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    犬細(xì)小病毒可視化LAMP檢測(cè)方法的建立

    2018-10-25 13:02:02廖翔何景龍李洪波
    生物技術(shù)通訊 2018年5期
    關(guān)鍵詞:細(xì)小質(zhì)粒可視化

    廖翔,何景龍,李洪波

    北京美萊博醫(yī)學(xué)科技有限公司,北京 100071

    犬細(xì)小病毒(Canine parvovirus,CPV)屬于細(xì)小病毒科,于1978年分離自患腸炎的犬類(lèi)糞便。CPV感染會(huì)引起犬細(xì)小病毒腸炎,是全球范圍流行的犬類(lèi)烈性傳染病之一[1],同時(shí)也是包括大熊貓?jiān)趦?nèi)的珍稀瀕危動(dòng)物的主要烈性傳染病。其病程短、傳染性強(qiáng)、死亡率高,對(duì)犬類(lèi)危害很大,需要有快速準(zhǔn)確的檢測(cè)方法,以便及時(shí)治療。

    目前CPV的快速檢測(cè)方法主要有基于血清蛋白的免疫性檢測(cè)[2]和針對(duì)病毒DNA的基因檢測(cè)?;驒z測(cè)包括常規(guī)PCR擴(kuò)增和熒光定量PCR檢測(cè)[3],以及近幾年發(fā)展較快的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(loopmediated isothermal amplification,LAMP)[4-7]。

    LAMP[8]是Notomi等發(fā)明的一種恒溫?cái)U(kuò)增方法,其特點(diǎn)是降低了對(duì)儀器的要求,只需要一個(gè)水浴鍋等恒溫設(shè)施即可反應(yīng)。然而,常規(guī)LAMP仍需要專門(mén)的檢測(cè)設(shè)備,不便現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)。

    根據(jù)DNA聚合酶在擴(kuò)增過(guò)程中每延伸一個(gè)堿基會(huì)釋放一個(gè)氫離子,從而使溶液pH值逐漸降低的原理,我們建立了一種pH敏感指示劑中性紅檢測(cè)犬細(xì)小病毒的LAMP方法。本方法只需恒溫?cái)U(kuò)增儀器,即恒溫水浴或金屬浴,不需要檢測(cè)儀器,40 min完成LAMP,陰性反應(yīng)保持初始淡黃色狀態(tài),陽(yáng)性擴(kuò)增反應(yīng)液則會(huì)變?yōu)樽霞t色,肉眼即可分辨陽(yáng)性擴(kuò)增和陰性反應(yīng),非常方便現(xiàn)場(chǎng)快速病毒檢測(cè)。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    犬細(xì)小病毒DNA樣品由軍事醫(yī)學(xué)研究院軍事獸醫(yī)研究所惠贈(zèng);金黃色葡萄球菌、宋內(nèi)志賀菌、坂崎腸桿菌、單增李斯特菌、大腸桿菌的DNA由浙江省質(zhì)量檢測(cè)科學(xué)研究院惠贈(zèng);標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒pUC-CPV由上海捷瑞公司合成;1×RM LAMP(含Eva Green)反應(yīng)液、可視化1×RM LAMP(含中性紅)反應(yīng)液和2×PCR TaqMix由北京美萊博醫(yī)學(xué)科技有限公司生產(chǎn);DL2000 DNA marker為廣州東盛生物科技有限公司產(chǎn)品;Bst2.0 DNA聚合酶購(gòu)自NEB公司;熒光定量PCR儀為Roche公司的LightCycler 480II。

    1.2 引物設(shè)計(jì)和合成

    采用Primer Premier 5.0程序設(shè)計(jì)LAMP引物CPV-F3(5′-TGGGATAAAGAATTTGATACTGA-3′)、CPV-B3(5′-TGAGAGGCTCTTAGTTTAGCTTT-3′)、CPV-FIP(5′-CGCAACTTTTACAAATAATTGACCATT AAAACCAAGACTTCATGTAAATGC-3′)、CPV-BIP(5′-AACAAATGAATATGATCCTGATGCAACCTTTCC ACCAAAAATCTGAGT-3′)、CPV-FLP(5′-GGACAAT TATTTTGACAAACAAATGG-3′)、CPV-BLP(5′-TCT GCTAATATGTCAAGAATTGTAAC-3′),由上海捷瑞公司合成。

    國(guó)標(biāo)犬細(xì)小病毒病診斷技術(shù)[9]上游引物為CPVF(5′-GAATCTGCTACTCAGCCACCAAC-3′),下游引物為 CPVR(5′-GTGCACTATAACCAACCTCAGC-3′),由北京天一輝遠(yuǎn)生物科技有限公司合成。

    用純水將所有引物溶解為100 μmol/L濃度的母液,然后配制LAMP用引物混合物CPV-PM,含 CPV-FIP、CPV-BIP 各 32 μmol/L,CPV-FLP、CPV-BLP、CPV-F3和 CPV-B3各 4 μmol/L。每20 μL LAMP 反應(yīng)體系加入1 μL CPV-PM。國(guó)標(biāo)引物根據(jù)國(guó)標(biāo)要求配制。

    1.3 標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒的制備

    捷瑞公司合成并提供的pUC-CPV質(zhì)粒為5 μg干粉,用50 μL純水溶解,濃度為100 ng/μL。質(zhì)粒大小為3200 bp,其相對(duì)分子質(zhì)量計(jì)算為3200×660=2.1×106。根據(jù)公式[質(zhì)粒拷貝數(shù)=(質(zhì)量濃度÷分子量)×6.02×1023]計(jì)算拷貝數(shù),將質(zhì)粒稀釋至1×103、1×102、1×101拷貝/μL作為擴(kuò)增反應(yīng)的陽(yáng)性對(duì)照標(biāo)準(zhǔn)品。

    1.4 實(shí)時(shí)熒光定量LAMP

    每 17 μL 1×RM LAMP 反應(yīng)液中加入 1 μLBst2.0 DNA聚合酶、1 μL CPV-PM、1 μL pUC-CPV標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒,混勻后加入384孔板,蓋上透明封口膜,置LightCycler 480II中進(jìn)行LAMP反應(yīng)和高分辨熔解曲線(HRM)分析。檢測(cè)模式為SYBR Green I/HRM Dye,LAMP條件為65℃恒溫反應(yīng)60 min,每20 s檢測(cè)1次熒光值;擴(kuò)增后直接進(jìn)行HRM分析,溫度范圍60~95℃,分辨率為每攝氏度讀取熒光5次。

    1.5 可視化LAMP檢測(cè)方法

    每17 μL可視化LAMP 1×RM反應(yīng)液中加入1 μLBst2.0 DNA 聚合酶、1 μL CPV-PM、1 μL pUC-CPV標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒,混勻后于65℃恒溫烘箱中反應(yīng)40 min,肉眼觀察擴(kuò)增結(jié)果,拍照記錄。

    1.6 病毒樣本檢測(cè)和測(cè)序驗(yàn)證

    分別用可視化LAMP和實(shí)時(shí)熒光定量LAMP檢測(cè)犬細(xì)小病毒DNA樣品。對(duì)于檢測(cè)為陽(yáng)性的樣品,用引物CPV-F3和CPV-B3進(jìn)行普通PCR擴(kuò)增,委托測(cè)序公司對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證。

    1.7 國(guó)標(biāo)方法檢測(cè)病毒樣本

    用國(guó)標(biāo)犬細(xì)小病毒檢測(cè)技術(shù)[9]檢測(cè)犬細(xì)小病毒的DNA,PCR完成后進(jìn)行電泳,并拍照記錄。

    1.8 可視化LAMP檢測(cè)方法特異性試驗(yàn)

    用本研究建立的可視化LAMP方法對(duì)犬細(xì)小病毒陽(yáng)性DNA及金黃色葡萄球菌、宋內(nèi)志賀菌、坂崎腸桿菌、單增李斯特菌、大腸桿菌的DNA進(jìn)行特異性檢測(cè),并將反應(yīng)結(jié)果拍照記錄。

    報(bào)警裝置采用模塊化設(shè)計(jì),包括聲光報(bào)警單元、電量檢測(cè)模塊、充電保護(hù)模塊、RF433射頻模塊、GPRS通信模塊、北斗/GPS定位模塊、電池模塊和MSP430單片機(jī)模塊。聲光報(bào)警單元主要用于本地報(bào)警和狀態(tài)指示;電量檢測(cè)模塊對(duì)報(bào)警裝置的電池電量進(jìn)行檢測(cè);充電保護(hù)模塊用于為電池充電,具有過(guò)充保護(hù);RF433射頻模塊用于檢測(cè)裝置與報(bào)警裝置的無(wú)線通信;GPRS通信模塊用于報(bào)警裝置與后臺(tái)服務(wù)器的數(shù)據(jù)通信;北斗/GPS定位模塊用于獲取報(bào)警裝置的位置數(shù)據(jù);電池模塊用于為報(bào)警裝置提供電能。報(bào)警裝置安裝有鋰電池,同時(shí)能夠進(jìn)行外部供電,其電池能夠保證報(bào)警裝置斷電后工作6 h。

    2 結(jié)果

    2.1 犬細(xì)小病毒檢測(cè)靶序列的確定

    通過(guò)77個(gè)不同犬細(xì)小病毒全基因組的數(shù)據(jù)比對(duì),從中找出一段433 bp的高度保守序列:

    2.2 實(shí)時(shí)熒光定量LAMP的靈敏度

    為避免LAMP后進(jìn)行電泳容易導(dǎo)致的氣溶膠污染問(wèn)題及離心看沉淀容易導(dǎo)致的誤判問(wèn)題,特采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀配合熒光染料Eva Green進(jìn)行實(shí)時(shí)定量LAMP和高分辨率熔解曲線分析。以1/10梯度稀釋的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品和水作為模板,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量犬細(xì)小病毒LAMP檢測(cè)。

    用1×103、1×102、1×101拷貝/μL模板和空白對(duì)照進(jìn)行擴(kuò)增。從圖1可見(jiàn),3個(gè)加水的空白對(duì)照孔無(wú)擴(kuò)增信號(hào),1×103~1×101拷貝/μL 模板進(jìn)入對(duì)數(shù)期的時(shí)間在15 min以內(nèi),而且反應(yīng)時(shí)間隨模板濃度降低依次遞增,符合模板濃度與擴(kuò)增速度的對(duì)應(yīng)規(guī)律。犬細(xì)小病毒LAMP檢測(cè)靈敏度低至101拷貝/μL的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品。圖2的HRM分析結(jié)果表明 LAMP 反應(yīng)的特異性很好,1×103~1×101拷貝/μL模板擴(kuò)增產(chǎn)物的Tm值都在同一個(gè)溫度區(qū)間,說(shuō)明產(chǎn)物完全一致。

    圖1 實(shí)時(shí)熒光定量LAMP檢測(cè)犬細(xì)小病毒質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的擴(kuò)增曲線

    2.3 可視化LAMP擴(kuò)增的靈敏度

    用pH敏感指示劑中性紅檢測(cè)LAMP,中性紅在擴(kuò)增反應(yīng)前pH8.0左右的反應(yīng)液中呈淡黃色,而LAMP后反應(yīng)液的pH值會(huì)下降到7.6以下,此時(shí)中性紅變?yōu)榈霞t色。

    用1×103、1×102、1×101拷貝/μL模板和空白對(duì)照進(jìn)行擴(kuò)增。從圖3可見(jiàn),反應(yīng)40 min時(shí),3個(gè)濃度模板的擴(kuò)增反應(yīng)液均變成了淡紫紅色,而空白對(duì)照反應(yīng)仍為淡黃色??梢暬疞AMP擴(kuò)增靈敏度和實(shí)時(shí)熒光定量LAMP擴(kuò)增靈敏度相同。

    圖2 實(shí)時(shí)熒光定量LAMP檢測(cè)犬細(xì)小病毒質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的熔解曲線

    2.4 可視化LAMP檢測(cè)方法的特異性

    因犬細(xì)小病毒為DNA病毒,與RNA病毒的反應(yīng)體系差異較大,故特異性實(shí)驗(yàn)選用了金黃色葡萄球菌、宋內(nèi)志賀菌、坂崎腸桿菌、單增李斯特菌、大腸桿菌的DNA作為對(duì)照樣品。圖4可見(jiàn),只有犬細(xì)小病毒發(fā)生了顏色變化,而其他DNA及水沒(méi)有擴(kuò)增信號(hào),說(shuō)明本檢測(cè)方法特異性強(qiáng)。

    2.5 病毒樣本檢測(cè)和測(cè)序驗(yàn)證

    用實(shí)時(shí)熒光定量LAMP和建立的可視化LAMP法檢測(cè)了50份疑似犬細(xì)小病毒DNA樣品。熒光檢測(cè)染料擴(kuò)增結(jié)果(圖5)表明其中35份樣品為犬細(xì)小病毒陽(yáng)性,與圖6可視化檢測(cè)結(jié)果一致;HRM分析結(jié)果(圖7)表明陽(yáng)性樣品的擴(kuò)增產(chǎn)物Tm值一致,且和圖2質(zhì)粒擴(kuò)增Tm值一致,說(shuō)明反應(yīng)產(chǎn)物相同。

    圖3 可視化LAMP檢測(cè)犬細(xì)小病毒標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒

    圖8 為用國(guó)標(biāo)法檢測(cè)50個(gè)樣品DNA的電泳圖,擴(kuò)增長(zhǎng)度為609 bp,檢測(cè)結(jié)果同可視化檢測(cè)與熒光檢測(cè)完全一致。用引物CPV-F3和CPVB3進(jìn)行普通PCR擴(kuò)增,委托北京天一輝遠(yuǎn)生物科技有限公司測(cè)序(圖9),并對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行比對(duì)驗(yàn)證,結(jié)果表明陽(yáng)性樣品含有犬細(xì)小病毒DNA序列,且15個(gè)LAMP檢測(cè)陰性樣品不含犬細(xì)小病毒序列,表明本方法和國(guó)標(biāo)檢測(cè)的符合度為100% 。

    圖4 可視化LAMP檢測(cè)犬細(xì)小病毒方法特異性試驗(yàn)

    圖5 實(shí)時(shí)熒光定量LAMP檢測(cè)疑似犬細(xì)小病毒擴(kuò)增曲線

    圖6 疑似犬細(xì)小病毒DNA的可視化LAMP檢測(cè)

    圖7 疑似犬細(xì)小病毒樣品DNA的實(shí)時(shí)熒光定量LAMP熔解曲線

    圖8 疑似犬細(xì)小病毒樣品DNA的國(guó)標(biāo)檢測(cè)結(jié)果

    圖9 犬細(xì)小病毒可視化LAMP檢測(cè)陽(yáng)性DNA樣品PCR產(chǎn)物測(cè)序圖譜

    3 討論

    我們建立了一種高效、準(zhǔn)確且方便的犬細(xì)小病毒檢測(cè)方法。該方法不需要昂貴復(fù)雜的儀器,一個(gè)金屬浴或水浴鍋即可進(jìn)行反應(yīng);判斷結(jié)果不需要任何儀器,肉眼即可判斷陰性和陽(yáng)性樣品。

    pH值在擴(kuò)增前后的變化是本可視化檢測(cè)的基礎(chǔ),因此本方法采用的擴(kuò)增體系是非緩沖體系,而非緩沖體系對(duì)引物的要求較高。我們共設(shè)計(jì)了6套擴(kuò)增引物,結(jié)果3套沒(méi)有擴(kuò)增信號(hào),2套引物的擴(kuò)增效率低。擴(kuò)增超過(guò)80 min時(shí),陰性對(duì)照也會(huì)出現(xiàn)顏色變化而影響對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的判斷,所以廣泛篩選引物是實(shí)驗(yàn)成功與否的關(guān)鍵。我們同時(shí)應(yīng)用了溴百里香酚藍(lán)和甲酚紅作為pH指示劑,均因顏色變化不明顯而放棄。

    我們建立的方法操作簡(jiǎn)單,無(wú)須專業(yè)訓(xùn)練即可使用;擴(kuò)增后無(wú)須開(kāi)蓋,肉眼便可判定檢測(cè)結(jié)果,從而避免了產(chǎn)物污染的問(wèn)題。本方法可用于虎與大熊貓的野外或基層犬細(xì)小病毒檢測(cè),也可以用于寵物貓與狗的家庭化犬細(xì)小病毒檢測(cè)。用本方法可以開(kāi)發(fā)多種細(xì)菌和病毒的檢測(cè)試劑盒,可有效提高對(duì)傳染病的防控能力。

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