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    口蹄疫病毒通用型和A型二重實時熒光RT-PCR檢測方法的建立

    2018-12-21 09:29:58謝彩華班付國閆若潛王東方劉梅芬趙雪麗馬震原王華俊王淑娟
    中國動物檢疫 2018年12期
    關(guān)鍵詞:通用型血清型A型

    謝彩華,班付國,閆若潛,王東方,張 煜,劉梅芬,趙雪麗,馬震原,王華俊,王淑娟

    (1. 河南省動物疫病預(yù)防控制中心,河南鄭州 450008;2. 開封市動物衛(wèi)生監(jiān)督所,河南開封 475000)

    口蹄疫(FMD)是由口蹄疫病毒(Foot-andmouth disease virus,F(xiàn)MDV)引起的豬、牛、羊等家養(yǎng)及野生偶蹄動物共患的一種急性、惡性、高度接觸性傳染病,70多種動物對其易感[1-3]。該病傳播途徑多、速度快,曾在世界范圍內(nèi)多次暴發(fā)流行,造成巨大政治影響和經(jīng)濟損失[4-5],為此世界動物衛(wèi)生組織(OIE)將其列為法定報告動物傳染病。FMD也是危害我國養(yǎng)豬業(yè)最為嚴重的動物疫病之一,為此我國將其列為一類動物疫病,被納入國家強制免疫計劃病種。FMDV為小核糖核酸病毒科口蹄疫病毒屬,最大顆粒直徑為23 nm,最小為7~8 nm。目前已知FMDV在全世界有A、O、C、SAT1、SAT2、SAT3和AsiaⅠ型7種血清型,且各血清型之間的交叉保護力很差[6]。在我國和鄰國流行的主要有O、A、AsiaⅠ三種血清型[7]。由于FMDV血清型較多,因此利用簡單、快速、準確的檢測方法,盡早作出型的鑒別診斷,對控制FMD至關(guān)重要。目前,世界口蹄疫參考實驗室檢測FMDV及定型的常規(guī)方法仍是ELISA、病毒分離、RT-PCR等[8-9]。實時熒光定量PCR(Fluorescent quantitative PCR, FQ-PCR)是一種新型診斷工具,具有敏感、快速、準確的特點,并能在快速擴增核酸同時,實現(xiàn)模板的定量測定[10-11]。目前發(fā)展起來的多聯(lián)實時熒光PCR技術(shù)可以在同一個PCR反應(yīng)中,通過Tm值分析來區(qū)分不同的核酸片段,這為同時檢測多種病原提供了技術(shù)基礎(chǔ)。本研究根據(jù)O、A、AsiaⅠ三種血清型 的FMDV保守基因序列,設(shè)計了能夠檢測到FMDV多種血清型的特異性通用型和A型檢測引物,以及不同熒光素標記的MGB探針,建立了FMDV通用型、A型二重?zé)晒舛縍T-PCR檢測方法,為FMD的鑒別診斷提供了快速、敏感、特異的臨床檢測方法。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 毒株與樣品 O、A和AsiaⅠ型FMDV標準株:中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所試劑盒中的陽性對照;滅活的豬水泡病病毒(SVDV )、豬水泡性口炎病毒(VSV)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、豬偽狂犬病毒(PRV)、豬流行性腹瀉病毒(PEDV)、豬圓環(huán)病毒2型(PCV2)、豬細小病毒(PPV)和豬肺炎支原體等:河南省動物疫病預(yù)防控制中心實驗室提供;臨床樣品:河南省動物疫病預(yù)防控制中心實驗室提供;SVDV、VSV、PRRSV、PEDV、PCV2、PRV、PPV陽性樣品:河南省動物疫病預(yù)防控制中心保存。

    1.1.2 儀器設(shè)備與主要試劑 KingFisher全自動核酸提取儀:購自美國Thermo Fisher公司;DNA/RNA磁珠提取試劑盒:購自Abmion公司;ABI 7500熒光定量PCR儀:購自美國ABI公司;Ex Taq DNA聚 合 酶、Rnase Inhibitor、DL 2 000 bp DNA Marker、DNA回收試劑盒、質(zhì)粒DNA小量純化試劑盒:購自寶生物工程(大連)有限公司;M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶、pGEM-T Easy載體:購自Promega公司;口蹄疫熒光定量RT-PCR檢測試劑盒:購自中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所。

    1.2 方法

    1.2.1 引物設(shè)計與合成 經(jīng)大量比對GenBank中FMDV 3種血清型的保守基因序列和FMDV-A型VP1基因序列,選取FMDV O、A、AsiaⅠ三種血清型的3C基因和FMDV-A型VP1基因高度保守且具有型特異性的序列為模板,設(shè)計通用型(FMDV-T)和A型(FMDV-A)特異性引物對和TaqMan MGB探針。序列為:P1:5'-cggcctctcatccaacaga-3';P2:5'-attttccttcaggcgcttga-3';P3:5'-aaccccaccgcctacca-3';P4:5'-ggtgtaagggagcgcaagtc-3';Probe-P5:5'-FAM-tcatttgtgaaacgcg-MGB-3';Probe-P6:5'-VIC-aagcagccgtttacg-MGB-3'。引物及探針均由寶生物工程(大連)有限公司合成。

    1.2.2 模板制備 利用King fisher全自動核酸提取儀,參照磁珠法核酸提取試劑盒說明書提取O/A/AsiaⅠ FMDV、SVDV、VSV、PRRSV、PEDV 總RNA和PCV2、PRV、PPV總DNA。將RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,將cDNA和總DNA用于PCR擴增或于?20 ℃凍存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.3 FMDV-T/FMDV-A標準品制備 將FMDV-T/FMDV-A陽性擴增產(chǎn)物分別克隆入pGEM-T Easy載體中,篩選陽性重組質(zhì)粒,送寶生物工程(大連)有限公司采用T7和SP6引物進行測序。將測序正確的FMDV-T/FMDV-A重組陽性質(zhì)粒,應(yīng)用分光光度計測定其OD260和OD280并計算OD260/OD280值,共重復(fù)5次;參考Kim等[12]介紹的方法計算濃度,計算得出的pGEM-T/FMDV-T和pGEM-T/FMDV-A質(zhì)粒DNA濃度分別為9.12×1010和9.11×1010拷貝 /μL,然后定量并稀釋至 1.0×100~1.0×1010拷貝 /μL,?20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.4 二重FQ-PCR反應(yīng)條件優(yōu)化 將pGEM-T/FMDV-T和pGEM-T/FMDV-A重組質(zhì)粒分別稀釋至終濃度1.0×105拷貝/μL,并以此作為檢測模板。P1/P2、P3/P4引物和Probe-P5、Probe-P6探針分別稀釋為終濃度0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8和 1.0 μmol/L。應(yīng)用熒光 PCR儀,采用矩陣法篩選不同濃度的FMDV-T/FMDV-A引物和探針組合,對PCR 反應(yīng)溫度、反應(yīng)時間、PCR 的各循環(huán)數(shù)進行優(yōu)化,以獲得最低Ct 值和較高的熒光強度。

    1.2.5 二重FQ-PCR特異性試驗 取O/A/AsiaⅠFMDV,以及豬水皰病等其他7種疫病病毒進行核酸提取,同時設(shè)pGEM-T/FMDV-T和pGEM-T/FMDV-A重組質(zhì)?;旌衔餅殛栃詫φ眨毎囵B(yǎng)液為陰性對照,按已優(yōu)化的FQ-PCR反應(yīng)條件進行FQ-PCR擴增,以驗證該方法的特異性。

    1.2.6 二重FQ-PCR敏感性試驗 將pGEM-T/FMDV-T和pGEM-T/FMDV-A重組質(zhì)粒分別作10倍系列稀釋,將兩種質(zhì)粒按1:1比例混合,每種質(zhì)粒終濃度調(diào)整為 1.0×104~1.0×100拷貝 /μL,共5個稀釋度,按已優(yōu)化的FQ-PCR反應(yīng)條件進行FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR敏感性試驗。

    1.2.7 二重FQ-PCR穩(wěn)定性和重復(fù)性試驗 分別將4個濃度的10倍系列稀釋的pGEM-T/FMDV-T和pGEM-T/FMDV-A重組等量質(zhì)?;旌衔铮糠N質(zhì)粒終濃度 1.0×103~1.0×100拷貝 /μL),按照已優(yōu)化的FQ-PCR反應(yīng)條件進行擴增,每個系列設(shè)定3個重復(fù),以驗證該方法的穩(wěn)定性和重復(fù)性。

    1.2.8 二重FQ-PCR臨床試驗 依據(jù)建立的FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR和本實驗室建立的FMDV-T/FMDV-A RT-PCR檢測方法以及中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所熒光定量RT-PCR試劑盒說明書,配制檢測試劑,以FMDV-T/FMDV-A陽性質(zhì)?;旌衔餅殛栃詫φ眨毎囵B(yǎng)液為陰性對照,對123份臨床疑似FMDV感染樣品(樣品編號1~123)進行應(yīng)用檢測,對這3種方法的檢測結(jié)果進行比較分析,并與FMDV測序結(jié)果比較。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 二重FQ-PCR反應(yīng)條件優(yōu)化

    結(jié)果表明,通用型和 A 型各引物和探針采用以下濃度擴增效果最好:反轉(zhuǎn)錄引物37 ℃反轉(zhuǎn)錄1 h;P1、P3、P5、P6 濃度均為 200 nmol/L,P2、P4濃度均為400 nmol/L。優(yōu)化后的反應(yīng)程序為:94 ℃ 6 min,94 ℃ 30 s,60 ℃ 45 s,重復(fù) 40 個循環(huán)。陰性對照的檢測結(jié)果應(yīng)無特定擴增曲線,且Ct>30.0或無,陽性對照Ct≤27.0,且出現(xiàn)特定的擴增曲線,判定檢測結(jié)果成立。在檢測結(jié)果成立的前提下,若樣品檢測結(jié)果Ct≤30.0,且出現(xiàn)特定的擴增曲線,判定為陽性;Ct>30.0或無,且無特定的擴增曲線,則判定為陰性;30.0≥Ct>27.0且有特定擴增曲線的樣品判定為可疑,需重復(fù)驗證。FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR的擴增曲線見圖1。

    圖1 FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR的擴增曲線

    2.2 二重FQ-PCR特異性試驗

    用所建立的二重?zé)晒?RT-PCR,對FMDV O、A、AsiaⅠ型進行檢測,發(fā)現(xiàn)通用型FAM通道陽性,A型VIC通道陽性,對其他7株常見動物 RNA/DNA病毒檢測均呈陰性反應(yīng)。試驗數(shù)據(jù)表明,所設(shè)計的引物探針只對目的病毒特異,與其他檢測對象無交叉反應(yīng)(圖2)。

    圖2 FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR方法的特異性試驗

    2.3 二重FQ-PCR敏感性試驗

    按已優(yōu)化的FQ-PCR反應(yīng)條件進行檢測,發(fā)現(xiàn)pGEM-T/FMDV-T和pGEM-T/FMDV-A終濃度為 1.0×104~1.0×100拷貝 /μL,共 5 個稀釋度的質(zhì)粒;FMDV-T和FMDV-A最低檢出限均為1.0×101拷貝 /μL(表 1) 。

    2.4 二重FQ-PCR穩(wěn)定性和重復(fù)性試驗

    表1 二重FQ-PCR敏感性試驗結(jié)果

    試驗結(jié)果顯示,濃度為1.0×105、1.0×104、1.0×103拷貝/μL 3個濃度的FMDV-T/FMDV-A重組質(zhì)粒等量混合物3次試驗結(jié)果均為陽性,濃度為1.0×102拷貝/μL的FMDV-T/ FMDV-A重組質(zhì)粒等量混合物3次試驗結(jié)果均為陰性,說明建立的FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR方法具有很好的穩(wěn)定性和重復(fù)性(表2)。

    表2 二重FQ-PCR方法的重復(fù)性試驗結(jié)果

    2.5 二重FQ-PCR臨床試驗

    結(jié)果顯示:采用本研究建立的FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR檢測,10份為FMDV-T陽性,6份為FMDV-T/FMDV-A雙陽性,其余為陰性;采用RT-PCR檢測,9份為FMDV-T陽性,6份為FMDV-T/FMDV-A雙陽性;蘭州獸醫(yī)研究所的熒光定量RT-PCR試劑盒檢測,10份為FMDV-T陽性,6份為FMDV-T/FMDV-A雙陽性。結(jié)果表明,本研究建立的FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR方法比RT-PCR方法靈敏性高。該FQ-PCR方法檢測結(jié)果與和FMDV基因測序結(jié)果及蘭州獸醫(yī)研究所的熒光定量試劑盒檢測結(jié)果符合率為100%,表明建立的FMDV-T/FMDV-A二重FQ-PCR方法具有很好的臨床應(yīng)用效果。

    3 討論

    本研究主要在同一反應(yīng)管內(nèi)進行FMDV 通用型和A型的二重擴增檢測反應(yīng),同時收集代表FMDV通用型和A型的熒光信號,對擴增產(chǎn)物進行實時在線檢測,從而建立了能夠同時檢測FMDV通用型及A型二重鑒別實時熒光RT-PCR方法。實驗室試驗和田間試驗均證實,該方法是一種快速、簡便、高效的檢測平臺。目前,我國主要流行O型和A型FMD,而AsiaⅠ型自2009年之后未見臨床病例報道[4],并且國家已退出AsiaⅠ型FMD的強制免疫,因此主要針對FMDV的O型和A型進行病原鑒別診斷。本研究建立的二重FMDV通用型和A型檢測方法為國內(nèi)流行FMDV血清型的鑒別診斷提供了方便、快速、特異、靈敏的檢測方法。

    多重實時熒光 RT-PCR 可同時進行FMDV不同亞型的鑒別檢測[12],因而大大縮短了檢測周期。在臨床混合感染前期,病毒主要以潛伏感染形式存在,病毒量很低。而本研究建立的二重FQ-PCR檢測FMDV-T和FMDV-A的最低檢出限為1.0×101拷貝/μL,因此也能準確檢測區(qū)分出來。

    口蹄疫是豬、牛、羊等家養(yǎng)及野生偶蹄動物共患的傳染病,與多種病毒病的臨床癥狀類似,但本研究因受病原毒株限制,僅與SVDV、VSV、PRRSV、PEDV、PCV2、PRV、PPV等7種病原進行了特異性試驗,未與豬塞內(nèi)卡病、水泡性口炎、豬水泡疹、羊口瘡、羊痘等與口蹄疫癥狀類似的疫病病原同時進行檢測驗證,因此仍需進一步研究完善。

    4 結(jié)論

    本研究成功建立了FMDV通用型和A型二重鑒別實時熒光 RT-PCR 檢測方法。檢測表明,該方法重復(fù)性好、敏感性高、特異性強,最低檢測模板濃度為10 拷貝/μL,可用于FMDV的快速檢測及分型鑒定。本研究為FMDV的早期快速檢測、型鑒別診斷提供了特異、敏感、快速的新方法,具有一定的臨床應(yīng)用價值。

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