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    RNR3啟動子調(diào)控的紅綠熒光蛋白雙信號發(fā)光酵母細胞對化學誘變原的篩選

    2019-08-06 08:28:52盧光玉朱方渝吳倩倩李湘鳴
    癌變·畸變·突變 2019年4期
    關(guān)鍵詞:酵母毒性調(diào)控

    姚 佳,劉 星,盧光玉,朱方渝,吳倩倩,李湘鳴,*

    (1.揚州大學醫(yī)學院,江蘇 揚州 225001;2.揚州市衛(wèi)生監(jiān)督所,江蘇 揚州 225002;3.蘇州市相城人民醫(yī)院,江蘇 蘇州 215100)

    核糖核苷酸還原酶是生物體內(nèi)唯一的催化4種核糖核苷酸還原、生成相應的脫氧核糖核苷酸的酶。該酶是DNA合成和修復的關(guān)鍵酶和限速酶,對細胞的增殖和分化起著調(diào)控作用。RNR3屬于核糖核酸還原酶(ribonucleotidereductase,RNR)中的一員,在正常生長條件下,酵母細胞中的RNR3基因處于封閉狀態(tài),當誘變原造成DNA損傷或合成阻斷時,可誘導該基因的大量表達。本實驗室曾將RNR3基因啟動子與某報告基因(如yEGFP,LacZ等)相融合,構(gòu)建成重組酵母細胞,用于對化學誘變原的篩選[1],但是在試驗過程中發(fā)現(xiàn)報告基因的表達強度多數(shù)需用D(600)或蛋白含量進行校正,在操作時,必須將細胞濃度進行適當稀釋,使D(600)位于0.2~0.5之間[2],否則誤差較大,故操作不方便。

    DsRed-Express-2是紅色熒光蛋白(DsRed)的突變體,具有成熟快的特點,最大吸收波長和發(fā)射波長分別為558和583nm,因此可用其作為“內(nèi)參比”,轉(zhuǎn)化于RNR3調(diào)控的yEGFP發(fā)光酵母細胞,用于校正因受試物的細胞毒性作用對yEGFP發(fā)光強度的影響。當化學物誘變原作用于酵母細胞使其DNA損傷或合成阻斷時,會經(jīng)RNR3使yEGFP基因大量表達,通過檢測yEGFP和DsRed-Express2熒光強度,其相對發(fā)光度(即yEGFP/DsRed-Express2比值)與化學誘變原間存在著劑量-效應關(guān)系。

    1 材料與方法

    1.1 試劑和儀器

    所用化學誘變原購自美國Sigma公司;倒置熒光顯微鏡(尼康Ti-U)由日本Nikon公司生產(chǎn),多功能酶標儀(Bio-TekSynergy2)由美國伯騰公司生產(chǎn)。

    1.2 RNR3啟動子調(diào)控的綠熒光蛋白雙信號發(fā)光酵母細胞的建立

    將RNR3啟動子調(diào)控的yEGFP發(fā)光細胞(W303-1A/RNR3-yEGFP)[1]劃線接種于缺乏尿嘧啶(SD/-ura)的選擇性培養(yǎng)板上,30℃培養(yǎng)3~4d,生長出直徑為3~4mm的克隆。從SD/-ura培養(yǎng)板挑取W303-1A/RNR3-yEGFP的克隆,用醋酸鋰方法將pGPD-DsRed-Express2(本實驗室構(gòu)建)[3]轉(zhuǎn)化于感受態(tài)酵母細胞W303-1A/RNR3-yEGFP,用SD/-trp,-ura選擇性培養(yǎng)板篩選陽性克隆。挑取細胞克隆,分別制成細胞懸液,置于倒置熒光顯微鏡下,分別在藍色和綠色光激發(fā)下觀察細胞的發(fā)光強度,選取可發(fā)出綠光和紅光的酵母克隆,命名為W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2。

    1.3 RNR3調(diào)控的雙信號發(fā)光酵母細胞對誘變原的篩選研究

    挑取重組酵母細胞(W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2)克隆,接種于5mLSD/-trp,-ura培養(yǎng)液中,30℃振蕩培養(yǎng)過夜。取振蕩培養(yǎng)過夜酵母培養(yǎng)液2mL,加入SD/-trp,-ura10mL,混勻,取100 μL加入到96孔黑色酶標板中,選取以下化學誘變原進行研究,每種化學誘變原設(shè)12個濃度組,濃度梯度呈2倍稀釋。①與DNA發(fā)生結(jié)合的誘變原,放線菌素(actinomycinD)和溴乙錠(ethidiumbromide);②使DNA發(fā)生烷基化的誘變原,絲裂霉素C(mitomycinC)、甲磺酸甲脂(methylmethanesulfonate,MMS)和瘤可寧(chlorambucil,苯丁酸氮芥);③使DNA發(fā)生斷裂的誘變原,順鉑(cis-Platinum)、4-硝基-N-氧化喹啉(4-nitroquinoline-N-oxide, 4-NQO)、 博 來 霉 素(bleomycin)和福來霉素(phleomycin);④抑制DNA合成酶或拓撲異構(gòu)酶的誘變原,5-氟尿嘧啶(5-fluorouracil, 5-FU)、 羥 基 脲 (hydroxyurea)、 喜 樹 堿(camptothecin)和阿非迪霉素(aphidicolin);⑤其他生物毒性作用的化合物,秋水仙堿(colchicine)、刀豆氨酸(canavanine)和四環(huán)素(tetracycline)。選用各自受試物的溶劑作為空白對照。溶液加入體積不超過總體積的2%。將96孔黑色酶標板用保鮮膜密封,于30℃振蕩培養(yǎng)12h,用多功能酶標儀(Bio-TekSynergy2)檢測綠色熒光蛋白(yEGFP)(激發(fā)波長485nm,發(fā)射波長528 nm,帶寬20nm)和紅色熒光蛋白(DsRed-Express-2)(激發(fā)波長555nm,發(fā)射波長585nm,帶寬20nm)的發(fā)光強度(luminousintensity,l)。

    1.4 統(tǒng)計方法

    用Excel軟件計算相對熒光強度(relative fluorescence,RF),即 yEGFP 與 DsRed-Express-2 之比。用RF表示酵母發(fā)光強度與受試物的劑量效應關(guān)系,并求誘導倍數(shù)(foldincuction,F(xiàn)I),即受試組與空白對照組的相對發(fā)光度之比。當FI≥1.5倍以上,且受試物與RF具有明顯的劑量效應關(guān)系時,可判斷受試物為陽性。

    細胞毒性判斷:試驗前首先測各空白對照組的DsRed-Express-2發(fā)光度(lDsRed-Express-2,對照組),求 xˉ和s,以xˉ-1.64s作為判斷界值。當受試物組的DsRed-Express-2發(fā)光度(lDsRed-Express-2,受試物)低于該界值時,則判斷受試物對細胞產(chǎn)生明顯的毒性。本文經(jīng)研究確定l=500cd作為判斷標準。

    2 結(jié)果

    2.1 yEGFP和DsRed-Express-2發(fā)光效果

    圖1為W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2酵母細胞在倒置熒光顯微鏡下的觀察效果,可見分別在藍色和綠色光激發(fā)下,細胞發(fā)出綠光和紅光,說明雙發(fā)光重組酵母細胞構(gòu)建成功。

    圖1 yEGFP和 DsRed-Express-2在RNR3啟動子調(diào)控的酵母細胞中表達

    2.2 雙發(fā)光重組酵母細胞對與DNA發(fā)生結(jié)合誘變原的篩選

    與DNA發(fā)生結(jié)合的誘變原(放線菌素D和EB)與W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2的劑量效應關(guān)系見表1,可見在受試濃度范圍內(nèi),隨著誘變原濃度的升高,DsRed-Express-2發(fā)光度未見明顯下降,說明未對細胞產(chǎn)生明顯的毒性作用,同時也未對yEGFP產(chǎn)生明顯的誘導作用,F(xiàn)I均在1.5以下。

    表1 與DNA發(fā)生結(jié)合的誘變原對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    表1 與DNA發(fā)生結(jié)合的誘變原對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    放線菌素D濃度/(μg/L)0 0.4 0.8 1.6 3.1 6.3 12.5 25 50 100 200 400 lDsRed-Express-2 9589.0±403.4 8737.3±758.7 8710.3±633.0 8966.3±899.9 9340.0±1233.1 9221.3±926.9 8923.3±1080.4 8863.0±1601.1 9066.7±1130.2 8921.3±1700.9 9032.7±2152.1 9286.7±3478.0 FI 1.00±0.00 1.14±0.11 1.13±0.09 1.12±0.14 1.10±0.17 1.10±0.12 1.15±0.08 1.19±0.16 1.15±0.10 1.17±0.16 1.14±0.26 1.16±0.49 EB濃度/(μg/L)0 0.1 0.2 0.4 0.8 1.6 3.1 6.3 12.5 25 50 100 lDsRed-Express-2 9066.0±182.4 8640.7±396.3 8335.7±532.1 8571.7±717.1 8651.7±839.1 8440.3±656.7 8779.3±1302.0 8401.3±619.4 8873.7±550.4 9603.3±496.9 10816.0±380.1 12595.7±15.3 FI 1.00±0.00 1.06±0.06 1.11±0.08 1.09±0.08 1.11±0.10 1.14±0.07 1.19±0.20 1.32±0.08 1.37±0.07 1.35±0.06 1.30±0.02 1.25±0.03

    2.3 雙發(fā)光重組酵母細胞對使DNA發(fā)生烷基化誘變原的篩選

    表2為與DNA發(fā)生烷基化的誘變原(絲裂霉素C、MMS和瘤可寧)與W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2的劑量效應關(guān)系??梢娊z裂霉素C在整個受試濃度范圍內(nèi),未對yEGFP產(chǎn)生明顯的誘導作用,F(xiàn)I接近于1(在0.94-1.09的范圍內(nèi)波動);而MMS和瘤可寧卻不同,對yEGFP產(chǎn)生明顯的誘導作用,MMS的FI明顯高于瘤可寧,前者為4.12,而后者為2.80。但是,瘤可寧在最高濃度組對細胞呈現(xiàn)毒性作用,表現(xiàn)為DsRed-Express-2發(fā)光度明顯降低,但仍大于500 cd。

    表2 使DNA發(fā)生烷基化的誘變原對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    表2 使DNA發(fā)生烷基化的誘變原對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    絲裂霉素C濃度/(μg/L)0 0.05 0.1 0.2 0.4 0.8 1.6 3.1 6.25 12.5 25 50 lDsRed-Express-2 8604.0±286.1 8368.3±553.5 8801.0±838.1 8427.3±1034.3 8591.7±787.1 8642.7±1119.0 8540.7±1013.6 8162.7±890.7 8599.3±833.1 8680.0±951.0 8726.0±877.4 8661.0±310.5 FI 1.00±0.00 1.06±0.04 1.03±0.07 1.07±0.10 1.07±0.08 1.12±0.11 1.09±0.10 1.08±0.10 1.04±0.08 1.02±0.07 0.98±0.06 0.94±0.06 MMS濃度/(μg/L)0 0.4 0.8 1.56 3.12 6.25 12.5 25 50 100 200 400 lDsRed-Express-2 9283.0±103.6 8709.0±667.9 8920.0±794.2 8596.0±173.9 9290.0±875.5 8917.3±846.2 8770.3±511.5 9040.3±476.7 7967.3±1617.8 8679.7±841.1 9447.0±559.1 8295.0±2658.2 FI 1.00±0.00 1.10±0.05 1.07±0.07 1.16±0.13 1.03±0.09 1.09±0.13 1.11±0.07 1.35±0.26 1.40±0.29 1.30±0.14 3.68±0.22 4.12±0.92瘤可寧濃度/(μg/L)0 0.20 0.39 0.78 1.56 3.13 6.25 12.5 25 50 100 200 lDsRed-Express-2 9916.7±256.7 9366.0±206.2 9544.0±569.2 9503.3±796.4 9965.3±1218.1 10054.7±1611.1 10092.7±487.5 9668.3±946.0 8157.0±3107.7 7475.0±3505.7 6243.3±2466.0 2920.7±981.8 FI 1.00±0.00 1.05±0.01 1.02±0.06 1.04±0.06 0.98±0.14 0.98±0.20 0.94±0.06 0.98±0.09 1.29±0.58 1.49±0.91 1.62±0.71 2.80±1.12

    2.4 雙發(fā)光重組酵母細胞對使DNA發(fā)生斷裂誘變原的篩選

    表3為使DNA發(fā)生斷裂的誘變原4-NQO、順鉑、博來霉素和福來霉素與W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2劑量效應關(guān)系??梢?-NQO與重組酵母有明顯的劑量效應關(guān)系,在0.08μg/mL以上時,F(xiàn)I開始升高,最高達4.69;雖然在5μg/mL以上組時,F(xiàn)I升高非常明顯,但是,DsRed-Express-2卻明顯下降,平均發(fā)光度低于空白水平,因此,這種FI的升高變化,并非是4-NQO的誘導作用,而是兩種熒光蛋白本底“噪聲”的變化所致。在不同濃度的順鉑、博來霉素和福來霉素作用下,未發(fā)現(xiàn)雙信號發(fā)光酵母細胞與其有明顯的劑量效應關(guān)系,也未發(fā)現(xiàn)對細胞產(chǎn)生明顯的毒性,但是,福來霉素的DsRed-Express-2發(fā)光度普遍偏低,可能是該受試物溶劑對細胞的生長有一定的抑制作用。

    表3 使DNA發(fā)生斷裂的誘變原對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    表3 使DNA發(fā)生斷裂的誘變原對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    4-NQO濃度/(μg/L)0 0.02 0.04 0.08 0.16 0.32 0.62 1.26 2.5 5 10 20 lDsRed-Express-2 3936.0±234.3 3914.3±139.0 3934.3±52.3 3729.3±65.5 3006.7±172.0 2331.3±112.2 1476.0±46.9 874.3±73.4 567.0±31.0 447.7±12.9 479.3±2.1 410.3±30.8 FI 1.00±0.00 0.99±0.11 0.97±0.08 1.01±0.07 1.21±0.14 1.51±0.03 2.15±0.10 3.18±0.41 4.69±0.51 5.74±0.59 5.32±0.41 6.47±0.89濃度/(μg/L)0 0.2 0.5 1.0 2.0 4 8 1 6 31 62.5 125 250順鉑lDsRed-Express-2 19088.3±391.7 18412.0±1117.2 18091.0±1021.8 18786.0±1661.7 18878.3±1492.7 19248.0±2740.2 18925.0±2568.0 19975.±2341.3 19682.3±1778.3 20086.7±1227.0 20684.0±992.0 20008.0±993.4 FI 1.00±0.00 1.03±0.04 1.04±0.03 1.01±0.08 1.01±0.08 1.01±0.13 1.06±0.12 1.01±0.12 1.02±0.09 1.03±0.07 1.01±0.08 1.10±0.10博來霉素濃度/(μg/L)0 0.05 0.1 0.2 0.4 0.8 1.6 3.1 6.25 12.5 25 50 lDsRed-Express-2 10926.0±753.7 9647.0±1006.3 9500.0±893.5 9379.0±968.6 9196.7±1047.9 9609.0±1508.3 9676.7±1307.5 9532.7±911.4 9399.0±809.5 9415.7±801.7 8858.7±527.5 8505.7±211.2 FI 1.00±0.00 1.13±0.04 1.12±0.06 1.14±0.05 1.13±0.02 1.13±0.11 1.10±0.08 1.15±0.07 1.20±0.06 1.22±0.05 1.31±0.01 1.32±0.07福來霉素濃度/(μg/L)0 0.2 0.4 0.8 1.6 3.1 6.25 12.5 25 50 100 200 lDsRed-Express-2 716.0±24.6 738.7±17.2 733.7±13.6 731.0±6.6 735.0±13.0 709.0±9.5 717.7±14.5 744.7±14.2 748.7±9.3 747.7±14.4 744.3±30.7 706.0±10.8 FI 1.00±0.00 1.01±0.11 1.00±0.11 0.99±0.14 1.16±0.22 1.03±0.16 1.01±0.17 0.99±0.16 1.00±0.17 0.98±0.17 0.97±0.18 1.01±0.03

    2.5 雙發(fā)光重組酵母細胞對抑制DNA合成酶或拓撲異構(gòu)酶誘變原的篩選

    表4為抑制DNA合成酶或拓撲異構(gòu)酶的誘變原(5-FU、喜樹堿、阿非迪霉素和羥基脲)與W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2的劑量效應關(guān)系。由表可見,不同濃度的5-FU作用于雙信號發(fā)光酵母細胞后,0.5μg/mL以上組的FI均達2.00以上,但升高速度緩慢,最高為4.08,也未發(fā)現(xiàn)對細胞產(chǎn)生明顯的毒性作用。喜樹堿、阿非迪霉素和羥基脲作用下,在受試濃度范圍內(nèi)未發(fā)現(xiàn)與重組酵母細胞有明顯的劑量效應關(guān)系,各濃度組FI均在1.5以下,DsRed-Express-2發(fā)光度變化比較穩(wěn)定,標準差變化不大,均小于1/2均數(shù),說明未對細胞產(chǎn)生明顯的毒性作用。

    表4 抑制DNA合成酶或拓撲異構(gòu)酶的誘變原對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    表4 抑制DNA合成酶或拓撲異構(gòu)酶的誘變原對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

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    2.6 雙發(fā)光重組酵母細胞對其他生物化學毒性作用化合物的篩選

    表5為重組雙信號發(fā)光酵母細胞在非基因毒性化合物(秋水仙素、四環(huán)素和刀豆氨酸)的作用下,在受試濃度范圍內(nèi)未發(fā)現(xiàn)與FI有劑量效應關(guān)系,也未發(fā)現(xiàn)對DsRed-Express-2發(fā)光度產(chǎn)生明顯的影響。雖然四環(huán)素在最高濃度組(200μg/mL)FI大于1.5,為1.89,但是,其他各濃度組FI均低于1.5,并呈隨機波動。這可能是在高濃度情況下,四環(huán)素中的某些佐劑所產(chǎn)生的熒光所致。

    表5 其他生物化學毒性作用的化合物對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    表5 其他生物化學毒性作用的化合物對W303-1A/RNR3-yEGFP/DsRed-Express-2發(fā)光度的影響

    秋水仙素濃度/(μg/L)0 0.5 1 2 4 8 1 6 31 62.5 125 250 500 lDsRed-Express-2 16764.3±338.3 16176.3±228.2 15779.3±527.2 16348.3±149.8 16515.7±85.0 16479.0±856.6 16953.7±701.1 17412.7±1258.7 17491.3±1076.9 17528.0±854.5 17977.0±1225.1 21315.7±394.8 FI 1.00±0.00 1.05±0.06 1.13±0.13 1.01±0.06 0.99±0.05 1.01±0.05 0.98±0.08 0.94±0.06 0.94±0.07 0.93±0.02 0.92±0.07 0.76±0.04四環(huán)素濃度/(μg/L)0 0.2 0.4 0.8 1.6 3.1 6.25 12.5 25 50 100 200 lDsRed-Express-2 20163.0±1457.7 18210.3±1028.0 17672.0±723.7 17382.3±830.4 17667.0±664.4 16841.3±966.9 17436.0±537.6 16802.0±112.3 16948.0±321.1 16512.3±396.7 16727.7±577.9 16390.7±798.7 FI 1.00±0.00 1.10±0.08 1.15±0.11 1.16±0.09 1.13±0.07 1.25±0.08 1.18±0.09 1.30±0.17 1.25±0.12 1.37±0.18 1.46±0.19 1.89±0.28刀豆氨酸濃度/(μg/L)0 0.2 0.4 0.8 1.6 3.1 6.25 12.5 25 50 100 200 lDsRed-Express-2 18603.7±1124.3 17639.0±622.5 18216.3±1335.1 19058.7±2062.7 19281.0±2048.2 19979.0±2300.1 19806.0±1402.7 19536.0±1345.3 19980.3±1037.0 20597.0±903.5 21000.7±1078.2 20775.3±5317.8 FI 1.00±0.00 1.03±0.06 1.02±0.08 0.95±0.05 0.95±0.06 0.91±0.05 0.91±0.01 0.93±0.02 0.92±0.04 0.89±0.04 0.91±0.02 1.01±0.35

    3 討論

    目前現(xiàn)行的化學物質(zhì)遺傳毒性體外測試方法有Ames實驗、SOS和SOS/umu顯色反應、Comet分析法、程序外DNA合成實驗、V79/HGPRT基因突變分析法和哺乳細胞轉(zhuǎn)化實驗等一系列[4-9],可概括為原核細胞和真核高等生物細胞實驗兩大類。在原核細胞實驗中,Ames、SOS和SOS/umu應用較多,特別是Ames實驗得到非常廣泛地應用,也是我國化學物安全評價標準首選項目。但是,原核細胞除了所需菌種較多、假陽性高、操作十分繁瑣外,主要原因是其基因結(jié)構(gòu)、基因調(diào)控和代謝與真核細胞有相當大的不同,因此,原核細胞用于化學物質(zhì)的致突變性篩選時,具有一定的局限性。高等生物細胞雖無基因結(jié)構(gòu)、調(diào)控和代謝方面的局限性,但是,其培養(yǎng)條件復雜,對化學物的毒性抵抗力差,故選用高等生物細胞也無法對化學物的遺傳毒性進行快速、自動化、高通量的體外篩選。

    酵母是單細胞低等真核生物細胞,不僅具有易培養(yǎng)、繁殖、生長條件要求不高、對環(huán)境有害化學物抵抗力較強等特點外,而且具有遺傳背景清楚、基因結(jié)構(gòu)、基因調(diào)控、代謝和蛋白質(zhì)翻譯后加工與哺乳動物細胞相似等特點[10-12]。所以,將DNA重組技術(shù)、基因表達技術(shù)和酵母細胞的生物學特點相結(jié)合,構(gòu)建成重組酵母細胞,用于快速、高通量篩選化學誘變原,是理想的選擇,也具有良好的發(fā)展應用前景?;瘜W誘變物作用酵母細胞造成DNA損傷或是合成阻斷時,通過各種基因調(diào)控作用,可誘導多個基因的轉(zhuǎn)錄表達。在所誘導的特殊基因的轉(zhuǎn)錄中,最受關(guān)注的是RNR3、RNR2、RAD54和MAG1[13-18]。正常生長條件下,細胞中幾乎檢測不到RNR3、RNR2、RAD54和MAG1的表達。RNR3屬于核糖核酸還原酶(ribonucleotide reductase,RNR)系統(tǒng)的一員,其中RNR1和RNR3編碼該酶的大亞基,RNR2和RNR4編碼小亞基[19-20],DNA斷裂損傷時及合成阻斷時可誘導RNR3等相關(guān)基因的表達[21-23]。

    因此,國外有研究者將RNR3等相關(guān)基因啟動子與蟲熒光素酶或綠色熒光蛋白(GFP)基因相串聯(lián),轉(zhuǎn)染于酵母細胞,構(gòu)建成重組酵母細胞,用于化學誘變原的篩選[24-25]。當化學誘變物作用于酵母細胞時,報告基因會發(fā)光,發(fā)光強度與誘變原間存在著劑量-效應關(guān)系。但是,用蟲熒光酶作為報告基因雖然較敏感,但不適合我國國情,原因是:①成本較高。它必須采用蟲螢光素酶和海腎螢光素酶兩個報告基因,這是因為誘變原相關(guān)基因啟動子調(diào)控的蟲熒光酶發(fā)光度,不僅與受試物的誘導有關(guān)外,還與細胞的數(shù)量和活性狀態(tài)有關(guān),因此必須用海腎螢光素酶發(fā)光度校正其影響。兩者酶的底物較昂貴;②操作繁瑣。蟲熒光素酶和海腎熒光素酶是在細胞內(nèi)表達,其底物無法進入細胞,必須對細胞壁加以裂解,因而操作繁瑣,難以達到自動化、高通量。而采用綠色熒光蛋白(yEGFP)基因可克服蟲熒光素酶報告基因的某些缺點。

    當化學誘變原作用于重組酵母細胞時,對DNA的損害必然會發(fā)生累加效應,因此,yEGFP的發(fā)光程度,除了與化學誘變原的作用強度有關(guān)外,還與作用時間有關(guān)。但是,隨著作用時間延長,化學誘變原的降解也會加速。結(jié)合不同化學誘變原的理化屬性,我們研究發(fā)現(xiàn)平均作用時間為12h效果較理想。當誘變原作用于酵母細胞時,同時會使細胞數(shù)量和活性狀態(tài)發(fā)生變化,所以,yEGFP的發(fā)光度需進行校正。雖然綠色熒光蛋白(GFP)基因可克服蟲熒光素酶報告基因的某些缺點,但國內(nèi)外學者多采用D(600)值來校正發(fā)光度以校正細胞數(shù)量和狀態(tài)對yEGFP發(fā)光度的影響。由于D(600)只能說明活細胞數(shù)和死細胞數(shù)總數(shù)量,無法恒量細胞的狀態(tài),故誤差較大[26]。

    紅色熒光蛋白(DsRed)是從珊瑚蟲Discosomagenus中克隆的一種在紫外光的照射下可發(fā)射紅色熒光的蛋白,有許多突變體。通過研究發(fā)現(xiàn)DsRed-Express-2能在酵母細胞中高效表達,將其重組于酵母細胞作為內(nèi)參比(為第二信號),用以反映細胞的數(shù)量和狀態(tài),通過分別測yEGFP和DsRed-Express-2發(fā)光強度,用yEGFP/DsRed-Express-2的比值即相對發(fā)光度消除細胞數(shù)量及狀態(tài)不同對yEGFP發(fā)光度的影響。該雙發(fā)光酵母細胞不需要添加任何化學反應試劑,可在96或384孔細胞培養(yǎng)內(nèi)操作,故能方便、快速、定性、定量、高通量、自動化地篩選化學誘變物。

    在所受試的化學誘變原中,有些可能是因分子量較大(如絲裂霉素C等),不易進入細胞;有些可能是在細胞酶的作用下被滅活。這可能是呈現(xiàn)陰性結(jié)果的原因。

    四環(huán)素是從放線菌金色鏈叢菌(Streptomyces aureofa-ciens)的培養(yǎng)液等分離出來的抗菌物質(zhì),是一種廣譜抗菌素,其作用機制是與核蛋白體的30S亞單位結(jié)合,從而阻止氨?;?tRNA同核糖核蛋白體結(jié)合;刀豆氨酸的結(jié)構(gòu)與精氨酸相似,可代替精氨酸合成蛋白質(zhì),由于刀豆氨酸與精氨酸結(jié)構(gòu)的不同,所形成蛋白質(zhì)的功能也會出現(xiàn)異常,最終導致細胞死亡;秋水仙素是一種生物堿,能抑制有絲分裂,破壞紡錘體,使染色體停滯在分裂中期。以上這3種化學物均呈陰性結(jié)果,說明該細胞具有良好的特異性。

    當化學誘變原作用機體細胞時,會通過各種DNA作用水平引起基因突變?;瘜W物是否會引起機體細胞基因發(fā)生突變,與化學物性質(zhì)、作用細胞DNA的途徑以及細胞的生物屬性等因素有關(guān)。因此,現(xiàn)行的化學物致突變評價方法,是通過各種不同方法或途徑篩選化學誘變原,其目的是減低化學物對人體發(fā)生基因突變的風險。與構(gòu)建的RNR2調(diào)控的雙信號發(fā)光酵母細胞相比較[3],雖然,RNR3調(diào)控的雙信號發(fā)光酵母細胞假陰性率較高,但提供了一種新的篩選誘變原的方法或路徑,如果作為傳統(tǒng)化學物致突變評價方法的補充,這無疑會進一步降低所評價化學物對人體基因致突變的風險。

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