胡燦 劉峰 王運生
摘要:為了初步研究辣椒(Capsicum annuum L.)NRAMP家族基因在重金屬鎘脅迫下的表達(dá)情況,通過生物信息學(xué)方法從辣椒基因組中鑒定出NRAMP基因,并對這些基因的序列結(jié)構(gòu)、系統(tǒng)進(jìn)化樹、表達(dá)譜等進(jìn)行系統(tǒng)分析。結(jié)果表明,辣椒中含有5個具有典型NRAMP結(jié)構(gòu)域的基因,根據(jù)其在染色體上的位置,分別將其命名為CaNRAMP1~CaNRAMP5,根據(jù)系統(tǒng)進(jìn)化分析,將辣椒的NRAMP基因分為2類,Ⅰ類包含2個基因(CaNRAMP1、CaNRAMP3),分別含有10、12個內(nèi)含子,Ⅱ類包含3個基因(CaNRAMP2、CaNRAMP4、CaNRAMP5),均含有3個內(nèi)含子。基于基因組織表達(dá)模式的分析結(jié)果表明,CaNRAMP1在不同組織中均未檢測到其表達(dá);CaNRAMP5的表達(dá)集中在花器官,其余CaNRAMP基因均有不同的表達(dá)模式;通過逆轉(zhuǎn)錄定量PCR(qRT-PCR)分析發(fā)現(xiàn),辣椒苗期中的葉片經(jīng)過鎘處理后,CaNRAMP3基因呈明顯上調(diào)的趨勢,參與鎘脅迫反應(yīng)的正向調(diào)控,其他基因則不參與鎘脅迫反應(yīng)的調(diào)控。研究結(jié)果為進(jìn)一步分析辣椒NRAMP基因家族的功能奠定了基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞:辣椒;NRAMP基因家族;生物信息學(xué);基因表達(dá)
中圖分類號: S641.301? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A? 文章編號:1002-1302(2019)10-0069-06
辣椒(Capsicum annuum L.)為茄科辣椒屬一年或有限多年生草本植物。2016年我國辣椒的種植面積超過133.33萬hm2,占世界辣椒種植面積的35%,經(jīng)濟(jì)總產(chǎn)值超過700億元,產(chǎn)值和效益位居蔬菜作物前列。NRAMP(natural resistance associated macrophage protein,天然抗性相關(guān)巨噬細(xì)胞蛋白)家族蛋白是一類廣泛存在于生物界、能轉(zhuǎn)運不同金屬離子的跨膜蛋白家族,它們對于調(diào)控和維持生物內(nèi)金屬離子的穩(wěn)態(tài)發(fā)揮著重要作用。NRAMP家族蛋白采用質(zhì)子共運輸方式,參與鐵離子(Fe2+)、錳離子(Mn2+)、鋅離子(Zn2+)、銅離子(Cu2+)、鎘離子(Cd2+)、鎳離子(Ni2+)、鈷離子(Co2+)、鋁離子(Al3+)、砷離子(As3+)等不同金屬離子的運輸[1-4]。NRAMP首先于哺乳動物巨噬菌細(xì)胞內(nèi)被發(fā)現(xiàn),因其能增加對胞內(nèi)寄生物的敏感性而得名[5]。隨后,NRAMP同源基因被證實存在于細(xì)菌、酵母、藻類和動植物中[1]。研究發(fā)現(xiàn),NRAMP在不同物種中高度保守,一般具有10~12個典型的跨膜結(jié)構(gòu)域、1個胞質(zhì)外轉(zhuǎn)運蛋白特征結(jié)構(gòu)域[6]。
目前,研究者已經(jīng)在擬南芥、水稻等植物中進(jìn)行了NRAMP基因的克隆與功能鑒定,發(fā)現(xiàn)植物NRAMP家族蛋白基本定位于質(zhì)膜和液泡膜上,主要在根、芽中表達(dá),參與一些必需營養(yǎng)元素的轉(zhuǎn)運和調(diào)控[7]。擬南芥中的AtNRAMP1對植株從土壤中吸收Fe2+、Mn2+發(fā)揮著重要作用[8-9]。AtNRAMP3在低Fe2+環(huán)境下于植株維管束中表達(dá),可能參與Fe2+的長途運輸[10]。AtNNRAMP3/4可以從擬南芥種子液泡中轉(zhuǎn)運Fe2+供幼苗在低Fe2+環(huán)境下萌發(fā)生長[11]。水稻OsNRAMP3通過調(diào)控植物體內(nèi)和外界的Mn2+濃度,從而使植株正常生長[12]。此外研究也發(fā)現(xiàn),NRAMP家族蛋白同樣參與有毒重金屬的吸收和轉(zhuǎn)運,在提高植物的抗性方面發(fā)揮著重要作用。擬南芥的AtNRAMP1/3/4在酵母中異源表達(dá)時具有轉(zhuǎn)運Fe2+、Mn2+、Cd2+的相關(guān)能力[11,13]。AtNRAMP6對Cd2+敏感并能調(diào)節(jié)Cd2+在擬南芥和酵母細(xì)胞內(nèi)的分布[14]。水稻OsNRAMP1在擬南芥的木質(zhì)部中表達(dá)時可以轉(zhuǎn)運和積累Cd2+、As2+[4,15-16]。OsNRAT1(OsNRAMP4的同源物)和OsNRAMP5分別是植株內(nèi)Al3+和Mn2+、Cd2+的主要運輸載體[3,17]。另外,在一些特殊植物如超富集植物遏藍(lán)菜(Thlaspi caerulescens)中,發(fā)現(xiàn)TcNRAMP3/4在酵母中異源表達(dá)時都能轉(zhuǎn)運Fe2+、Mn2+、Cd2+,并且TcNRAMP 4大都具備轉(zhuǎn)運Zn2+的能力[18],但是TcNRAMP3/4蛋白除了比擬南芥的同源蛋白AtNRAMP3/4的表達(dá)程度更高外,在功能上并無明顯區(qū)別。
2014年,Qin等對栽培辣椒品種遵辣1號及其野生祖先進(jìn)行了基因組測序,從而為辣椒的分子生物學(xué)研究奠定了良好基礎(chǔ)[19],但是關(guān)于辣椒中的NRAMP基因是否參與重金屬鎘的轉(zhuǎn)運卻鮮有報道。本研究利用生物信息學(xué)方法,對辣椒的NRAMP基因家族進(jìn)行鑒定,并通過逆轉(zhuǎn)錄定量PCR(qRT-PCR)分析辣椒苗期葉片在鎘脅迫下相應(yīng)基因家族的表達(dá)情況,以期為辣椒NRAMP基因的鎘運輸功能研究和耐性品種選育提供理論基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
試驗材料為辣椒Zunla-1號,由湖南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜研究所提供。將辣椒種子消毒后進(jìn)行催芽處理,種植于穴盤中,置于光照培養(yǎng)箱內(nèi),培養(yǎng)溫度周期為27 ℃—20 ℃,光—暗周期為14 h—10 h,在幼苗有4~6張真葉時,選擇長勢整齊的幼苗進(jìn)行重金屬Cd2+脅迫處理(100 μmol/L),葉片樣品分別設(shè)置0、3、6、12、24 h 5個時間點進(jìn)行處理,每次測試取7株樣品,設(shè)3次重復(fù),取樣后立即放于液氮中速凍并置于 -80 ℃ 冰箱中待用。
1.2 辣椒NRAMP基因家族成員的鑒定與序列分析
辣椒全基因組數(shù)據(jù)從Zunla-1基因組數(shù)據(jù)庫(http://peppersequence.genomics.cn)中獲得,利用Pfam數(shù)據(jù)庫中的NRAMP隱馬爾可夫模型搜索辣椒NRAMP家族蛋白。候選基因利用MEGA 6.0提供的Clustal W工具去除重復(fù)序列[20],在Pfam網(wǎng)站(http://pfam.xfam.org/search)上進(jìn)行NRAMP結(jié)構(gòu)域的鑒定。借助Expasy網(wǎng)站(http://web.expasy.org/protparam/)獲得辣椒NRAMP蛋白序列相關(guān)信息,在ProtComp網(wǎng)站(http://www.softberry.com)上分析相應(yīng)蛋白的亞細(xì)胞定位,通過GSDS網(wǎng)站(http://gsds.cbi.pku.edu.cn)獲得NRAMP基因的結(jié)構(gòu)[21]。利用生物學(xué)軟件DNAMAN 8.0進(jìn)行辣椒NRAMP結(jié)構(gòu)域序列的多重比對,通過MEME網(wǎng)站(http://meme-suite.org/tools/meme)進(jìn)行基序(motif)分析,參數(shù)設(shè)計如下:基序長度為6~50個,保守基序最大為15;其他參數(shù)為默認(rèn)值。
采取同源搜索法從NCBI(美國國立生物技術(shù)信息中心)官網(wǎng)(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov)上下載擬南芥、水稻、大豆、苜蓿、番茄的NRAMP家族蛋白相關(guān)序列,借助工具M(jìn)EGA 6.0,采用鄰接法構(gòu)建相關(guān)系統(tǒng)進(jìn)化樹,自舉(Bootstrap)檢測次數(shù)為1 000次,其他均為默認(rèn)設(shè)置。從NCBI網(wǎng)站上下載辣椒遵辣一號(Zunla-1)的不同組織和果實發(fā)育各時期的轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)(RNA-seq)數(shù)據(jù),利用Tophat、Cufflink軟件進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組表達(dá)的差異分析,運用R軟件繪制NRAMP基因的表達(dá)熱圖。
1.3 總RNA的提取和qRT-PCR分析
參考張亞利等的研究方法[22],按照Biospin多糖多酚植物總RNA提取試劑盒(北京博邁斯科技發(fā)展有限公司)的操作方法提取葉片總RNA,利用RNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(TaKaRa公司)反轉(zhuǎn)錄成cDNA。按照SYBR Premix Ex TaqTM IIMix(TaKaRa)試劑盒的操作方法進(jìn)行qRT-PCR試驗,利用ABI 7000實時熒光定量PCR儀(ABI Prism,美國)檢測表達(dá)量。以β-actin為內(nèi)參基因,利用DNAMAN 8軟件設(shè)計特異性引物。設(shè)3個技術(shù)重復(fù),使用2-ΔΔCT法計算相對表達(dá)量[23]。
2 結(jié)果與分析
2.1 辣椒NRAMP基因家族的鑒定
通過生物信息學(xué)方法,從辣椒全基因組中得到8個候選基因,剔除不含有NRAMP典型結(jié)構(gòu)域的蛋白,獲得5個辣椒NRAMP基因。根據(jù)基因在染色體上的排列順序,分別命名為CaNRAMP1~CaNRAMP5(表1),其中1個基因在染色體上的位置未知,在染色體2和染色體3上各有1個基因,在染色體4上有2個基因。辣椒NRAMP基因編碼蛋白質(zhì)的長度范圍為468 aa(CaNRAMP1)~541aa(CaNRAMP4),分子量范圍為50.77 ku(CaNRAMP1)~58.95 ku(CaNRAMP4),等電點介于(CaNRAMP4)5.54~8.82(CaNRAMP3)之間。
2.2 辣椒NRAMP蛋白的結(jié)構(gòu)域與保守基序分析
通過DNAMAN 6.0對辣椒CaNRAMP的蛋白成員進(jìn)行序列比對。由圖1可以看出,CaNRAMP1與CaNRAMP3的序列相似性為50%,CaNRAMP2與CaNRAMP4、CaNRAMP5的序列相似性分別為69%、67%,說明CaNRAMP蛋白成員之間存在較高的保守性。
利用在線工具M(jìn)EME進(jìn)一步分析辣椒NRAMP蛋白的保守基序,在15個基序中,基序1、2、4、5、6、9出現(xiàn)在所有成員中(圖2)?;?位于TMD8、TMD9及胞質(zhì)內(nèi)轉(zhuǎn)運結(jié)構(gòu)域(CTM)區(qū),其CTM-GQSSTI(/M)TGTYAGQF(/Y)I(/V)MG(/Q)GFLD(/H/N)是最長基序和最大的嚴(yán)格保守區(qū)域;基序2位于TMD1、TMD2及其中的區(qū)域,包含TMD1的嚴(yán)格保守氨基酸殘基天冬氨酸-脯氨酸-甘氨酸-天冬酰胺(Asp-Pro-Gly-Asn,簡稱DPGN)、甘氨酸-脯氨酸-甘氨酸-苯丙氨酸-亮氨酸(Gly-Pro-Gly-Phe-Leu,簡稱GPGFL);基序5位于TMD6及其中的區(qū)域,包含位于TMD6的嚴(yán)格保守氨基酸殘基脯氨酸-組氨酸-天冬酰胺(Pro-His-Asn,簡稱PHN)、絲氨酸-丙氨酸-亮氨酸-纈氨酸(Ser-Ala-Leu-Val,簡稱SALV);基序4、6、9也相應(yīng)地包含一些嚴(yán)格保守的氨基酸殘基??傊?,上述結(jié)果說明,辣椒的NRAMP蛋白結(jié)構(gòu)具有高度的保守性,其中嚴(yán)格保守殘基可能在NRAMP蛋白行使轉(zhuǎn)運金屬離子的功能中發(fā)揮重要作用。此外,辣椒CaNramp1丟失了部分基序,這可能導(dǎo)致相應(yīng)基因成為假基因或者失去了轉(zhuǎn)運金屬離子的功能。
2.3 辣椒NRAMP基因的系統(tǒng)發(fā)育樹分析
通過MEGA 6.0對辣椒與擬南芥AtNRAMP(6個)、水稻OsNRAMP(7個)、大豆GmNRAMP(8個)、苜蓿MtNRAMP(7個)、番茄LeNRAMP(3個)中已報道的NRAMP蛋白序列進(jìn)行聚類分析。由圖3可以看出,6種植物的NRAMP基因家族成員可以分為2大類(Ⅰ和Ⅱ),分別包含2、3個辣椒相關(guān)基因。Ⅰ類中辣椒的CaNRAMP1與番茄的LeNRAMP1,Ⅱ類中辣椒的CaNRAMP2、CaNRAMP4分別與番茄的LeNRAMP3、LeNRAMP2為直系同源基因;大豆與苜蓿也有2對直系同源基因。由以上結(jié)果可知,同科植物間的NRAMP基因進(jìn)化關(guān)系更近。而大豆(假多倍體植物)有4對旁系同源基因,說明大豆的NRAMP基因非常保守且擴(kuò)張,可能是由染色體基因組的復(fù)制造成的[24]。另外,在植物NRAMP基因成員聚類中,Ⅰ類基因中一般含有10~12個內(nèi)含子,Ⅱ類中一般含有3個內(nèi)含子,這種高度相似的外顯子-內(nèi)含子結(jié)構(gòu)揭示了植物NRAMP基因家族的進(jìn)化保守性;同時NRAMP基因在內(nèi)含子數(shù)量或長度上都有不同的進(jìn)化,表明Ⅰ類NRAMP基因在進(jìn)化上更加復(fù)雜和具有多樣性,而Ⅱ類NRAMP基因更趨向于保守。
2.4 辣椒NRAMP基因家族的組織表達(dá)模式
為了分析辣椒NRAMP基因的表達(dá)模式,從NCBI中獲取Zunla-1不同組織(根、莖、葉、花蕾、花)及果實發(fā)育各時期的RNA-seq數(shù)據(jù),結(jié)果未檢測到CaNRAMP1基因的表達(dá)信號。由圖4可以看出,CaNRAMP5在花蕾、花中具有中等豐度的表達(dá),其余3個基因各有不同組織的表達(dá)模式。在不同組織中,CaNRAMP2的表達(dá)量在花蕾中最高,然后依次是根、花和莖中的表達(dá)量,在葉中的表達(dá)量相對最低;CaRAMP3的表達(dá)量在花中最高,其后依次是葉和根,在莖、花蕾中的表達(dá)量相對最低;CaNRAMP4的表達(dá)量在根中最高,其后依次是在莖、花蕾中的表達(dá)量,在花、葉中的表達(dá)量相對最低。此外,本研究結(jié)果顯示,CaNRAMP2、CaNRAMP3、CaNRAMP4全程參與果實發(fā)育階段的調(diào)控,其中CaNRAMP2、CaNRAMP4的表達(dá)量分別在綠熟果期、破色期最高,CaNRAMP3的表達(dá)量在綠熟果期最低,在破色期的表達(dá)量迅速上升到最高值,而CaNRAMP5僅在果實發(fā)育前期少量表達(dá)。
2.5 辣椒幼苗在鎘脅迫下NRAMP基因的表達(dá)分析
利用qRT-PCR分析辣椒葉片中NRAMP家族基因在100 μmol/L Cd2+處理后不同時間點的表達(dá)情況,結(jié)果未檢測到CaNRAMP1基因表達(dá)信號。由圖5可以看出,在Cd2+脅迫下,CaNRAMP2、CaNRAMP4基因在葉片中的相對表達(dá)量分別呈現(xiàn)緩慢上升、緩慢下降的表達(dá)趨勢,但在各個時間點間沒有明顯變化。CaNRAMP3基因在處理0~12 h呈明顯的上調(diào)趨勢,在處理12 h時表達(dá)量最高,為處理0 h時表達(dá)量的6.68倍;處理24 h時表達(dá)量有所減弱,但仍為處理0 h時表達(dá)量的3.26倍。CaNRAMP5基因在處理3~24 h的表達(dá)量整體呈下降趨勢,處理12 h時的表達(dá)量最低。結(jié)合基因組織表達(dá)熱圖可以看出,CaNRAMP3基因參與鎘脅迫反應(yīng)的正調(diào)控,而CaNRAMP2、CaNRAMP4、CaNRAMP5基因不參與鎘脅迫反應(yīng)的調(diào)控。
3 討論與結(jié)論
NRAMP家族蛋白是一類能在生物中轉(zhuǎn)運不同金屬離子的跨膜蛋白家族,在植物基本營養(yǎng)元素(Mn2+、Fe2+、Zn2+等)的吸收和抵御重金屬(Cd2+、Co2+、As2+等)毒害等方面發(fā)揮著重要作用。目前 人們已在擬南芥、水稻、大豆、苜蓿、番茄等植物中發(fā)現(xiàn)相關(guān)NRAMP家族蛋白,本研究也從辣椒中鑒定出5個NRAMP相關(guān)基因,根據(jù)系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系,將6個植物中的NRAMP家族蛋白分為2大類。植物Ⅰ類NRAMP蛋白成員參與Fe2+、Mn2+、Cd2+等金屬離子的運輸。擬南芥AtNRAMP1、番茄LeNRAMP1、水稻OsNRAMP1、苜蓿MtNRAMP1分別在缺Fe2+環(huán)境下于各植物根部的表達(dá)量上調(diào)[8,25-26];部分水稻、擬南芥的NRAMP蛋白也參與到Mn2+、Cd2+的轉(zhuǎn)運和調(diào)節(jié)中[6,9,12,17]。而在植物Ⅱ類NRAMP蛋白成員中,也同樣具有部分金屬離子轉(zhuǎn)運的功能,AtNRAMP3、AtNRAMP4定位在擬南芥種子液泡中,參與Fe2+的運輸,在葉片中也參與Mn2+的轉(zhuǎn)運[11-12];部分大豆的NRAMP蛋白被預(yù)測定位在液泡上,發(fā)現(xiàn)具有轉(zhuǎn)運Mn2+、Cd2+、Cu2+的能力[27]。此外,在植物NRAMP蛋白成員中,Ⅰ類成員已被證實或預(yù)測定位于細(xì)胞質(zhì)膜上,而Ⅱ類則被證實或存在于液泡膜上。這些研究結(jié)果表明,植物NRAMP同類成員之間可能有著相同的亞細(xì)胞定位,行使著類似的金屬離子轉(zhuǎn)運功能。
本研究對辣椒NRAMP基因的組織表達(dá)模式和qRT-PCR的分析結(jié)果顯示,均未檢測到CaNRAMP1基因的表達(dá)情況;CaNRAMP5的組織表達(dá)特異地集中于花蕾、花中,在葉中不表達(dá),可能在花器官的發(fā)育過程中起重要作用;CaNRAMP2、CaNRAMP3、CaNRAMP4可能全程參與辣椒各生長發(fā)育階段的調(diào)控。在辣椒苗期葉中應(yīng)對鎘脅迫處理時,CaNRAMP3基因的表達(dá)量有明顯上調(diào)趨勢,其余基因表達(dá)量皆無上調(diào)變化,說明CaNRAMP3參與鎘脅迫的正向調(diào)控,推測CaNRAMP3在葉中參與了Cd2+的轉(zhuǎn)運調(diào)控。CaNRAMP2、CaNRAMP4在根、莖中均有中較高的組織表達(dá)量,研究也發(fā)現(xiàn),CaNRAMP2的直系同源基因LeNRAMP3在番茄根部可以轉(zhuǎn)運Fe2+、Cd2+[23,28],CaNRAMP4的直系同源基因LeNRAMP2在番茄木質(zhì)部可以轉(zhuǎn)運Zn2+[29],預(yù)測這2個CaNRAMP基因在辣椒中可能具有類似的金屬離子轉(zhuǎn)運功能。
本研究通過生物信息學(xué)方法,在辣椒全基因組中鑒定了辣椒NRAMP基因家族,并對其序列結(jié)構(gòu)、系統(tǒng)發(fā)育關(guān)系及表達(dá)情況進(jìn)行了分析,對辣椒NRAMP基因成員在生長發(fā)育和Cd2+脅迫下的應(yīng)答功能進(jìn)行了初步預(yù)測。通過對辣椒NRAMP基因家族成員的全面了解,將有助于研究辣椒如何適應(yīng)外界的鎘脅迫,可以為降低辣椒中鎘的積累量和優(yōu)化作物品質(zhì)提供參考。
參考文獻(xiàn):
[1]Nevo Y,Nelso N. The NRAMP family of metal-ion transports[J]. Biochimica et Biophysica Acta-Biomembranes,2006,1763(7):609-620.
[2]Colangelo E P,Guerinot M L. Put the metal to the petal:metal uptake and transport throughout plants[J]. Current Opinion in Plant Biology,2006,9(3):322-330.
[3]Xia J X,Yamaji N,Kasai T,et al. Plasma membrane-localized transporter for aluminum in rice[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2010,107(43):18381-18385.
[4]Tiwari M,Sharma D,Dwivedi S,et al. Expression in Arabidopsis and cellular localization reveal involvement of rice NRAMP,OsNRAMP1,in arsenic transport and tolerance[J]. Plant Cell & Environment,2014,37(1):140-152.
[5]Vidal S M,Malo D,Vogan K,et al. Natural resistance to infection with intracellular parasites:isolation of a candidate for Bcg[J]. Cell,1993,73(3):469-485.
[6]Bairoch A. The PROSITE dictionary of sites and patterns in proteins,its current status[J]. Nucleic Acids Research,1993,21(13):3097-3103.
[7]Krmer U,Talke I N,Hanikenne M. Transition metal transport[J]. FEBS Letters,2007,581(12):2263-2272.
[8]Curie C,Alonso J M,le Jean M,et al. Involvement of NRAMP1 from Arabidopsis thaliana in iron transport[J]. The Biochemical Journal,2000,347:749-755.
[9]Cailliatte R,Schikora A,Briat J F,et al. High-affinity manganese uptake by the metal transporter NRAMP1 is essential for Arabidopsis growth in low manganese conditions[J]. Plant Cell,2010,22(3):904-917.
[10]Thomine S,Lelièvre F,Debarbieux E,et al. AtNRAMP3,a multispecific vacuolar metal transporter involved in plant responses to iron deficiency[J]. Plant Journal for Cell and Molecular Biology,2003,34(5):685-695.
[11]Lanquar V,Lelievre F,Bolte S,et al. Mobilization of vacuolar iron by AtNRAMP3 and AtNRAMP4 is essential for seed germination on low iron[J]. EMBO Journal,2005,24(23):4041-4051.
[12]Yamaji N,Sasaki A,Xia J X,et al. A node-based Switch for preferential distribution of manganese in rice[J]. Nature Communications,2013,4(9):2442-2452.
[13]Thomine S,Wang R C,Ward J M,et al. Cadmium and iron transport by members of a plant metal transporter family in Arabidopsis with homology to Nramp genes[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2000,97(9):4991-4996.
[14]Cailliatte R,Lapeyre B,Briat J F,et al. The NRAMP6 metal transporter contributes to cadmium toxicity[J]. Biochemical Journal,2009,422(2):217-228.
[15]Takahashi R,Ishimaru Y,Senoura T A,et al. The OsNRAMP1 iron transporter is involved in Cd accumulation in rice[J]. Journal of Experimental Botany,2011,62(14):4843-4850.
[16]Takahashi R,Ishimaru Y,Nakanishi H,et al. Role of the iron transporter OsNRAMP1 in cadmium uptake and accumulation in rice[J]. Plant Signaling and Behavior,2011,6(11):1813-1816.
[17]Ishimaru Y,Bashir K,Nakanishi H,et al. OsNRAMP5,a major player for constitutive iron and manganese uptake in rice[J]. Plant Signaling and Behavior,2012,7(7):763-766.
[18]Oomen R J,Wu J,Lelièvre F,et al. Functional characterization of NRAMP3 and NRAMP4 from the metal hyperaccumulator Thlaspi caerulescens[J]. New Phytologist,2009,181(3):637-650.
[19]Qin C,Yu C S,Shen Y O,et al. Whole-genome sequencing of cultivated and wild peppers provides insights into Capsicum domestication and specialization[J]. PNAS,2014,111(14):5135-5140.
[20]Oliani L C,Lidani K C,Gabriel J E. Differentiated evolutionary relationships among chordates from comparative alignments of multiple sequences of MyoD and MyoG myogenic regulatory factors[J]. Genetics and Molecular Research,2015,14(4):12561-12566.
[21]郭安源,朱其慧,陳 新,等. GSDS:基因結(jié)構(gòu)顯示系統(tǒng)[J]. 遺傳,2007,29(8):1023-1026.
[22]張亞利,謝玲玲,歐陽嫻,等. 辣椒VQ基因家族的鑒定與低溫脅迫下的表達(dá)分析[J]. 湖南中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報,2016,36(7):11-19.
[23]Arocho A,Chen B,Ladanyi M,et al. Validation of the 2-DeltaDeltaCt calculation as an alternate method of data analysis for quantitative PCR of BCR-ABL P210 transcripts[J]. Diagnostic Molecular Pathology:the American Journal of Surgical Pathology,Part B,2006,15(1):56-61.
[24]胡潤芳,林國強(qiáng),張廣慶,等. 大豆Nramp基因家族的序列特征與親緣關(guān)系分析[J]. 分子植物育種,2011,9(2):245-250.
[25]Bereczky Z,Wang H Y,Schubert V,et al. Differential regulation of nramp and irt metal transporter genes in wild type and Iron uptake mutants of tomato[J]. Journal of Biological Chemistry,2003,278(27):24697-24704.
[26]Tejada-Jiménez M,Castro-Rodríguez R,Kryvoruchko I,et al. MtNramp1 is required for iron uptake by rhizobia-infected Medicago truncatula nodule cells[J]. Plant Physiology,2015,168(1):258-272.
[27]Qin L,Han P P,Chen L Y,et al. Genome-wide identification and expression analysis of NRAMP family genes in soybean (Glycine max L.)[J]. Frontiers in Plant Science,2017,8(10):1436-1454.
[28]Hartke S,Da S A. de moraes M G.Cadmium accumulation in tomato cultivars and its effect on expression of metal transport-related genes[J]. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology,2013,90(2):227-232.
[29]Kendziorek M,Klimecka M,Barabasz A,et al. Engineering high Zn in tomato shoots through expression of AtHMA4 involves tissue-specific modification of endogenous genes[J]. BMC Genomics,2016,17(1):625-644.