接免疫熒光試驗(IFA)鑒定將1.2 收獲的重組桿狀病毒P5 代,10 倍倍比稀釋后接種于96 孔板中生長狀態(tài)良好的SF9 細胞,以不接種病毒的SF9 細胞作為陰性對照,7 d 后用4%甲醛固定,以豬瘟陽性血清(1∶500)為一抗,兔抗豬IgG-FITC(1∶5 000)為 二 抗 經(jīng)IFA 鑒 定 重 組 病 毒Rb-E2 及檢測重組E2 蛋白(Bac-E2)的表達,根據(jù)Reed-Muench 法計算重組病毒病毒含量[9]。

    1.4 重組蛋白的western blot 鑒定重組病毒 將1.2收獲的重組桿狀病毒P5 代,根據(jù)病毒含量測定結(jié)果,以MOI 2 接種生長良好的High Five 懸浮細胞,27 ℃恒溫培養(yǎng),在接種病毒后60 h、72 h、84 h、96 h,分別取細胞上清樣,進行SDS-PAGE 檢測。以豬瘟陽性血清(1∶500)為一抗,兔抗豬IgG-HRP(1∶5 000)為二抗,經(jīng)western blot 鑒定重組病毒及Bac-E2 蛋白的表達,通過SDS-PAGE 電泳后經(jīng)灰光度值法測定表達的Bac-E2 蛋白的濃度。

    1.5 重組Bac-E2 的免疫效力評價

    1.5.1 動物實驗設(shè)計 用搖瓶培養(yǎng)High Five 懸浮細胞,接種Rb-E2,大量制備抗原;接種病毒后96 h,離心取上清,用鎳親和層析法純化Bac-E2 蛋白。將Bac-E2 蛋白與ISA 660VG 佐劑等質(zhì)量混合后乳化免疫豬,以健康High Five 細胞上清液乳化制劑免疫的豬為陰性對照,同時以豬瘟活疫苗(HCLV,傳代細胞源)免疫的豬作為陽性對照。參照《豬瘟活疫苗(兔源)質(zhì)量標準》附注中“豬瘟病毒中和試驗方法”篩選4 周齡~5 周齡豬瘟抗體陰性豬15 頭,動物分組及免疫方案見表1[10]。

    1.5.2 各組豬中和抗體的測定 首免后每周采血,連續(xù)5 次,無菌分離血清;將待測血清樣品置56 ℃水浴槽中滅活30 min;用MEM 培養(yǎng)基連續(xù)2 倍倍比(1∶4~1∶4 096),取50 μL 加入96 孔板,每個濃度設(shè)8 個重復(fù)孔;在每孔中加入HCLV(200 TCID50/50 μL/孔),以MEM 培養(yǎng)基為陰性對照,豬瘟陽性血清作為陽性對照,37 ℃中和1 h。另取一個96 孔板進行病毒含量的回歸滴定,每孔加入50 μL MEM,將稀釋的HCLV(200 TCID50/50 μL)連續(xù)2 倍倍比(1∶4~1∶4 096),以MEM 培養(yǎng)基作為陰性對照。在以上兩塊96 孔板的每孔加入密度為105個/mL 的PK-15 細胞懸液100 μL,37 ℃、5%CO2培養(yǎng)3 d 后,用甲醛固定,以豬瘟陽性血清(1∶500)為一抗,兔抗豬IgG-FITC(1∶5 000)為二抗,在倒置熒光顯微鏡觀察熒光,以Reed-Muench 法計算各組豬血清的中和抗體滴度和病毒含量。回歸滴定的病毒含量在50 TCID50/50 μL~300 TCID50/50 μL 時所稀釋的病毒符合檢驗要求,判定的血清中和抗體成立。

    1.5.3 免疫效力試驗 Bac-E2 組、HCLV 組和陰性對照組豬均在首免后35 d,經(jīng)耳后頸部肌肉注射CSFV 石門強毒(105.0最小致死劑量/頭,即105.0MLD/頭),攻毒后連續(xù)觀察16 d,每天測溫、記錄各組豬的發(fā)病和死亡情況,死亡豬剖檢后觀察各組織的病變情況,并計算免疫組的保護率。攻毒后每4 d 采集各組豬的咽拭子及肛拭子,凍存于-80 ℃冰箱,常規(guī)處理后提取病毒核酸,反轉(zhuǎn)錄成cDNA 后,采用RT-qPCR 檢測各組豬排毒情況[11]。

    表1 實驗設(shè)計Table 1 The experimental design

    2 結(jié) 果

    2.1 重組桿狀病毒的PCR 鑒定結(jié)果 構(gòu)建的重組質(zhì)粒pFast-E2 經(jīng)測序結(jié)果顯示,該E2 基因與HCLV的親緣關(guān)系較近,同源性達95.2%,同屬于1.1 亞群。pFast-E2 轉(zhuǎn)化至含有穿梭桿粒的DHl0Bac 感受態(tài)細胞,構(gòu)建重組桿粒Bacmid-E2,經(jīng)PCR 鑒定正確后轉(zhuǎn)染SF9 細胞,96 h 后取病變細胞上清液,提取核酸后經(jīng)PCR 鑒定,結(jié)果顯示擴增得到約1 100 bp 的目的片段(圖1),測序結(jié)果顯示E2 基因序列正確。表明獲得了攜帶E2 基因的重組桿狀病毒將其命名為Rb-E2。

    圖1 重組桿狀病毒的PCR 鑒定Fig.1 Amplification of E2 gene by PCR from recombinant baculovirus

    2.2 重組桿狀病毒的IFA 鑒定結(jié)果 將P5 代重組桿狀病毒以10 倍倍比稀釋后接種SF9 細胞,7 d 后進行IFA 鑒定。結(jié)果顯示,感染病毒的細胞可觀察到特異的綠色熒光,而陰性對照則未出現(xiàn)熒光(圖2),表明獲得了重組桿狀病毒,且桿狀病毒中的CSFV E2 基因能夠在昆蟲細胞中獲得正確表達。根據(jù)Reed-Muench 方法計算重組桿狀病毒滴度為107.8TCID50/mL。

    圖2 重組桿狀病毒Rb-E2 的IFA 鑒定結(jié)果(×200)Fig.2 Identification of Rb-E2 in SF9 cell by IFA(×200)

    2.3 重組桿狀病毒的western blot 鑒定結(jié)果 將P5代Rb-E2 接種生長良好的High Five 懸浮細胞,收獲的上清液經(jīng)western blot 鑒定。結(jié)果顯示,經(jīng)桿狀病毒感染60 h 的細胞即可出現(xiàn)大小為52 ku 的目的蛋白條帶;接種桿狀病毒后96 h,上清液中Bac-E2 含量最高(圖3),經(jīng)SDS-PAGE 電泳后采用灰光度值法測定蛋白濃度可達50 μg/mL,表明獲得了能夠表達CSFV E2 蛋白的重組桿狀病毒Rb-E2,表達的Bac-E2主要存在于細胞上清液中,且具有良好的反應(yīng)原性。

    圖3 重組桿狀病毒E2 蛋白表達的western blot 鑒定結(jié)果Fig.3 Identification of the recombinant E2 protein by western blot in Rb-E2

    2.4 Bac-E2 的免疫效力評價

    2.4.1 各組豬中和抗體的測定結(jié)果 將重組蛋白Bac-E2 乳化后免疫豬,同時設(shè)陽性對照組和陰性對照組,首免后每周測定各組豬血清的中和抗體。結(jié)果顯示,免疫前各組豬中和抗體效價均小于1∶4(以1∶4 統(tǒng)計),Bac-E2 組首免后2 周,5 頭豬中3 頭豬的中和抗體效價不低于1∶32,首免后3 周,5 頭豬血清中和抗體效價均不低于1∶64,首免后5 周(加強免疫后2 周)該組豬中和抗體效價均不低于1∶1 024;HCLV 組豬首免后3 周中和抗體效價介于1∶11~1∶22,首免后5 周(加強免疫后2 周)中和抗體效價提高至1∶64~1∶128。采用t 檢驗比較了兩個免疫組的抗體水平,首免后5 周兩組豬中和抗體效價差異極顯著(p<0.01);陰性對照組豬血清中和抗體效價始終小于1∶4(圖4)。表明Bac-E2 能夠誘導(dǎo)豬產(chǎn)生高水平的豬瘟中和抗體。

    圖4 各組豬血清中和抗體效價的測定結(jié)果Fig.4 The titers of neutralizing antibody against CSFV in immuned pigs

    2.4.2 攻毒試驗結(jié)果 首免后35 d 經(jīng)CSFV 石門強毒攻擊后,在16 d 的觀察期內(nèi),Bac-E2 組、HCLV組豬的體溫正常、無發(fā)病、無死亡,保護率為100%;陰性對照組豬呈高熱稽留、畏寒怕冷,食欲不振最終廢絕,便秘與腹瀉交替發(fā)生,并伴有體表出血、結(jié)膜炎等典型豬瘟臨床癥狀,在攻毒后12 d內(nèi)全部發(fā)病死亡(圖5),剖檢可見扁桃體潰瘍、脾臟邊緣梗死、淋巴結(jié)切面呈大理石樣花紋,腎臟表面有大量出血點,呈現(xiàn)典型“雀斑腎”病理變化。

    各組豬攻毒后的拭子中CSFV 的排毒檢測結(jié)果顯示,Bac-E2組、HCLV組豬攻毒后0~16 d的咽拭子及肛拭子中均未檢測到CSFV 核酸。對照組豬攻毒后第4 d即可在其咽拭子中檢出CSFV 核酸,平均為2.31×103拷貝/μL,肛拭子中病毒核酸為3.25×103拷貝/μL,此后拭子中病毒核酸拷貝數(shù)逐漸升高,至攻毒后第12 d 時咽拭子中病毒核酸可達1.038×104拷貝/μL;肛拭子中病毒核酸可達1.15×104拷貝/μL(表2)。以上結(jié)果表明,Bac-E2 能夠有效抵御CSFV 石門強毒的攻擊,與HCLV 組免疫效力相當,可以作為豬瘟E2 亞單位疫苗的候選抗原蛋白。

    圖5 攻毒后各組豬的存活情況Fig.5 Survival curve of pigs at 0-16 days post challenge with CSFV Shimen strain

    表2 攻毒后各組豬咽拭子、肛拭子排毒量檢測結(jié)果(平均拷貝數(shù)/μL)Table 2 Viral loads of challenged swine in pharyngeal and anal swabs(Mean copies/μL)

    3 討 論

    疫苗接種是控制豬瘟的重要手段,其包括滅活疫苗、亞單位疫苗和弱毒疫苗。我國長期堅持采用全面接種豬瘟兔化弱毒疫苗來防控豬瘟,但目前豬瘟在我國依然存在,而且流行株由基因1 群演變?yōu)榛? 群,流行特點也從以往的頻發(fā)大面積流行轉(zhuǎn)變?yōu)闊o規(guī)律區(qū)域性的散發(fā),隱性持續(xù)性感染病例增多,大部分豬場不得不加強疫苗免疫劑量及次數(shù)、采用超前免疫的方式防控豬瘟。此外,豬瘟弱毒疫苗在制造時易受BVDV、支原體、圓環(huán)病毒等血清外源病原污染,而且在臨床使用過程中受母源抗體干擾較大,無法克服免疫耐受、區(qū)分野毒感染與疫苗免疫等問題,阻礙了中國豬瘟的凈化,因此市場上亟待能夠更有效防控并凈化豬瘟的疫苗產(chǎn)品。 昆蟲細胞-桿狀病毒表達系統(tǒng)可高效表達外源基因,并可對外源蛋白進行轉(zhuǎn)錄后糖基化、磷酸化等加工過程,最終獲得與天然蛋白功能相似的可溶性重組蛋白,顯著優(yōu)于細菌、酵母表達體系[12]。季新成等將CSFV E2 基因克隆到桿狀病毒中,經(jīng)SDS-PAGE、western blot 等方法證明該基因在昆蟲細胞中正確表達,能夠與豬瘟陽性血清發(fā)生特異性反應(yīng),但表達量較低[13]。本研究所選的E2 基因去除了跨膜區(qū),保留了信號肽序列,獲得了在上清中正確表達的重組E2 蛋白,表達量顯著提高。胡剛?cè)~等構(gòu)建了兩株含HCLV E2 基因的重組桿狀病毒,并在蠶蛹血淋巴中獲得了重組E2 蛋白,但制備工藝不適合工業(yè)化放大生產(chǎn),而且未見免疫原性研究報道[14]。本研究利用懸浮培養(yǎng)的High Five 昆蟲細胞接種重組桿狀病毒進行E2 蛋白表達,生產(chǎn)工藝易于放大,適合工業(yè)化生產(chǎn)。 孫元等用腺病毒表達了重組E2 蛋白,免疫家兔和豬后均能產(chǎn)生豬瘟特異性抗體,并進行了靶動物的攻毒試驗,攻毒后rAdV-E2 免疫豬抗體迅速升高,除了一頭豬短期體溫升高外,未出現(xiàn)任何其它臨床癥狀[15]。本研究制備獲得的Bac-E2 蛋白免疫豬后,在攻毒前其中和抗體已不低于1∶1 024,利用CSFV 石門強毒攻毒后5 頭豬體溫均未升高,未見異常臨床癥狀,表明Bac-E2 蛋白的免疫原性較好。

    高瑩以CSFV 石門強毒的E2 基因為基礎(chǔ)構(gòu)建了3 種重組桿狀病毒,可誘導(dǎo)仔豬產(chǎn)生高水平中和抗體,但未見其對基因2 群病毒的交叉保護性研究的報道[16]。本研究根據(jù)昆蟲細胞密碼子偏嗜性、簡并性對E2 基因序列進行優(yōu)化,使其與CSFV 基因1、2群病毒的E2 基因編碼的氨基酸同源性最高,以提高E2 蛋白對不同亞群病毒株的交叉保護性。本實驗結(jié)果表明,BAC-E2 免疫動物后可以誘導(dǎo)豬產(chǎn)生高水平的豬瘟特異性中和抗體,能夠有效抵御CSFV 石門強毒的攻擊,后期將采用CSFV 基因2 群流行株進行免疫攻毒試驗,確定該蛋白對CSFV 2.1b、2.1c、2.1d 等亞群的廣譜保護力。本研究制備的Bac-E2 可以作為豬瘟E2 亞單位疫苗的候選抗原蛋白,為豬瘟E2 亞單位疫苗的研制提供了實驗依據(jù)。為了穩(wěn)定并進一步提升Bac-E2 蛋白產(chǎn)量,后期擬對重組桿狀病毒進行連續(xù)傳代穩(wěn)定性測試,同時建立生物反應(yīng)器全懸浮培養(yǎng)昆蟲細胞的生產(chǎn)工藝,促進該產(chǎn)品向大生產(chǎn)轉(zhuǎn)化。

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