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    豬流行性腹瀉毒株S基因分離鑒定及序列分析

    2019-07-22 01:32:45尹國友王林嵩
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年11期
    關(guān)鍵詞:序列分析

    尹國友 王林嵩

    摘要:根據(jù)NCBI上傳的豬流行性腹瀉病毒(porcine epidemic diarrhea virus,PEDV)[GenBank:JN547228(CH/S)],設(shè)計引物對陽性病料進行鑒定并回收,與pMD18-T構(gòu)建重組載體并測序。對豬流行性腹瀉病毒的基因多樣性及序列保守性進行分析,一是以經(jīng)典毒株為主,包括CV777、KPEDV-9和CH/S株等為代表的G1基因型,另一種是以近幾年分離的毒株為主,包括HB3-CH2012、CXHZ-CH2013、HNCZ-CH2013等為代表的G2基因型。基因同源性分析比較結(jié)果表明,這4株P(guān)EDV之間的序列同源性為97.6%~100.0%,與經(jīng)典株CV777的同源性為92.7%~92.8%。同源分析顯示,PEDV不同毒株間的基因同源性仍高度相似,但PEDV流行毒株已呈現(xiàn)進化分支的趨勢。

    關(guān)鍵詞:豬流行性腹瀉病毒;S基因;序列分析

    中圖分類號:S858.285.3?? 文獻標志碼: A? 文章編號:1002-1302(2019)11-0071-03

    豬流行性腹瀉病毒(porcine epidemic diarrhea virus,PEDV)引起的豬流行性腹瀉?。╬orcine epidemic diarrhea,PED)是一種高死亡率的腸道傳染病,會在豬群中引起各個年齡段豬暴發(fā)急性腹瀉,多發(fā)于仔豬和胎豬,其臨床癥狀主要以豬水樣腹瀉、嘔吐和脫水為主。1971年,英國首先報道了PEDV的暴發(fā)流行[1],隨后在比利時、德國、瑞士、日本、韓國等許多養(yǎng)殖大國出現(xiàn)報道[2-3]。1976年,中國大陸首次報道PED的發(fā)生與流行,1984年通過免疫熒光試驗證實病原微生物為豬流行性腹瀉病毒[4]。20世紀80年代后,我國不斷有PED發(fā)生,其中26個?。ㄊ小⒆灾螀^(qū))都曾發(fā)生。20世紀90年代后期,豬傳染性胃腸炎(華毒株)和豬流行性腹瀉(CV777)二聯(lián)滅活苗或弱毒苗,在我國開始大范圍使用并取得良好免疫效果[5]。國內(nèi)外對該病的研究和重視程度均遠遠不夠,我國甚至沒有把豬流行性腹瀉列為國家動物法定傳染病的一、二和三類疫病[6]。自2006年后,以經(jīng)典毒株CV777基礎(chǔ)研制的滅活苗或弱毒苗免疫效果下降,免疫過的豬場還出現(xiàn)多次豬流行性腹瀉病的暴發(fā)。2010年起,豬流性腹瀉病開始在全國大部分的主要養(yǎng)殖區(qū)出現(xiàn),導(dǎo)致初生仔豬死亡率高達90%以上,全國仔豬死亡估計有上千萬頭[7-8],給生豬養(yǎng)殖業(yè)造成了難以估量的經(jīng)濟損失。

    PEDV屬于冠狀病毒科冠狀病毒屬,其中冠狀病毒屬分為α、β、γ、δ 4個群[9],豬流行性腹瀉屬于冠狀病毒α群,豬流行性腹瀉基因組是單股正鏈具有感染性的RNA,其基因組大小為28 kb左右,其中S基因編碼的S蛋白是一種跨膜糖蛋白,位于病毒表面。S蛋白與細胞受體結(jié)合、病毒融合,最重要的是,在誘導(dǎo)中和抗體方面和病毒粒子與細胞表面受體結(jié)合后通過膜融合侵入宿主細胞方面發(fā)揮關(guān)鍵作用[10-11]。通過分析比對豬流行性腹瀉病毒S基因分離株與經(jīng)典株之間核苷酸和氨基酸的同源性、抗原表位差異、糖基化位點及跨膜域差異性,以期為預(yù)防和控制豬流行性腹瀉暴發(fā)流行提供理論數(shù)據(jù)支撐。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑

    Trizol LS Reagent,購自美國Invitrogen公司產(chǎn)品;pMD18-T載體克隆試劑盒、DL 2000 DNA Marker、rTaq酶、RNA酶抑制劑(HPRI)、dNTP、反轉(zhuǎn)錄酶(AMV)、UNIQ-10柱式DNA膠回收試劑盒,均購自生工生物工程(上海)有限公司;BamH Ⅰ及Hind Ⅲ限制性內(nèi)切酶,均購自寶日醫(yī)生物技術(shù)(北京)有限公司;DH5α大腸桿菌感受態(tài)細胞由實驗室保存。本研究于2016年在河南城建學(xué)院分子生物學(xué)實驗室完成。

    1.2 引物的設(shè)計和合成

    根據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫GenBank中發(fā)表的JN547228基因序列,設(shè)計并合成S基因測序引物,引物序列見表1。

    1.3 模板的制備

    取來自發(fā)病豬的病變組織細胞勻漿液,按Trizol LS Reagent使用說明,提取病毒RNA,將提取物RNA置于 -20 ℃ 冰箱保存。

    1.4 RT-PCR

    將設(shè)計好的下游引物1.0 μL,0.4 μL Rnase-Inhibitor,5.0 μL dNTP,4.0 μL 5×AMV Buffer,1.0 μL AMV,加入 10.0 μL RNA,42 ℃水浴1~2 h,即得cDNA模板,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.5 目的片段S基因的擴增

    取cDNA產(chǎn)物1.0 μL作為模板進行PCR擴增,擴增體系:10×PCR Buffer 2.5 μL,dNTP 2.0 μL,rTaq酶0.5 μL,PEDV-S-sense/PEDV-S-anti-sense各0.5 μL,用滅菌ddH2O補足25.0 μL。PCR擴增反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性 5 min;94 ℃ 50 s,58 ℃ 50 s,72 ℃ 60 s,共進行35個循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。RT-PCR擴增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定擴增結(jié)果。

    1.6 目的基因的克隆及序列測定

    將擴增的RT-PCR產(chǎn)物,回收產(chǎn)物與載體pMD18-T進行連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細胞DH5α中,挑選陽性菌落于100 mL液體LB(含A+)液體培養(yǎng)基中,放置于37 ℃恒溫搖床培養(yǎng)過夜,用堿性法提取重組質(zhì)粒。并用雙酶切酶BamHⅠ、HindⅢ酶切重組質(zhì)粒,陽性質(zhì)粒進行測序。

    1.7 基因序列分析

    利用Clustal 1.83和MEGA 5.05軟件對豬流行性腹瀉病毒的基因多樣性及序列保守性分析,繪制毒株的系統(tǒng)進化樹。

    2 結(jié)果

    2.1 目的基因的擴增

    RT-PCR擴增毒株,顯示與預(yù)期片段1 058 bp相似大小的特異片段(圖1)。

    2.2 組質(zhì)粒的酶切鑒定

    用BamHⅠ、HindⅢ限制性內(nèi)切酶對重組質(zhì)粒pMD18-PEDV-S進行雙酶切鑒定,將酶切產(chǎn)物用凝膠核酸電泳得到預(yù)期大小約1 058 bp和2 000 bp以上的2條電泳條帶(圖2)。

    2.3 DNA序列測定

    酶切鑒定陽性pMD18-PEDV-S克隆質(zhì)粒送上海生工生物工程有限公司測序,將測序序列通過Blast雙重比對,分析表明pMD18載體已插入PEDV-S基因。

    2.4 氨基酸的序列多樣性、同源性分析

    從NCBI數(shù)據(jù)庫中下載經(jīng)發(fā)表的20株國內(nèi)外毒株序列,與4個分離株(PEDV-HN1、PEDV-HN2、PEDV-HN3、PEDV-HN4)PEDV-S基因序列進行核苷酸和氨基酸的同源性分析(表2)。

    2.5 PEDV-S系統(tǒng)發(fā)育進化樹

    PEDV-S基因序列同源性比較的系統(tǒng)發(fā)育進化樹見圖3。

    3 分析與討論

    豬流行性腹瀉病毒刺突蛋白S基因保守性非常高,是主要的抗原表位所在域,PEDV-S基因結(jié)構(gòu)和功能與該病毒的致病性、感染性、中和抗體的產(chǎn)生和細胞結(jié)合能力密切相關(guān)[12-13]。本研究表明,PEDV流行毒株的刺突蛋白基因不論在基因和蛋白質(zhì)同源性上,還是在系統(tǒng)進化樹上,與PEDV經(jīng)典毒株CV777、DR13等疫苗株均存在顯著差異,其基因的保守同源性只有92.7%~92.8%,從PEDV-S基因的系統(tǒng)進化樹上可以看出,PEDV流行毒株與經(jīng)典疫苗株分為不同的組群,表明PEDV流行毒株與經(jīng)典疫苗株抗原表位的刺突蛋白S出現(xiàn)了基因多樣性及保守性的變化[14]。

    3.1 PEDV-S基因同源性分析

    Meg Align軟件進行同源性分析,PEDV進化上主要有G1和G2這2個基因組型,G1型以經(jīng)典毒株為主,包括CV777、KPEDV-9和CH/S株等,G2型則以近年分離的毒株為主,包括HB3-CH2012、CXHZ-CH2013、HNCZ-CH2013等。PEDV-HN1、PEDV-HN2、PEDV-HN3和PEDV-HN4的同源性為97.6%~100.0%,與參考病毒株CV777、DR13、KPEDV-9等的同源性為92.6%~93.3%。

    分離株P(guān)EDV-HN1、PEDV-HN2、PEDV-HN3和PEDV-HN4與參考病毒株CV777相比,比經(jīng)典毒株多2個插入突變和1個缺失突變,其中一個插入部位在流行毒株的第58~59位之間插入(QGVN),另一個插入部位在流行毒株139~140(N),流行毒株62~164(KNI)位存在缺失突變,與經(jīng)典毒株CV777蛋白質(zhì)同源性相比,分離株的多個氨基酸位點發(fā)生突變,共有65個位點發(fā)生氨基酸突變:第2~5位(TPLI→KSLT)、第15位(L→T)、第27~30位(QSTI→SANT)、第64位(S→T)、第68~74位(GTGIETD→AGQHPTA)、第86~87位(DS→RG)、第89位(Q→H)、第118位(S→N)、第138位(V→A)、第157~163位(LQDGKNI→HSEHS-—)、第200~202位(KRS→SGG)、第210位(T→E)、第227~229位(SYQ→YYE)、第236位(S→Y)、第246~247位(DS→EP)、第270位(L→V)、第286位(W→L)等。

    3.2 PEDV-S基因蛋白抗原位點變化

    ExPASy分析經(jīng)典毒株CV777的S蛋白抗原表位表明,它有51個潛在的抗原位點,而PEDV-HN1株預(yù)測存在56個抗原位點,PEDV-HN4株存在57個抗原位點,PEDV-HN2和PEDV-HN3株均含有54個抗原位點。與參考毒株CV777相比,分離株P(guān)EDV-HN1、PEDV-HN2、PEDV-HN3和PEDV-HN4在130~136位缺失1個抗原位點,而新增加的抗原位點(第159~165位氨基酸、第191~199位氨基酸和第631~610位氨基酸)主要出現(xiàn)在豬流行性腹瀉病毒的S1區(qū)。

    3.3 PEDV-S基因蛋白糖基化位點變化

    ExPASy分析PEDV S蛋白糖基化位點可知,CV777及PEDV-HN2株中存在29個N-糖基化修飾位點,而 PEDV-HN1、PEDV-HN3、PEDV-HN4株含有28個N-糖基化位點。4株分離毒株與CV777相比,其N-糖基化位點出現(xiàn)3處改變,第57位氨基酸由NSSS變?yōu)镹STW,第1196位氨基酸增加了1個N-糖基化位點NHTA,第230位氨基酸有1個N-糖基化位點缺失NCTG。

    3.4 PEDV-S基因跨膜螺旋法

    通過SOSUI預(yù)測PEDV S蛋白跨膜螺旋區(qū)分析可知,經(jīng)典毒株CV777在第1331~1356位氨基酸形成了首個跨膜螺旋域,在第2~24位氨基酸形成第二次跨膜螺旋域。而PEDV-HN1和 PEDV-HN4毒株在第1337~1359位氨基酸形成首次跨膜螺旋域,在第1~23位氨基酸形成第二次跨膜螺旋,PEDV-HN2和PEDV-HN3在第1328~1350位氨基酸形成了首次跨膜螺旋域,在第1~23位氨基酸和第 1356~1378位氨基酸分別形成了第二次跨膜螺旋域[16]。

    3.5 PEDV-S基因的遺傳演化趨勢

    Meg Align軟件進行同源性分析,豬流行性腹瀉病毒進化上可以分為G1和G2這2個不同的基因組型。同源分析的24株P(guān)EDV中,9株P(guān)EDV為G1基因組型,占37.5%,15株P(guān)EDV為G2基因組型,占62.5%。近年,PEDV主要的流行優(yōu)勢毒株也位于G2基因組型中,G1基因組型主要是經(jīng)典CV777、DR13、KPEDV等疫苗株以及我國發(fā)現(xiàn)的部分毒株。最近出現(xiàn)的流行株G2群,除在我國發(fā)現(xiàn)外,也出現(xiàn)在東北亞國家日本和韓國,此次分離鑒定的4株毒株均屬于G2群,我國近年分離的PEDV流行毒株與G2群同源性最高,結(jié)果說明我國跨地域的生豬調(diào)配導(dǎo)致不同區(qū)域的毒株之間存在交叉感染基因重配,可能與PEDV的傳播和致病有一定相關(guān)性。系統(tǒng)進化樹進化不同分支的時間顯示,不同時代鑒別的PEDV流行毒株有相同的進化方向,并不存在明顯的時空聚集性[15]。

    豬流行性腹瀉病是嚴重影響我國養(yǎng)豬業(yè)發(fā)展的重要傳染病之一,給生豬飼養(yǎng)、育種等造成巨大的經(jīng)濟損失。在很長一段時間內(nèi)由于疫苗的使用減少了該病的感染,但同時由于疫苗長期使用導(dǎo)致PEDV的基因發(fā)生突變[17]。通過本研究發(fā)現(xiàn),目前我國廣泛流行的豬流行性腹瀉病毒株與以往經(jīng)典毒株相比已經(jīng)存在一些在基因序列及蛋白結(jié)構(gòu)方面的明顯差異,這可能是疫苗免疫失敗的主要原因之一。

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