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    高效液相色譜法評價海洋生物中半胱亞磺酸脫羧酶活性

    2019-05-14 09:44:20張千偉徐紅萍毛麗沙金火喜
    安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年1期
    關(guān)鍵詞:高效液相色譜海洋生物

    張千偉 徐紅萍 毛麗沙 金火喜

    摘要[目的]建立磺基丙氨酸(CA)的高效液相色譜分析法,并以CA為底物,評價不同海洋生物組織中半胱亞磺酸脫羧酶(CSD)的活性。[方法]以AgilentEclipseXDB-C18為色譜柱,采用鄰苯二甲醛(OPA)進(jìn)行柱前衍生,檢測波長為315nm,對衍生化過程及色譜條件進(jìn)行了優(yōu)化。[結(jié)果]當(dāng)CA∶OPA(物質(zhì)的摩爾比)=1∶2、衍生時間2min、流動相甲醇∶乙酸鈉=65∶35(V/V)、流速1mL/min時,CA具有最優(yōu)的檢測效果。在該條件下,CA濃度在10~500μg/mL具有良好的線性關(guān)系(R2>0.99),平行樣品的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.9%~8.6%,保留時間為1.4~1.5min。不同海洋生物組織中CSD活性檢測結(jié)果顯示,在所選擇的海洋貝類、頭足類、魚類中,貽貝、疣荔枝螺和大黃魚均未檢測到CSD活性;蟶子、血蛤、芝麻螺和魷魚中CSD活性較低。不同組織比較,海鱸魚肝臟中CSD活性最高,達(dá)21.8U/mg,而肉和鰓中則未檢測到CSD活性。[結(jié)論]不同海洋生物體內(nèi)牛磺酸的合成途徑不盡相同。

    關(guān)鍵詞海洋生物;半胱亞磺酸脫羧酶;磺基丙氨酸;高效液相色譜

    中圖分類號TS201.2文獻(xiàn)標(biāo)識碼A

    文章編號0517-6611(2019)01-0212-04

    doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2019.01.062

    開放科學(xué)(資源服務(wù))標(biāo)識碼(OSID):

    牛磺酸,又稱β-氨基乙磺酸,是動物體內(nèi)含硫氨基酸代謝的最終產(chǎn)物之一。?;撬釓V泛分布于哺乳動物和海洋生物中,像哺乳動物的腦、肝臟及貝類、螺類等海洋生物中?;撬岬暮烤重S富[1-5]。?;撬岜徽J(rèn)為具有廣泛的生理學(xué)功能,如保護(hù)細(xì)胞膜、解毒以及抗氧化等[6-7]。研究證明,?;撬徇€具有促進(jìn)大腦發(fā)育、增強(qiáng)人體免疫和改善視力等功效[8-10]。

    ?;撬岬纳锖铣赏緩捷^為復(fù)雜[11],不同的生物體內(nèi)其合成途徑存在一定差異。研究發(fā)現(xiàn),通過半胱氨酸雙加氧酶(CDO)催化半胱氨酸形成半胱亞磺酸(CSA),再經(jīng)半胱亞磺酸脫羧酶(CSD)催化脫羧生成亞?;撬?,最后氧化成?;撬崾巧矬w內(nèi)合成?;撬嶙钪饕耐緩絒12]。除此之外,某些生物還可以通過CSA—磺基丙氨酸(CA)—?;撬嵬緩交虬腚装贰獊喤;撬帷;撬嵬緩降扰月吠緩絹砗铣膳;撬?。例如,藍(lán)鰓太陽魚(Lepomismacrochirus)中具有較高的半胱胺雙加氧酶(CAD)活性[11],可以通過CA脫羧形成?;撬醄13]。在上述途徑中,CSA和CA的脫羧反應(yīng)均由同一個酶CSD催化。目前,有關(guān)?;撬嵘锖铣赏緩降难芯恐饕性谥饕緩缴希瑢A脫羧生成?;撬嵬緩降难芯旷r有文獻(xiàn)報道。據(jù)此,該研究以CA為底物,對不同海洋生物組織中CSD的活性進(jìn)行檢測和篩選,彌補(bǔ)國內(nèi)該研究領(lǐng)域的空白,為進(jìn)一步明確不同海洋生物體內(nèi)?;撬岬暮铣赏緩教峁﹨⒖?。

    從海洋生物組織樣品中提取CSD粗蛋白,加入底物CA,在緩沖體系中進(jìn)行反應(yīng),通過分析反應(yīng)前后CA含量的變化可評價樣品中CSD的活性。氨基酸通過異硫氰酸苯酯、單磺酰氯、鄰苯二甲醛(OPA)等衍生化后可在高效液相色譜上進(jìn)行檢測[14-16],其中OPA衍生法因安全、簡便、快速的特點(diǎn)而被廣泛應(yīng)用。該試驗采用OPA為衍生劑,甲醇-乙酸鈉為流動相,擬建立峰形良好、快速靈敏的CA檢測方法,利用該方法評價不同海洋生物中CSD的活性。

    1材料與方法

    1.1試驗材料

    1.1.1試材。

    貽貝、血蛤、芝麻螺、疣荔枝螺、海鱸魚等海洋生物購于舟山市樂購超市。

    1.1.2藥品與試劑。

    磺基丙氨酸(CA)、牛磺酸、鄰苯二甲醛(OPA)、牛血清蛋白、甲醇、乙酸鈉、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、硫酸銨、硼酸、氫氧化鈉、巰基乙醇和考馬斯亮藍(lán)G-250等藥品和試劑均購于上海阿拉丁生化科技股份有限公司。

    1.1.3儀器與設(shè)備。

    1200高效液相色譜儀(美國Agilent公司);FS-1高速勻漿機(jī)(江蘇金壇市環(huán)宇科學(xué)儀器廠);SHZ-88A水浴恒溫振蕩器(蘇州市培英實(shí)驗設(shè)備有限公司)。

    1.2試驗方法

    1.2.1溶液的配制。

    衍生試劑:準(zhǔn)確稱取0.01gOPA于1mL甲醇中,超聲波輔助下溶解,再加入10μL巰基乙醇,用0.4mol/L的硼酸鈉緩沖液(pH9.5)定容至10mL即可,現(xiàn)配現(xiàn)用。CA標(biāo)液(1mg/mL):準(zhǔn)確稱取0.05gCA固體,溶解于50mL0.2mol/L磷酸鹽緩沖液中(pH7.4)。牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)液(0.1mg/mL):準(zhǔn)確稱取0.01g牛血清蛋白溶解于100mL0.2mol/L磷酸鹽緩沖液中。考馬斯亮藍(lán)試劑:準(zhǔn)確稱50mg考馬斯G-250,將其溶于50mL95%乙醇中,再加入50mL85%磷酸,定容至500mL。

    1.2.2CA高效液相檢測。

    取CA溶液250μL至離心管中,加入一定量的衍生劑,在37℃水浴下進(jìn)行衍生化反應(yīng)。反應(yīng)液經(jīng)0.45μm微孔濾膜過濾,立刻進(jìn)行HPLC分析。色譜條件:色譜柱AgilentXDB-C18(4.6mm×150mm,5μm),流動相甲醇-乙酸鈉溶液,波長315nm。根據(jù)峰形、峰面積、保留時間等指標(biāo)對流動相比例、流速、衍生劑用量、衍生化時間等條件進(jìn)行優(yōu)化。

    1.2.3CA標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制。

    將CA標(biāo)準(zhǔn)液(1mg/mL)用超純水依次稀釋成0.50、0.40、0.20、0.10、0.05、0.02、0.01mg/mL7個質(zhì)量濃度梯度。按照“1.2.2”步驟,在最優(yōu)條件下對CA濃度進(jìn)行測定。以CA質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)、峰面積為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

    1.2.4精密度試驗。

    分別取0.01、0.10和0.50mg/mL的CA標(biāo)準(zhǔn)溶液,按照“1.2.2”步驟,在最優(yōu)條件下對CA濃度進(jìn)行測定。每種質(zhì)量濃度平行測定3次,記錄峰面積,并計算相對標(biāo)準(zhǔn)偏差。

    1.2.5樣品中CSD活性檢測。

    將新鮮的海洋生物洗凈,取肉、內(nèi)臟、鰓等組織部分。分別稱取20g,加入50mL磷酸鹽緩沖液,在循環(huán)水控溫下,勻漿30min。將勻漿液置于8000r/min下離心20min,去沉淀。上清液在4℃下用70%硫酸銨鹽析4h,10000r/min離心15min,棄上清液。沉淀中加入50mL磷酸鹽緩沖液,并置于同種緩沖液中透析12h,中途更換一次緩沖液。試驗組取透析后的粗酶液1mL,加入0.05mol/L的CA溶液1mL,再加入0.2μmol磷酸吡哆醛和4.0μmol巰基乙醇。另取0.05mol/L的CA溶液1mL,加入1mL磷酸鹽緩沖液、0.2μmol磷酸吡哆醛和4.0μmol巰基乙醇,作為空白組。將試驗組和空白組均于37℃、120r/min條件下反應(yīng)2h,反應(yīng)液按照“1.2.2”方法檢測CA的含量。在上述反應(yīng)條件下,每分鐘催化反應(yīng)掉1nmolCA所需的酶量定義為一個酶活單位(U)。

    1.2.6粗酶液的蛋白濃度測定。

    采用考馬斯亮藍(lán)法測定粗酶液中蛋白質(zhì)濃度。配制一系列濃度梯度的牛血清標(biāo)準(zhǔn)蛋白液,各取1mL標(biāo)準(zhǔn)液,加5mL考馬斯亮藍(lán)試劑,搖勻后在595nm測吸光度。以牛血清蛋白濃度為橫坐標(biāo)、A595nm為縱坐標(biāo),繪制牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線。取1mL樣品粗酶液,加5mL考馬斯亮藍(lán),搖勻后測A595nm,依照牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線計算樣品蛋白濃度。

    2結(jié)果與分析

    2.1流動相比例選擇

    選用甲醇與0.05mol/L的乙酸鈉作為流動相,分別選擇體積比20∶80、30∶70、40∶60、50∶50和65∶35進(jìn)行試驗,結(jié)果如表1所示。由表1可知,在所選的所有體積比下,CA均能達(dá)到很好的分離效果,但保留時間隨著甲醇比例的增加而縮短。綜合考慮峰面積(較大為宜)及保留時間(較短為宜),確定流動相甲醇-乙酸鈉的比例為65∶35。

    2.2流動相流速優(yōu)化

    流動相的流速是高效液相色譜檢測法的一個重要因素,流速過慢,峰形變寬,保留時間延長,效率降低;流速過快則峰面積太小,導(dǎo)致靈敏度降低。該試驗選擇甲醇-乙酸鈉(65∶35,V/V)為流動相,考察了不同流速(0.6、0.8、1.0、1.2、1.5mL/min)對CA(1mg/mL)檢測的影響。從表2可以看出,流速對CA的出峰時間及峰面積均有顯著影響,隨著流動相流速的不斷增大,保留時間逐漸縮短,峰面積則不斷下降。綜合考慮峰面積和保留時間,選擇1.0mL/min為最終流動相的流速。

    2.3衍生劑用量選擇

    該研究采用OPA對CA進(jìn)行衍生化,OPA的用量對衍生化產(chǎn)物的濃度有直接影響。OPA用量不足,衍生化反應(yīng)不完全,目標(biāo)物質(zhì)峰面積減小;OPA用量過多,則會導(dǎo)致藥品的浪費(fèi)。該試驗考察了OPA的不同用量(CA與OPA的摩爾比分別為2∶1、1∶1、1∶2、1∶3和1∶5)對CA檢測的影響,結(jié)果如表3所示。由表3可知,隨著OPA用量的增加,CA峰面積也逐漸增加;當(dāng)OPA與CA的摩爾比超過2∶1時,峰面積趨于穩(wěn)定,說明OPA已經(jīng)過量。所以,最終選擇OPA與底物CA的摩爾比為1∶2。

    2.4衍生化時間優(yōu)化

    該試驗考察了底物CA與衍生試劑OPA反應(yīng)的時間對峰面積的影響,結(jié)果如圖1所示。由圖1可知,隨著反應(yīng)時間的增加,峰面積從0.5min時的7335迅速增加至2min時的11109,說明CA與OPA反應(yīng)迅速。然而,隨著反應(yīng)時間的繼續(xù)延長,峰面積有緩慢下降的趨勢,說明衍生化產(chǎn)物不是十分穩(wěn)定,會慢慢分解。所以,該試驗采用衍生時間為2min。

    2.5CA色譜圖與標(biāo)準(zhǔn)曲線

    在上述最優(yōu)條件下,CA標(biāo)樣(1mg/mL)的色譜圖如圖2,可見其峰型美觀,且沒有雜峰干擾。以CA質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)、峰面積為縱坐標(biāo)繪制CA標(biāo)準(zhǔn)曲線,如圖3所示。當(dāng)CA在10~500μg/mL時,CA質(zhì)量濃度與峰面積呈良好的線性關(guān)系,回歸方程為y=12134x+9.519(R2=0.991)。

    2.6精密度試驗

    選擇3個不同質(zhì)量濃度的CA標(biāo)樣,分別為低質(zhì)量濃度(10μg/mL)、中質(zhì)量濃度(100μg/mL)和高質(zhì)量濃度(500μg/mL),同一樣品重復(fù)測定3次,峰面積見表4。這3種質(zhì)量濃度的CA標(biāo)樣相對標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為8.6%、0.9%和4.9%,說明該方法精密度較高,具有良好的重復(fù)性。

    2.7海洋生物樣品中CSD活性的評價

    該試驗選擇了舟山海域常見的幾種海洋生物,將其組織經(jīng)洗凈、勻漿、鹽析和透析后得粗酶液。粗酶液中蛋白含量按“1.2.6”中方法進(jìn)行測定,其牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖4所示。由圖4可知,牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線有良好的線性關(guān)系。分別向各組織樣品初酶液中加入底物CA,37℃、120r/min條件下維持2h,檢測反應(yīng)前后CA含量的變化,從而評價樣品中CSD的活性。

    從表5可以看出,在所選擇的海洋生物中,貽貝、疣荔枝螺和大黃魚體內(nèi)未檢測到CSD活性,而蟶子、血蛤、芝麻螺和魷魚體內(nèi)均檢測到CSD活性。該結(jié)果說明,貽貝、疣荔枝螺和大黃魚不具有通過CA合成?;撬岬哪芰?,而蟶子、血蛤、芝麻螺和魷魚則可以通過這個途徑合成?;撬?。針對海鱸魚和美國紅魚不同組織的檢測結(jié)果發(fā)現(xiàn),不同組織中CSD活性也有明顯差異。海鱸魚腸和肝中CSD活性的活性分別達(dá)6.0和21.8U/mg,而肉和鰓中則未檢測到CSD活性;美國紅魚腸中檢測到很低的CSD活性,其他組織中則未檢測到CSD活性。柳小英等[17]報道這些組織中均含有一定量的牛磺酸,結(jié)合該試驗結(jié)果,說明同一種生物的不同組織可以通過不同的途徑來合成?;撬帷?/p>

    海洋生物尤其是海洋貝類、螺類、魚類等,其體內(nèi)?;撬岬暮渴重S富,是獲取天然?;撬岬膶殠?。?;撬嵩诓煌M織中的含量差異較大,一般來說,肝臟中?;撬岷枯^高。CSD是很多生物體內(nèi)?;撬岷铣傻年P(guān)鍵限速酶,其活性的大小往往決定了牛磺酸含量的高低。CSD可以介導(dǎo)牛磺酸合成的2條途徑,但不同生物組織內(nèi)的CSD對CSA和CA的活性有所差異。研究發(fā)現(xiàn),藍(lán)鰓太陽魚肝臟內(nèi)CSD對CSA的活性遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于CA,真鯛肝臟內(nèi)CSD則對CA的活性大于CSA,而來自虹鱒魚肝臟的CSD對CA基本沒有活性[12-13]。所以,該研究以CA為底物,檢測海洋生物體內(nèi)CSD的活性,可一定程度上分析不同海洋生物體內(nèi)?;撬岬暮铣赏緩?,為揭示?;撬岬暮铣蓹C(jī)制提供一定的參考基礎(chǔ)。

    3結(jié)論

    該試驗建立了磺基丙氨酸的高效液相色譜分析方法。采用OPA進(jìn)行衍生,檢測波長315nm,流動相甲醇∶乙酸鈉=65∶35(V/V),流速為1mL/min,CA∶OPA=1∶2,衍生時間

    2min。該方法在10~500μg/mL質(zhì)量濃度范圍內(nèi)具有良好

    的線性關(guān)系(R2>0.99),相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.9%~8.6%。以CA為底物,利用該方法評價不同海洋生物中CSD的活性,結(jié)果發(fā)現(xiàn),不同的海洋生物中CSD活性差異較大,其中海鱸魚肝臟中活性最高,而大黃魚、貽貝和疣荔枝螺中未檢測到CSD活性。該研究表明不同海洋生物體內(nèi)?;撬岬暮铣赏緩接兴町?。

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