番荔枝中一個(gè)SWEET家族基因的克隆與表達(dá)分析

安振宇　方仁　黃偉雄　堯金燕　韋蒴曈

摘? 要：以番荔枝不同組織樣品為材料，通過(guò)基因文庫(kù)篩選，利用RT-PCR技術(shù)克隆出1個(gè)1227?bp的基因，命名為AT-SWEET16-1，該基因編碼408個(gè)氨基酸，該氨基酸序列在N端以α螺旋形成THB結(jié)構(gòu)域。生物信息學(xué)分析結(jié)果表明，該蛋白分子量為44.8?kDa，等電點(diǎn)為8.87。進(jìn)化分析結(jié)果發(fā)現(xiàn)其與海棗（Phoenix dactylifera）相類聚。qRT-PCR分析結(jié)果表明，該基因在植株的根、莖、嫩葉、老葉、花蕾、花苞、幼果、成熟果中均有表達(dá)，AT-SWEET16-1基因在不同組織中的表達(dá)量依次是：成熟果>莖>根>花蕾>幼果>老葉>嫩葉;該基因在不同果實(shí)發(fā)育階段中的表達(dá)情況為：在果實(shí)不同發(fā)育階段，果柄中的表達(dá)量最高，果肉、果皮中則相對(duì)較低，種子中最低;但果實(shí)成熟期該基因在果柄、果肉中的表達(dá)量最高。原位雜交實(shí)驗(yàn)觀察發(fā)現(xiàn)，基因表達(dá)位置為果柄韌皮部、果肉細(xì)胞膜間，結(jié)合基因表達(dá)分析結(jié)果，預(yù)示該基因在植株糖分積累與轉(zhuǎn)運(yùn)等方面起到一定的作用。

關(guān)鍵詞：番荔枝;克隆;SWEET基因;表達(dá)分析

中圖分類號(hào)：S813.3 ?????文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼：A

Cloning and Expression Analysis of a SWEET Family Gene from Annona squamosa L.

AN Zhenyu1，2， FANG Ren1*， HUANG Weixiong1， YAO Jinyan1， WEI Shuotong1

1. Horticultural Research Institute， Guangxi Academy of Agricultural Sciences / Nanning Investigation Station of South Subtropical Fruit Trees， Ministry of Agriculture and Rural Affairs， Nanning， Guangxi 530007， China; 2. Guangxi Crop Genetic Improvement and Biotech-Nology Lab， Nanning， Guangxi 530007， China

Abstract： The fruit at different stages of Annona squamosa L. was used as the experimental material. A gene named? AT-SWEET16-1 with 1227?bp was cloned by RT-PCR， which encoding 408 amino acids. The amino acid sequence had a α-helix THB domain at the N-terminal. Bioinformatics analysis showed that the molecular weight of the protein was 44.8?kDa， and the isoelectric point was 8.87. Evolutionary analysis showed that it was associated with Phoenix dactylifera）. qRT-PCR analysis showed that the gene was expressed in roots， stems， tender leaves， old leaves， flower buds， buds， young?fruit?and?mature?fruit.?The?expression?of?AT-SWEET16-1?gene?in?tissue?was?as?follows：?mature?fruit>stem>root>

flower bud>young fruit>old leaf>tender leaf. The expression of the gene in different fruit development stages was the highest in fruit stalk， relatively low in pulp and pericarp， and the lowest in seed， and the highest expression in fruit stalk and pulp was at fruit maturity stage. It was found that the gene was expressed in the phloem of the fruit stalk and between the cell membrane of the pulp cell wall， indicating that the gene played a role in the progress of the fruit development and the transport of plant nutrients.

Keywords： Annona squamosa L.; cloning; SWEET gene; expression analysis

DOI： 10.3969/j.issn.1000-2561.2020.11.001

番荔枝（Annona squamosa L.）原產(chǎn)于熱帶美洲和西印度群島，現(xiàn)廣泛分布于中國(guó)臺(tái)灣、福建、廣東、廣西、海南和云南等?。▍^(qū)），由于其果實(shí)糖分含量較高，每100?g果肉組織中的可溶性固形物含量可高達(dá)20%，總糖含量達(dá)15.3%～18.3%，因此，深受廣大甜食愛(ài)好者的喜愛(ài)。糖是生物體內(nèi)的主要能源物質(zhì)及代謝底物，與植物的生長(zhǎng)、生殖、發(fā)育與衰老等生理過(guò)程息息相關(guān)，來(lái)自SWEET家族的糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白在植物生長(zhǎng)發(fā)育階段會(huì)起到調(diào)節(jié)糖的運(yùn)輸，從而影響果實(shí)糖分的積累。因此，研究番荔枝SWEET基因?qū)μ穷惖霓D(zhuǎn)運(yùn)調(diào)控機(jī)理對(duì)于番荔枝果實(shí)糖分積累、改善品質(zhì)等田間栽培調(diào)控具有重要的理論意義。

SWEETs是一類新發(fā)現(xiàn)的糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白，具有7個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)域，廣泛存在于原核生物、人類、植物以及動(dòng)物中。SWEET基因家族的成員數(shù)目有所差異，如擬南芥有17個(gè)SWEET家族成員，水稻有21個(gè)，高粱23個(gè)，玉米24個(gè)，番茄有29個(gè)[1]，而大豆的高達(dá)52個(gè)。不同物種所包括的成員數(shù)如此之多，預(yù)示著SWEET蛋白功能的多樣性[2-3]。對(duì)植物SWEET基因家族的研究發(fā)現(xiàn)，SWEET蛋白有4個(gè)分支：Clade Ⅰ、Clade Ⅱ、Clade Ⅲ和Clade Ⅳ，其中Clade Ⅰ（SWEET1-SWEET3）為己糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白，功能為轉(zhuǎn)運(yùn)葡萄糖;Clade Ⅱ（SWEET4-SWEET8）功能為轉(zhuǎn)運(yùn)葡萄糖;Clade Ⅲ（SWET9-SWEET15）功能為轉(zhuǎn)運(yùn)蔗糖;Clade Ⅳ（SWEET16-SWEET17）為液泡膜轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白，功能為轉(zhuǎn)運(yùn)果糖[4]。SWEET蛋白通過(guò)對(duì)多糖類，特別是蔗糖起控制亞細(xì)胞定位以及從庫(kù)到源的長(zhǎng)距離運(yùn)輸?shù)淖饔肹5]。Madoka等[6]通過(guò)對(duì)水稻SWEET基因的研究，發(fā)現(xiàn)糖的合成與轉(zhuǎn)運(yùn)是通過(guò)己糖激酶來(lái)完成的，它能使葡萄糖和果糖磷酸化，再通過(guò)SWEET蛋白的結(jié)合以實(shí)現(xiàn)糖分的運(yùn)輸。SWEET蛋白除了參與糖運(yùn)輸過(guò)程，其在植株生長(zhǎng)發(fā)育、衰老、逆境脅迫、抗病等方面亦起著非常重要的作用[7-8]。本研究以番荔枝‘吉夫納品種為材料，通過(guò)基因克隆與表達(dá)分析，以期探究SWEET基因在番荔枝生長(zhǎng)過(guò)程中各組織的表達(dá)情況，進(jìn)一步研究SWEET基因的功能與作用，最終為田間植株生長(zhǎng)發(fā)育與果實(shí)品質(zhì)調(diào)控提供理論依據(jù)。

1? 材料與方法

1.1? 材料

供試植物樣品為2006年種植于廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院示范園區(qū)內(nèi)的番荔枝科鳳梨釋迦（Atemoya）品系‘吉夫納品種，取其根、莖、嫩葉、老葉及花后8、30、90、120、140 d的果實(shí)為供試材料。所用試驗(yàn)耗材為：cDNA Synthesis Kit試劑盒（TaKaRa）、M-MLV逆轉(zhuǎn)錄酶（TaKaRa）、EX TaqDNA聚合酶（TaKaRa）、氨芐青霉素（TaKaRa）、pMD18-T載體（TaKaRa）、熒光染料及相關(guān)耗材等;瓊脂糖、瓊脂糖凝膠回收試劑盒、大腸桿菌感受態(tài)DH5α（南寧國(guó)拓生物科技有限公司）。引物合成及測(cè)序均由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司完成。

1.2? 方法

1.2.1? RNA提取 ?提取番荔枝不同組織部位的RNA，采用課題組改良華越洋試劑盒提取法[9]。用紫外分光光度計(jì)測(cè)定其純度和濃度，并用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)其完整性。

1.2.2? cDNA第一鏈合成? 以AUP1為逆轉(zhuǎn)錄引物，用M-MLV逆轉(zhuǎn)錄酶合成cDNA第一鏈，紫外分光光度計(jì)測(cè)定逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物的濃度，并用瓊脂糖電泳檢測(cè)逆轉(zhuǎn)錄效果，最后配成200??g/?L標(biāo)準(zhǔn)濃度用于PCR擴(kuò)增。

1.2.3? 番荔枝SWEET基因片段的克隆? 利用Super SMARTTM PCR cDNA Synthesis Kit試劑盒構(gòu)建正向消減cDNA文庫(kù)，利用斑點(diǎn)雜交技術(shù)對(duì)克隆菌株作進(jìn)一步篩選，再?gòu)闹刑暨x陽(yáng)性克隆菌株，通過(guò)De Novo技術(shù)對(duì)番荔枝進(jìn)行測(cè)序分析，獲得的AT-SWEET同源基因片段序列信息，設(shè)計(jì)上、下游特異引物（AT-SWEET-F、AT-SWEET-R），利用RT-PCR方法獲得番荔枝長(zhǎng)度為1227?bp的SWEET基因序列，命名為AT-SWEET16-1。同源基因cDNA擴(kuò)增PCR體系：上下游引物各為1??L，cDNA 1??L，dNTP 0.5??L，Dream Taq聚合酶0.16??L，Buffer 2.5??L，水18.84??L。PCR擴(kuò)增參數(shù)為：95?℃，5?min;95?℃，40?s;57?℃，40?s;72?℃，80?s，42個(gè)循環(huán);72?℃，10?min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)，試劑盒回收克隆的目的片段，膠回收產(chǎn)物連接pMD18-T載體后轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞，畫平板培養(yǎng)后篩選陽(yáng)性菌落，經(jīng)PCR驗(yàn)證后測(cè)序。本研究所用引物見(jiàn)表1。

1.2.4? 番荔枝SWEET進(jìn)化樹(shù)及蛋白序列分析? 通過(guò)美國(guó)國(guó)立生物信息中心National Center for Biotechnology Information（NCBI）Blast工具檢索SWEET同源基因的相似性;利用DNAman 5.2.2軟件分析預(yù)測(cè);利用Protparam和GENSCAN軟件分別分析氨基酸及核苷酸序列;利用MEGA 10.0軟件對(duì)多物種SWEET同源基因進(jìn)行近鄰算法分析，構(gòu)建推測(cè)蛋白系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。

1.2.5? qRT-PCR? 采集番荔枝的幼嫩葉、老葉、莖、花、花蕾及不同發(fā)育階段的果實(shí)的不同部位（果柄、果皮、果肉和種子）。以持家基因GAPDH為內(nèi)參基因（引物GAPDH-F、GAPDH-R），設(shè)計(jì)熒光定量引物AT-F、AT-R，參照試劑盒說(shuō)明書，利用羅氏熒光定量PCR儀（Light Cycler480）進(jìn)行qRT-PCR實(shí)驗(yàn)，分析番荔枝SWEET基因在植株的不同組織和果實(shí)的不同部位中的表達(dá)模式。

1.2.6? 原位雜交? 采集番荔枝成熟果等組織為實(shí)驗(yàn)樣品，委托上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成基因探針（SWEET16-1，5'端加地高辛）。實(shí)驗(yàn)主要步驟如下：石蠟切片脫蠟至無(wú)水;使用3%檸檬酸稀釋胃蛋白酶，將剛稀釋的混合液保持于37?℃，進(jìn)行30?min消化處理;滴加預(yù)雜交液，于37?℃條件下進(jìn)行實(shí)驗(yàn)約2～3?h;將雜交探針混合液稀釋到適量的濃度，保持在42?℃條件下，實(shí)驗(yàn)處理12?h;使用在恒溫水浴鍋中37?℃溫浴的檸檬酸鈉緩沖液（SSC），將樣品洗滌2次，每次洗滌時(shí)間保持在5～10?min;滴加封閉液，保證在37?℃條件下進(jìn)行30?min的實(shí)驗(yàn)處理;滴加生物素化鼠抗地高辛，于37?℃條件下進(jìn)行約1?h的實(shí)驗(yàn)處理;配制顯色液，室溫顯色;蘇木素復(fù)染細(xì)胞核，充分水洗;室溫晾干，中性樹(shù)膠封片;顯微鏡觀察，拍照。

2? 結(jié)果與分析

2.1? RNA提取及cDNA第一鏈合成

利用華越洋試劑盒改良提取法提取番荔枝的不同組織、器官樣本RNA，經(jīng)1.0%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果表明，條帶清晰，無(wú)DNA污染;經(jīng)分光光度計(jì)檢測(cè)，其OD260/OD280在1.9～2.1之間，說(shuō)明RNA提取質(zhì)量較好[9]。將RNA稀釋成1?g/L，然后按照TaKaRa反轉(zhuǎn)錄試劑盒步驟進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。

2.2? AT-SWEET基因全長(zhǎng)克隆

利用SWEET基因特異引物AT-SWEET-F和AT-SWEET-R，以番荔枝cDNA為模板擴(kuò)增基因片段，獲得長(zhǎng)度為1227?bp的番荔枝科鳳梨釋迦（Atemoya）品系SWEET基因全長(zhǎng)cDNA序列，通過(guò)Uniprot數(shù)據(jù)庫(kù)（http：//www.uniprot.org/）比對(duì)及生物信息學(xué)分析后，結(jié)果發(fā)現(xiàn)該基因所編碼的蛋白結(jié)構(gòu)與SWEET16蛋白家族結(jié)構(gòu)相似，由a螺旋形成的三螺旋束（triple-helix bundles，THB）結(jié)構(gòu)域，故命名為AT-SWEET16-1，與克隆載體PMD-18連接，轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞。通過(guò)重組子的篩選，獲得陽(yáng)性克隆菌株9個(gè)，通過(guò)抑制消減雜交技術(shù)及酶切檢驗(yàn)后（圖1），送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司利用表達(dá)譜基因芯片技術(shù)進(jìn)行測(cè)序分析，以驗(yàn)證構(gòu)建克隆載體。

2.3? 生物信息學(xué)分析

利用BioXM2.6軟件對(duì)AT-SWEET16-1基因進(jìn)行分析，基因序列全長(zhǎng)1227?bp（NCBI基因登錄號(hào)：2308905），編碼408個(gè)氨基酸，利用Protparam軟件對(duì)基因所編碼的氨基酸進(jìn)行理化分析，結(jié)果表明，理論蛋白質(zhì)的分子量為44.8?kDa，等電點(diǎn)為8.87;原子個(gè)數(shù)為6392，分子式為C2070H3240N516O542S24;不穩(wěn)定指數(shù)（instability index）為41.39;脂肪族指數(shù)（aliphatic index）為108.48;蛋白質(zhì)疏水性（grand average of hydropathicity，GRAVY）為0.562，預(yù)測(cè)為疏水蛋白;該蛋白在活體哺乳動(dòng)物的紅細(xì)胞的半衰期為30?h，在活體酵母中半衰期超過(guò)20?h，在活體大腸桿菌超過(guò)10?h。利用ScanProsite、SMART和DNAman軟件對(duì)氨基酸序列的結(jié)構(gòu)域進(jìn)行分析。N端由2個(gè)相對(duì)保守的3-TM結(jié)構(gòu)域（seven ɑ-helical transmembranes， TM）串聯(lián)重復(fù)和1個(gè)低保守的單TM進(jìn)行連接，組成3-1-3對(duì)稱結(jié)構(gòu)，再由3個(gè)TMs以TM1-TM3-TM2的形式排列形成三螺旋束（triple-helix bundles，THB）結(jié)構(gòu)域（圖2），蛋白質(zhì)的跨膜片段見(jiàn)圖3，二級(jí)結(jié)構(gòu)見(jiàn)圖4。

2.4? 系統(tǒng)進(jìn)化分析

將獲得的AT-SWEET16-1基因ORF用DNAman軟件翻譯成氨基酸序列，與NCBI上公布的其他物種的相關(guān)基因序列進(jìn)行Blast比對(duì)，翻譯成氨基酸序列后進(jìn)行同源比對(duì)，結(jié)果發(fā)現(xiàn)相似性最高為98%，最低為72%，選取14個(gè)同源性、相似性較高（≥81%）且具有SWEET蛋白結(jié)構(gòu)特性的氨基酸序列。用MEGA10.0軟件繪制進(jìn)化樹(shù)（圖5），結(jié)果發(fā)現(xiàn)其與海棗（Phoenix dactylifera）相類聚，表明在進(jìn)化關(guān)系上非常接近，但與其他物種的SWEET蛋白進(jìn)化關(guān)系較遠(yuǎn)。對(duì)比AT-SWEET16-1基因所編碼的氨基酸序列與海棗（XP_ 008784806.1）所編碼的氨基酸序列，發(fā)現(xiàn)僅有幾個(gè)氨基酸序列存在差異，相似度達(dá)95%。

2.5? 番荔枝AT-SWEET16-1基因的表達(dá)分析

分析番荔枝AT-SWEET16-1基因在不同組織中的表達(dá)情況，結(jié)果見(jiàn)圖6和圖7，番荔枝AT-SWEET16-1基因在根、莖、嫩葉、老葉、花蕾、幼果、成熟果中均有表達(dá)，不同組織間表達(dá)量存在明顯不同，但差異不顯著，在成熟果、莖的表達(dá)量均比其他組織高，其中，在成熟果中的表達(dá)量最高，在嫩葉組織中表達(dá)量最低，成熟果中的表達(dá)量是幼果表達(dá)量的4倍多，是嫩葉表達(dá)量的5倍多。

AT-SWEET16-1基因在果實(shí)不同發(fā)育階段不同部位的表達(dá)情況見(jiàn)圖7，結(jié)果發(fā)現(xiàn)在果實(shí)成熟期果柄的表達(dá)量明顯比其他果實(shí)發(fā)育時(shí)期的其他組織部位高，AT-SWEET16-1基因在花后140 d果實(shí)的果柄表達(dá)量最高，在果實(shí)種子中的最高表達(dá)量是在花后90 d。AT-SWEET16-1基因在番荔枝果實(shí)的不同部位的表達(dá)情況為：果柄>果肉>果皮>種子。

2.6? 原位雜交

通過(guò)熒光定量分析結(jié)果發(fā)現(xiàn)，AT-SWEET16-1基因在番荔枝成熟果中果肉、果柄組織部位表達(dá)量高，將果肉、果柄組織樣品制成石蠟切片，用加地高辛的探針染色后進(jìn)行電鏡觀察，得到直觀的基因表達(dá)部位圖像（圖8）。由圖8可知，基因表達(dá)位置為果肉細(xì)胞膜間、果柄韌皮部（顯示黃色）。

3? 討論

番荔枝作為世界五大熱帶名果之一，具有非常高的經(jīng)濟(jì)價(jià)值，其糖分含量對(duì)果實(shí)風(fēng)味和品質(zhì)有著重要影響。而來(lái)自SWEET家族的糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白在植物生長(zhǎng)發(fā)育中能夠調(diào)節(jié)糖分的運(yùn)輸，從而影響植株的發(fā)育和果實(shí)糖分的積累。在本研究中，從番荔枝果實(shí)的時(shí)空表達(dá)分析中發(fā)現(xiàn)AT-SWEET16-1基因在根、莖、嫩葉、老葉、花蕾、幼果、成熟果中均有表達(dá)，其表達(dá)量依次為：成熟果>莖>根>花蕾>幼果>老葉>嫩葉。AT-SWEET16-1基因在果實(shí)成熟期的表達(dá)量高于幼果期，說(shuō)明其對(duì)果實(shí)發(fā)育起著一定的調(diào)控作用，可能是基因編碼的蛋白參與到果實(shí)糖分的合成與運(yùn)輸中，這與Chong等[10]在葡萄上的VvSWEET7基因表達(dá)一致。從不同組織部位表達(dá)看，AT-SWEET16-1基因在果柄中的表達(dá)量最高，果肉和果皮中相對(duì)較低，種子中的表達(dá)量最低，說(shuō)明該基因有可能從源器官運(yùn)輸至庫(kù)器官的轉(zhuǎn)運(yùn)過(guò)程，通過(guò)原位雜交電鏡觀察再次驗(yàn)證了AT-SWEET16-1基因與糖分積累與轉(zhuǎn)運(yùn)有關(guān)。本研究的基因表達(dá)結(jié)果與番茄[1]、木薯[11]、蘋果[12]中SWEET基因的表達(dá)較為一致，SWEET蛋白在植物細(xì)胞間隙、液泡中均有表達(dá)，它們通過(guò)調(diào)控植物體內(nèi)糖類化合物的運(yùn)輸、分配和貯藏，參與到植物生長(zhǎng)發(fā)育的重要生理過(guò)程;通過(guò)泛素裂解化酵母膜蛋白雙雜交和綠色熒光蛋白（GFP）試驗(yàn)表明，SWEET蛋白功能缺失突變能阻止葡萄糖的轉(zhuǎn)運(yùn)[13];SWEET蛋白同植株配子體發(fā)育有關(guān)，通過(guò)敲除SWEET基因的擬南芥突變體產(chǎn)生的種子較小，并且植株有明顯的發(fā)育延遲現(xiàn)象[14];SWEET蛋白參與的多種生理過(guò)程，如韌皮部裝載、蜜腺分泌[15]、籽粒灌漿、花粉發(fā)育、葉片衰老及響應(yīng)生物和非生物脅迫[16-17]，但目前有關(guān)SWEET基因的功能只在少數(shù)作物中得到驗(yàn)證，還有很多SWEET家族成員的功能有待進(jìn)一步挖掘[18]。

綜上所述，番荔枝AT-SWEET16-1基因可能在植株糖分積累與轉(zhuǎn)運(yùn)等方面起到一定的作用，但該基因具體功能有待進(jìn)一步驗(yàn)證。

參考文獻(xiàn)

[1] 程 ?杰， 張新圣， 李安琪， 等. 番茄果實(shí)成熟過(guò)程中SlSWEET7a的功能分析[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)， 2018， 51（15）： 2958-2968.

[2] Yuan M， Wang S. Rice MtN3/saliva/SWEET family genes and their homologs in cellular organisms[J]. Molecular Plant， 2013， 6（3）： 665-674.

[3] Dobrenel T， Marchive C， Azzopardi M，et al. Sugar metabolism and the plant target of rapamycin kinase： A SWEET operator[J]. Frontiers in Plant Science， 2013， 4（1）： 93.

[4] Chen L Q， Hou B H， Lalonde S， et al. Sugar transporters for intercellular exchange and nutrition of pathogens[J]. Nature， 2010， 468（7323）： 527-532.

[5] 劉 ?暢， 姜 ?晶， 韓曉雪， 等. 植物中SWEET基因家族研究進(jìn)展[J]. 植物生理學(xué)報(bào)， 2014， 509（9）： 1367-1373.

[6] Madoka Y， Naohiro A， Tatsuro H， et al. The promoter activities of sucrose phosphate synthase genes in rice OsSPSl and OsSPSll，are controlled by light and circadian clock， but not by sucrose[J]. Frontiers in Plant Science， 2013， 4（1）： 31.

[7] Guo W J， Nagy R， Chen H Y， et al. SWEETI7， a facilita-tive transporter mediates fructose transport across the tonoplast of Arabidopsis roots and leaves[J]. Plant Physiology， 2014， 164（2）： 777-789.

[8] Patil G， Valliyodan B， Deshmukh R， et al. Soybean （Glycine max） SWEET gene family： Insights through comparative genomics transcriptome profiling and whole genome re-sequence analysis[J]. BMC Genomics， 2015， 16（1）： 520.

[9] 安振宇， 方 ?仁， 黃偉雄， 等. 鳳梨釋迦總RNA提取方法探究及質(zhì)量分析[J]. 分子植物育種， 2018， 16（5）： 1654-1659.

[10] Chong J， Piron M C， Meyer S， et al. The SWEET family of sugar ?transporters in grapevine： Vv SWEET4 is involved in the interaction with Botrytis cinerea[J]. Journal of Experimental Botany， 2014， 65（22）： 6589-6601.

[11] 劉 ?秦， 馬 ?暢， 馮世鵬， 等. 木薯SWEET1基因的分子克隆、亞細(xì)胞定位與功能分析[J]. 分子植物育種， 2017， 15（7）： 2502-2509.

[12] 楊官顯， 許海峰， 張 ?靜， 等. 蘋果糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因MdSWEET17的功能鑒定[J]. 植物生理學(xué)報(bào)， 2018， 54（11）： 1737-1745.

[13] Zhou Y， Liu L， Huang W， et al. Overexpression of OsSWEETS in rice causes growth retardation and precocious senescence[J]. PLoS One， 2014， 9（4）： e94210.

[14] Braun D M. Sweet！ the pathway is complete[J]. Science， 2012， 335（6065）： 173-174.

[15] 薛蓓蓓， 覃麗芳， 董明右， 等. 木薯SWEETs基因家族生物信息學(xué)及表達(dá)特性研究[J]. 基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué)， 2019， 38（1）： 260-268.

[16] Kanno Y， Oikawa T， Chiba Y， et al. AtSWEETI3 and AtSWEETI4 regulate gibberellin-mediated physiological processes[J]. Nature Communications， 2016， 7： 13245.

[17] Mueckler M. Facilitative glucose transporters[J]. European Journal of Biochemistry， 1994， 219（3）： 713-725.

[18] 李艷嬌， 李文才， 孫 ?琦， 等. SWEET轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白在作物中的功能研究及前景展望[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué)， 2019， 51（6）： 154-159.

收稿日期 ?2019-11-08;修回日期 ?2020-03-23

基金項(xiàng)目 ?國(guó)家現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系廣西創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)項(xiàng)目（No. nycytxgxcxtd-17-15）;廣西創(chuàng)新驅(qū)動(dòng)發(fā)展專項(xiàng)資金項(xiàng)目（桂科AA17204026）;廣西科技重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目（桂科AB19245004）。

作者簡(jiǎn)介 ?安振宇（1989—），男，碩士，助理研究員，研究方向：果樹(shù)遺傳育種與分子生物技術(shù)。*通信作者（Corresponding author）：方 ?仁（FANG Ren），E-mail：fangren1981@163.com。