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    苯丙烯菌酮對(duì)水稻稻瘟病病原真菌細(xì)胞壁膜的作用

    2019-01-19 06:17:39劉雪關(guān)麗杰
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年22期
    關(guān)鍵詞:作用機(jī)制

    劉雪 關(guān)麗杰

    摘要:初步探究苯丙烯菌酮對(duì)水稻稻瘟病病菌的抑菌機(jī)制。采用紫外分光光度法測(cè)定參與水稻稻瘟病病菌細(xì)胞壁降解的2個(gè)關(guān)鍵酶(幾丁質(zhì)酶和β-1,3-葡聚糖酶)活性以及菌體細(xì)胞外的磷濃度;采用熒光分光光度法測(cè)定PI-DNA復(fù)合物(碘化吡啶)熒光強(qiáng)度;采用氣質(zhì)聯(lián)用法(GC-MS)測(cè)定甾醇類(lèi)物質(zhì)含量變化。結(jié)果表明,用10 mg/L苯丙烯菌酮處理水稻稻瘟病病菌后,菌體內(nèi)的幾丁質(zhì)酶和β-1,3-葡聚糖酶活性均升高,藥劑處理1 h后酶活性明顯升高,分別是對(duì)照組的1.69倍和3.76倍,細(xì)胞外的磷濃度在1 h后明顯升高,3 h時(shí)是對(duì)照組的1.29倍,24 h時(shí)PI-DNA復(fù)合物熒光強(qiáng)度急劇升高,為對(duì)照組的19.71倍,然后用10 mg/L苯丙烯菌酮處理6 h后6-乙酰氨基麥角甾醇含量與對(duì)照組相比減少了96.83%,酵母甾醇則消失。結(jié)果表明,苯丙烯菌酮可以破壞水稻稻瘟病菌細(xì)胞壁和細(xì)胞膜功能結(jié)構(gòu),起到抑菌作用。

    關(guān)鍵詞:水稻稻瘟病菌;殺真菌劑;苯丙烯菌酮;作用機(jī)制;植物病原真菌

    中圖分類(lèi)號(hào): S435.111.4+1 ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A ?文章編號(hào):1002-1302(2019)22-0117-04

    水稻稻瘟病是一類(lèi)重要的水稻病害,并且水稻稻瘟病病菌侵染能力強(qiáng),能在短時(shí)間內(nèi)快速傳播[1-2],同時(shí)易發(fā)生菌絲融合現(xiàn)象,形成多核體,這種變異增加了水稻病害防治工作的難度[3]。全球每年因?yàn)樗緶p產(chǎn)造成很大的經(jīng)濟(jì)損失,迫切需要一種新型環(huán)境友好的殺菌劑來(lái)解決水稻病害[4]。苯丙烯菌酮?jiǎng)e稱(chēng)異補(bǔ)骨脂查爾酮,是天然植物補(bǔ)骨脂提取物中的一個(gè)重要活性成分。有研究表明,二聚黃酮類(lèi)化合物對(duì)人類(lèi)致病酵母菌和絲狀真菌均有較好的抑菌效果[5],查爾酮類(lèi)化合物也具有優(yōu)良的抗細(xì)菌真菌活性[6]。據(jù)報(bào)道,異補(bǔ)骨脂查爾酮具有多種藥理活性,包括抗細(xì)菌、抗真菌、抗病毒、抗炎和抗腫瘤作用[7]。Zhang等在抑菌試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),枯草芽孢桿菌 KB-1122對(duì)稻瘟病菌生長(zhǎng)有明顯的抑制作用,經(jīng)過(guò)二維聚丙烯酰胺凝膠電泳和蛋白組分析試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),甘油醛-3-磷酸脫氫酶和絲氨酸蛋白激酶與枯草桿菌KB-1122的抑菌作用密切相關(guān)[8]。檸檬醛可以提高幾丁質(zhì)酶活性,從而破壞水稻稻瘟病菌細(xì)胞壁完整性,達(dá)到抑菌目的[9]。硝基苯乙烯類(lèi)化合物能明顯抑制稻瘟病菌的黑色素合成相關(guān)酶3HNR的活性,顯示出抑菌效果[10]。

    盆栽試驗(yàn)和田間試驗(yàn)已經(jīng)證實(shí)了苯丙烯菌酮乳油劑對(duì)稻瘟病菌有較好的防治效果[11]。掃描電鏡結(jié)果顯示,經(jīng) 10 mg/L 苯丙烯菌酮處理后,水稻稻瘟病菌菌絲界限變得模糊,且相互交連發(fā)生融合,菌體形態(tài)發(fā)生了明顯變化。本試驗(yàn)為進(jìn)一步明確苯丙烯菌酮對(duì)水稻稻瘟病菌的殺菌機(jī)制,通過(guò)測(cè)定細(xì)胞壁水解酶(幾丁質(zhì)酶和β-1,3葡聚糖酶)活性[12-13]、細(xì)胞膜通透性試驗(yàn)、PI熒光檢測(cè)和甾醇類(lèi)物質(zhì)成分分析試驗(yàn),探究苯丙烯菌酮對(duì)稻瘟病菌菌體細(xì)胞壁和細(xì)胞膜的作用[14-15],為苯丙烯菌酮?dú)⒕饔锰峁├碚撘罁?jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    1.1.1 主要試劑 苯丙烯菌酮(異補(bǔ)骨脂查爾酮),購(gòu)自成都普菲德生物技術(shù)有限公司;丙酮,購(gòu)自福晨(天津)化學(xué)試劑廠;葡萄糖,購(gòu)自天津市大茂化學(xué)試劑廠;酵母浸粉,購(gòu)自安琪酵母股份有限公司;瓊脂,購(gòu)自福建省金燕海洋生物科技股份有限公司。

    1.1.2 供試菌種 水稻稻瘟病菌(Pyricularia oryzae Cav.),由沈陽(yáng)化工研究院生物測(cè)定中心提供。

    1.1.3 培養(yǎng)條件 稻殼培養(yǎng)基(1 000 mL):稻殼30 g,葡萄糖5.0 g,酵母浸粉1.4 g,瓊脂20~25 g,MgSO4 0.25 g。

    PDA液體培養(yǎng)基(1 000 mL):馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g。

    1.1.4 主要儀器 DHG-9149A型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱,購(gòu)自上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;MPLR-702四孔恒溫水浴鍋,購(gòu)自金壇市大地自動(dòng)化儀器廠;SHZ-DZⅢ循環(huán)水式真空泵,購(gòu)自河南省鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;SZ-93自動(dòng)雙重純水蒸餾器,購(gòu)自上海亞榮生化儀器廠;SCIENTZ-ⅡD超聲波細(xì)胞破碎儀,購(gòu)自寧波新芝生物科技股份有限公司;SPX-250B-Z生化培養(yǎng)箱,購(gòu)自上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;SW-CJ-IG單人凈化工作臺(tái),購(gòu)自蘇州凈化設(shè)備有限公司;TBL-16G-A高速冷凍離心機(jī),購(gòu)自上海安亭科學(xué)儀器廠;TSQ-280振蕩培養(yǎng)箱,購(gòu)自上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 苯丙烯菌酮對(duì)稻瘟病菌細(xì)胞壁的影響

    1.2.1.1 菌絲的制備 取5 mL水稻稻瘟病菌孢子懸液接入PDA培養(yǎng)液中,置于28 ℃、150 r/min振蕩培養(yǎng)6 d后進(jìn)行處理,苯丙烯菌酮處理濃度為10 mg/L,對(duì)照加等量丙酮,每個(gè)處理設(shè)3次重復(fù)。藥劑處理后,在時(shí)間為0、1、3、6、12、24 h收集菌絲,抽干水分后在-20 ℃下保存。

    1.2.1.2 酶液的提取 稱(chēng)取1 g菌絲,加入5 mL Tris-HCl(0.05 mol/L,pH值7.5)緩沖液,超聲破碎30 min(工作5 s間歇3 s)。然后將破碎的細(xì)胞勻漿轉(zhuǎn)移至EP管中,4 ℃、12 000 r/min 離心15 min,取上清液置于-80 ℃儲(chǔ)存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.1.3 幾丁質(zhì)水解酶含量測(cè)定 向潔凈的試管中加入 0.2 mL 膠狀幾丁質(zhì),用0.1 mL乙酸鈉緩沖液(濃度為 0.1 mol/L,pH值4.5)和不同時(shí)間處理酶液0.3 mL,于40 ℃下水浴1 h(空白用三蒸水代替酶液),流水冷卻至室溫。12 000 r/min 離心10 min,移取上清液0.25 mL,加40 μL 10%脫鹽蝸牛酶,37 ℃保溫存1 h,冷卻。然后加0.1 mL硼酸鉀溶液(0.8 mol/L),沸水浴3 min,冷卻至室溫,加2 mL 1%二甲基胺硼烷(DMAB)溶液于37 ℃水浴20 min,冷卻,于波長(zhǎng)585 nm處測(cè)定吸光度。根據(jù)N-乙酰葡萄糖胺標(biāo)準(zhǔn)曲線y=0.059x-0.007(r2=0.997)進(jìn)行計(jì)算。以單位鮮質(zhì)量樣品在單位時(shí)間內(nèi)產(chǎn)生的N-乙酰葡萄糖胺為1個(gè)酶活力單位。

    U=(D-Do)×VtFW×Vs×t。

    式中:D為樣品中幾丁質(zhì)酶水解生成的N-乙酰葡萄糖胺含量;Do為空白組N-乙酰葡萄糖胺含量;Vt為酶液總體積,mL;Vs為反應(yīng)酶液體積,mL;FW為樣品的鮮質(zhì)量,g;t為反應(yīng)時(shí)間,h。

    1.2.1.4 β-1,3-葡聚糖水解酶含量測(cè)定 β-1,3-葡聚糖水解酶含量測(cè)定的反應(yīng)體系包括0.05 mol/L pH值5.0的乙酸鈉緩沖液(含1%昆布多糖)、0.16 mL 0.05 mol/L乙酸鈉(pH值5.0)緩沖液和300 μL各處理酶液(空白用三蒸水代替酶液),充分混勻,37 ℃保溫1 h,使其充分水解為葡萄糖,采用DNS法測(cè)定還原糖的量,向各反應(yīng)體系中加入 3,5-二硝基水楊酸試劑沸水浴5 min,流水立即冷卻,定容至 3 mL,于540 nm波長(zhǎng)下測(cè)D值[16]。根據(jù)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算酶活性:y=0.173x-0.009,r2=0.998。以單位鮮質(zhì)量樣品在單位時(shí)間內(nèi)產(chǎn)生的還原糖為1個(gè)酶活力單位。

    U=(D-Do)×VtFW×Vs×t。

    式中:D為樣品中β-1,3葡聚糖水解酶水解生成的還原糖含量;Do為空白組還原糖含量;Vt為酶液總體積,mL;Vs為反應(yīng)酶液體積,mL;FW為樣品的質(zhì)量,g;t為反應(yīng)時(shí)間,h。

    1.2.2 苯丙烯菌酮對(duì)稻瘟病菌細(xì)胞膜的影響

    1.2.2.1 菌懸液的制備 取5 mL水稻稻瘟病菌孢子懸液接入PDA培養(yǎng)液中,于28 ℃、150 r/min振蕩培養(yǎng)6 d后進(jìn)行處理,苯丙烯菌酮處理濃度為10 mg/L,對(duì)照加等量丙酮,每個(gè)處理設(shè)3個(gè)重復(fù)。藥劑處理后0、1、3、6、12、24 h取樣。

    1.2.2.2 磷濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線 磷濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備:準(zhǔn)確稱(chēng)取經(jīng)100 ℃干燥至恒質(zhì)量的磷酸二氫鉀43.9 g,加水溶解并定容至250 mL,精確量取10 mL于100 mL容量瓶中,稀釋至刻度,得到0.004 mg/mL的參比溶液。分別取參比試劑0、1、3、5、7、9 mL于25 mL具塞試管中,加6 mL定磷試劑[水 ∶ 3 mol/L 硫酸 ∶ 2.5%鉬酸銨 ∶ 10%維生素C為 2 ∶ 1 ∶ 1 ∶ 1],加水稀釋至25 mL,搖勻,45 ℃水浴20 min,冷卻至室溫,在660 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,并以磷濃度為橫坐標(biāo)、吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線y=0.242 8x+0.009 6,r2=0.996。

    1.2.2.3 胞外磷濃度含量測(cè)定 分別在藥劑處理后0、1、3、6、12、24 h取菌懸液8 mL,3 000 r/min離心10 min,精確量取上清液5 mL于平底燒瓶中,加9 mol/L硫酸溶液5 mL,直火緩慢加熱15 min,冷卻至室溫,滴加過(guò)氧化氫5 mL,繼續(xù)加熱15 min,冷卻,轉(zhuǎn)移至100 mL容量瓶中,稀釋至刻度,精確量取5 mL,余下步驟同“1.2.2.2”節(jié)磷濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線測(cè)定方法。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算磷濃度,磷濃度單位為μg/mL。

    1.2.2.4 PI-DNA熒光檢測(cè) 用滅菌后的超純水配制 50 μg/mL 的PI溶液,置于棕色瓶?jī)?nèi),4 ℃下避光保存。取 5 mL 菌懸液于離心管中,加入1 mL PI溶液和1 mL藥劑,充分混合,在37 ℃下進(jìn)行溫育反應(yīng),分別在反應(yīng)0、1、3、6、12、24 h時(shí)測(cè)定其熒光值(激發(fā)波長(zhǎng)和發(fā)射波長(zhǎng)分別為535、615 nm)。

    1.2.2.5 甾醇成分分析 取菌絲0.5 g于50 mL具塞試管中,加2.5 mL PBS和6 mL新鮮配制的皂化劑,充分混勻,80 ℃ 水浴皂化1 h。加6 mL石油醚60 ℃提取3次,收集餾分,加水洗滌。醚層60 ℃水浴揮干石油醚,得到未皂化脂,加色譜純環(huán)己烷(1 mL/g濕菌)后于-20 ℃保存[17]。

    色譜條件:5% HP-5MS(Phenyl Siloxane)30.0 m×0.250 mm×0.25 μm;柱溫:初溫度100 ℃,最終溫度300 ℃,進(jìn)樣口溫度250 ℃;載氣:氦氣1.0 mL/min。質(zhì)譜標(biāo)準(zhǔn)庫(kù):NBS譜庫(kù)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 苯丙烯菌酮對(duì)水稻稻瘟病菌細(xì)胞壁的影響

    2.1.1 苯丙烯菌酮對(duì)水稻稻瘟病菌幾丁質(zhì)酶活性的影響 由圖1可知,經(jīng)10 mg/L苯丙烯菌酮處理后,菌體內(nèi)幾丁質(zhì)酶活性明顯高于對(duì)照組。藥劑處理1 h,幾丁質(zhì)酶活性為對(duì)照組1.69倍,處理3、6、12、24 h后分別是對(duì)照組的1.41倍、1.54倍、1.33 倍、1.43倍。幾丁質(zhì)是真菌細(xì)胞壁的主要成分,是由N-乙酰葡糖胺通過(guò)β連接聚合而成的結(jié)構(gòu)同多糖。幾丁質(zhì)酶活性升高導(dǎo)致幾丁質(zhì)水解速度加快,細(xì)胞壁幾丁質(zhì)層受損,其功能受到影響,使菌體無(wú)法正常生長(zhǎng)。

    2.1.2 苯丙烯菌酮對(duì)水稻稻瘟病菌β-1,3-葡聚糖酶活性的影響 由圖2可知,藥劑處理組菌體內(nèi)β-1,3-葡聚糖酶活性明顯高于對(duì)照,在藥劑處理后1、3、6、12、24 h后分別是對(duì)照組的3.76倍、2.33倍、3.91倍、1.29倍、1.81倍。葡聚糖是以葡萄糖為單糖組成的同型多糖,葡萄糖單元之間以糖苷鍵連接,是真菌細(xì)胞壁的重要組成部分。經(jīng)苯丙烯菌酮處理后,菌體內(nèi)β-1,3葡聚糖酶活性升高,葡聚糖發(fā)生水解,引起稻瘟病菌細(xì)胞壁降解,所以藥劑通過(guò)破壞真菌細(xì)胞壁達(dá)到抑菌目的。

    2.2 苯丙烯菌酮對(duì)稻瘟病菌細(xì)胞膜的影響

    2.2.1 苯丙烯菌酮對(duì)稻瘟病菌細(xì)胞膜通透性的影響 磷是真菌細(xì)胞內(nèi)的重要營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),主要以多磷酸鹽形式存在,正常細(xì)胞胞外磷濃度遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于胞內(nèi)磷濃度,但當(dāng)細(xì)胞膜受到損傷時(shí),胞液滲漏可使胞外磷濃度升高,分別在藥劑處理菌懸液0、1、3、6、12、24 h后取菌懸液測(cè)定胞外磷濃度,結(jié)果如圖3所示。

    由圖3可知,在藥劑處理1 h后胞外磷濃度明顯升高,藥劑處理1、3、6、12、24 h后胞外磷濃度分別是對(duì)照組的1.12倍、1.29倍、1.31倍、1.31倍、1.17倍。由此可知,殺菌劑苯丙烯菌酮處理菌體細(xì)胞后,真菌細(xì)胞膜發(fā)生一定程度的破損,導(dǎo)致?tīng)I(yíng)養(yǎng)物質(zhì)泄露。

    2.2.2 PI-DNA熒光檢測(cè)結(jié)果 PI是一種可對(duì)DNA染色的細(xì)胞核染色劑,它是一種溴化吡啶的類(lèi)似物,在嵌入雙鏈DNA后釋放紅色熒光。PI不能穿透完整細(xì)胞膜,只有當(dāng)細(xì)胞處于凋亡晚期或者死亡時(shí),染色劑才可以進(jìn)入細(xì)胞并與核酸物質(zhì)結(jié)合形成PI-DNA復(fù)合物,結(jié)果如圖4所示。

    由圖4可以看出,在藥劑處理菌懸液1 h內(nèi),復(fù)合物熒光值沒(méi)有明顯變化,處理1 h后熒光值緩慢上升,處理3、6、12 h時(shí)分別是對(duì)照組的6.35倍、3.24倍、8.30倍,24 h時(shí)復(fù)合物熒光值急劇升高為對(duì)照組的19.71倍。由此可以推測(cè),苯丙烯菌酮處理稻瘟病菌后,菌體胞膜嚴(yán)重受損,染色劑進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)1 h后,菌體開(kāi)始慢慢凋亡,24 h時(shí)細(xì)胞達(dá)到凋亡晚期,細(xì)胞膜完全破裂,細(xì)胞最終死亡。

    2.2.3 苯丙烯菌酮對(duì)甾醇類(lèi)物質(zhì)含量的影響 由圖5至圖7可知,10 mg/L苯丙烯菌酮處理后菌體酵母甾醇消失,6-乙酰氨基麥角甾醇成分減少。表1顯示,苯丙烯菌酮處理組與空白組、對(duì)照組相比分別減少了96.83%、97.07%。麥角甾醇是真菌細(xì)胞膜的重要成分,與細(xì)胞膜流動(dòng)性和穩(wěn)定性密切相關(guān)。麥角甾醇含量降低,細(xì)胞膜會(huì)形成小孔,而酵母甾醇是麥角甾醇的前體物質(zhì)。由此可見(jiàn),苯丙烯菌酮可能作用于麥角甾醇合成途徑,破壞稻瘟病菌細(xì)胞膜結(jié)構(gòu),起到抑菌作用。

    3 結(jié)論

    通過(guò)對(duì)真菌細(xì)胞壁水解相關(guān)酶活性的測(cè)定,結(jié)果表明,用10 mg/L苯丙烯菌酮處理稻瘟病菌后幾丁質(zhì)酶和β-1,3葡聚糖酶,其活性均升高,藥劑處理1 h,幾丁質(zhì)酶活性為對(duì)照組1.69倍;β-1,3葡聚糖酶在藥劑處理1、3、6、12、 24 h后分別是對(duì)照組的3.76倍、2.33倍、3.91倍、1.29倍、1.81倍。幾丁質(zhì)和葡聚糖都是真菌細(xì)胞壁的重要組成部分,其水解酶活性升高會(huì)加快細(xì)胞壁降解,導(dǎo)致細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)受損,進(jìn)而影響其功能。稻瘟病菌胞外磷濃度在藥劑處理1 h后含量增加,是對(duì)照組的1.12倍;PI-DNA復(fù)合物熒光強(qiáng)度在藥劑處理24 h時(shí)顯著升高為對(duì)照組的19.71倍;膜通透性試驗(yàn)和PI熒光檢測(cè)試驗(yàn)表明,苯丙烯菌酮可以破壞菌體細(xì)胞膜功能,導(dǎo)致?tīng)I(yíng)養(yǎng)物質(zhì)泄露,并且細(xì)胞膜完整性遭到破壞,菌體最終死亡。甾醇成分分析結(jié)果顯示,細(xì)胞膜上麥角甾醇合成途徑受阻,細(xì)胞膜形成小洞,流動(dòng)性和穩(wěn)定性下降。綜上,苯丙烯菌酮可以破壞稻瘟病菌細(xì)胞壁和細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)功能及其完整性,從而達(dá)到抑菌目的。

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