湯小朋 徐 榮 李成良 彭 鵬 禹琪芳 方熱軍
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖南畜禽安全生產(chǎn)協(xié)同創(chuàng)新中心,長沙410128)
磷(P)是生物系統(tǒng)的重要組成部分,涉及到各種生理過程,包括能量代謝、細胞信號、核苷酸和磷脂生物合成以及牙齒、骨骼形成[1-2]。研究已證實鈉磷轉(zhuǎn)運載體蛋白Ⅱb(type Ⅱb sodium-phosphate cotransporter, NaPi-Ⅱb)是介導(dǎo)腸道磷主動轉(zhuǎn)運的主要途徑[3-4]。NaPi-Ⅱb受許多因素的調(diào)節(jié),表皮生長因子(epidermal growth factor,EGF)是調(diào)節(jié)其表達的重要因素之一[5-8]。EGF是一種重要的生長因子,廣泛存在于乳液、唾液、尿液、腸液、血液、羊水等體液中,對細胞生存、增殖與分化、遷移、凋亡等具有重要作用[9-11]。前人在人Caco2細胞及豬小腸上皮細胞(IPEC-J2)中的研究表明,EGF可抑制細胞NaPi-Ⅱb的表達,說明在正常培養(yǎng)條件下,EGF可能通過其他途徑調(diào)節(jié)細胞對磷的吸收。理論上講,在EGF對腸道屏障功能的修復(fù)過程中,必然伴隨大量DNA、RNA和蛋白質(zhì)的合成,其前提需要經(jīng)腸道吸收更多的磷,此過程中所需更多的磷是通過何種途徑滿足機體需要還未見報道。因此,本研究通過細胞試驗與動物試驗相結(jié)合的方法,研究EGF對脂多糖(LPS)刺激的應(yīng)激狀態(tài)下斷奶仔豬小腸磷吸收的影響,為進一步詮釋EGF對磷的吸收提供新的認識。
1.1.1 主要試劑
EGF購自Peprotech公司;LPS、Tris、十二烷基磺酸鈉(SDS)、過硫酸銨(APS)、四甲基乙二胺(TEMED)、吐溫-20(Tween-20)、丙烯酰胺、甲叉雙丙烯酰胺、麗春紅購自Sigma公司;胎牛血清(FBS)、胰蛋白酶、青鏈雙抗購自Gibco公司;DMEM/F12(HyClon)培養(yǎng)基購自GE公司;CCK-8試劑盒、BCA蛋白試劑盒、磷酸緩沖液(PBS)、RIPA蛋白裂解液購自索萊寶公司;Trizol試劑購自Invitrogen公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、UltraSYBR Mixture及DM 2000 Plus DNA Marker均購自北京康維世紀(jì)公司;Super ECL Plus超敏發(fā)光液購自Thermo公司;一抗NaPi-Ⅱb(貨號:21773-1-AP)、一抗β-肌動蛋白(β-actin)(貨號:60008-1-Ig)、二抗(Goat Anti-Rabbit IgG/HRP)購自Proteintech公司。
1.1.2 細胞培養(yǎng)及分組
IPEC-J2細胞由中國科學(xué)院亞熱帶農(nóng)業(yè)生態(tài)研究所提供。細胞經(jīng)活化后,培養(yǎng)在含10% FBS、1%青鏈雙抗的培養(yǎng)基中,置于37 ℃,含有5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。細胞生長至80%~90%融合后,用0.25%胰蛋白酶消化細胞,顯微鏡下計數(shù),收集的細胞用于細胞傳代或進行后續(xù)試驗。試驗設(shè)4個組:對照組(0 ng/mL EGF,0 μg/mL LPS)、EGF組(100 ng/ mL EGF,0 μg/mL LPS)、LPS組(0 ng/mL EGF,1.0 μg/mL LPS)、EGF+LPS組(100 ng/mL EGF,1.0 μg/mL LPS),每組3個重復(fù)。EGF、LPS劑量的選擇及培養(yǎng)時間的確定參照文獻[11]。將細胞以1×105個/孔接種于6孔板中,每孔加入2 mL含10% FBS、1%青鏈雙抗的培養(yǎng)基,培養(yǎng)24 h后,棄去培養(yǎng)基,用37 ℃ PBS潤洗2遍,然后分別加入相應(yīng)劑量的EGF與LPS,加入培養(yǎng)基至2 mL,培養(yǎng)24 h。
1.1.3 EGF對LPS刺激的IPEC-J2細胞NaPi-ⅡbmRNA表達的測定
采用實時熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測細胞NaPi-ⅡbmRNA的表達。細胞培養(yǎng)結(jié)束后,用PBS洗滌細胞2次,每孔加入Trizol 1 mL,按照Trizol試劑說明書提取總RNA,并測定總RNA濃度及1%瓊脂凝膠檢測RNA完整性。以細胞總RNA為模板,用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄為cDNA,具體步驟參照試劑盒說明書。定量PCR反應(yīng)按照熒光定量PCR檢測試劑盒操作。所用引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。NaPi-Ⅱb引物序列為F:GCCCGAGCTTAAGAACACA,R:CATGACACCAGCACCATCGTT;β-actin引物序列為F:CATCCTGCGTCTGGACCTGG,R:TAATGTCACGCACGATTTCC。實時熒光定量PCR程序參照Tang[11]介紹的方法進行。以β-actin基因為內(nèi)參,采用2-△△Ct法進行目的基因相對表達量計算。
1.1.4 EGF對LPS刺激的IPEC-J2細胞NaPi-Ⅱb蛋白表達的測定
采用Western blot檢測細胞NaPi-Ⅱb蛋白的表達。細胞培養(yǎng)結(jié)束后,棄去培養(yǎng)基,PBS洗滌細胞1次,加入250 μL RIPA細胞裂解液(含1 mmol/L蛋白酶抑制劑),冰上裂解15 min,4 ℃,12 000 r/min離心3~5 min,取上清分裝后置于-80 ℃冰箱保存,待測。蛋白濃度測定采用南京建成的BCA蛋白濃度檢測試劑盒測定,具體參照說明書步驟進行。Western blot程序參照Tang等[11]介紹的方法進行。
1.2.1 試驗材料
EGF由長沙某公司提供,EGF含量為4 000 mg/kg;LPS(大腸桿菌血清型O55∶B5)、石蠟、中性樹膠、伊紅購自Sigma公司;RT-PCR所需試劑同1.1.3。
1.2.2 試驗動物及分組
選取24頭體重接近、健康狀況良好的21日齡“長白×大白”二元雜交斷奶閹公豬[平均體重(5.76±0.38) kg],隨機分為4個組:對照組(基礎(chǔ)飼糧)、EGF組(基礎(chǔ)飼糧+2 mg/kg EGF)、LPS組(基礎(chǔ)飼糧+腹腔注射100 μg/kg BW LPS)、EGF+LPS組(基礎(chǔ)飼糧+2 mg/kg EGF+腹腔注射100 μg/kg BW LPS),每組6個重復(fù),每個重復(fù)1頭豬,試驗期14 d?;A(chǔ)飼糧配制參照NRC(2012)豬的營養(yǎng)需要,其組成及營養(yǎng)水平見表1。在試驗的第8天、第15天清晨,給LPS組和EGF+LPS組仔豬注射100 μg/kg BW的LPS[12],對照組和EGF組注射等量的生理鹽水。
表1 基礎(chǔ)飼糧組成及營養(yǎng)水平(飼喂基礎(chǔ))
1)預(yù)混料為每千克飼糧提供 The premix provided the following per kg of the diet:VA 10 000 IU,VD31 500 IU,VE 60 mg,VK33 mg,VB11.8 mg,VB120.024 mg,核黃素riboflavin 6 mg,葉酸 folic acid 0.3 mg,生物素 biotin 4.5 mg,煙酸 nicotinic acid 24 mg,D-泛酸D-pantothenic acid 15 mg,膽堿 choline 1 000 mg,Zn 125 mg,Fe 120 mg,Cu 150 mg,I 0.3 mg,Se 0.3 mg。
2)粗蛋白質(zhì)、總磷、鈣為實測值,其余為計算值。CP, total P, Ca were measured values, while others were calculated values.
1.2.3 飼養(yǎng)管理
本試驗于2017年11月12日至2017年11月29日在益陽兆豐農(nóng)牧科技有限公司豬舍進行。試豬單欄飼養(yǎng),試驗期間自由采食與飲水。每天08:00、12:00、16:00、20:00投喂飼糧,第2天投喂前收集剩余飼糧。每天中午通風(fēng)15 min左右,豬舍溫度控制在25~28 ℃,相對濕度50%~70%。
1.2.4 樣品采集
血樣:試豬在試驗的第15天,注射LPS 6 h后,采集前腔靜脈血10 mL。血液樣品在4 ℃,3 500 r/min離心10 min,收集血清,-20 ℃保存。
黏膜樣:試豬在試驗的第15天,注射LPS 6 h后,全部仔豬注射50 mg/kg BW的戊巴比妥鈉,待完全麻醉后屠宰,屠宰后迅速從胸骨到恥骨切線打開腹腔,取出胃腸道,于空腸、回腸處分別采集約5 cm腸段,用4 ℃預(yù)冷1×PBS輕輕漂洗,于冰面上刮取黏膜,分裝2管,液氮速凍后于-80 ℃保存。
1.2.5 EGF對LPS刺激的斷奶仔豬血清鈣、磷含量的測定
血清鈣含量的測定采用南京建成生物工程研究所生產(chǎn)的鈣測試盒(微板法,貨號C004-2)測定。血清磷含量的測定采用南京建成生物工程研究所生產(chǎn)的磷測試盒(磷鉬酸法,貨號C006)。測定步驟參照相應(yīng)的試劑盒說明書進行。
1.2.6 EGF對LPS刺激的斷奶仔豬血清堿性磷酸酶(ALP)活性的測定
血清ALP活性采用邁瑞全自動生化分析儀(BS-200,深圳邁瑞醫(yī)療電子股份有限公司)檢測。試劑盒購自深圳邁瑞公司,測定步驟參照說明書進行。
1.2.7 腸黏膜NaPi-ⅡbmRNA表達的測定
采用qRT-PCR法測定空腸、回腸腸黏膜NaPi-ⅡbmRNA的表達情況。具體操作同1.1.3。
試驗結(jié)果以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”(means±SD)表示,采用SPSS 21.0統(tǒng)計軟件的一般線性模型(GLM)進行兩因素方差分析,模型主效應(yīng)包括EGF處理、LPS處理以及兩者的互作,one-way ANOVA程序進行單因素方差分析,組間差異采用Duncan氏法進行多重比較,以P<0.05作為差異顯著性判斷標(biāo)準(zhǔn)。
由圖1可知,與對照組相比,EGF組細胞NaPi-ⅡbmRNA表達顯著下降(P<0.05),EGF+LPS組細胞NaPi-ⅡbmRNA表達顯著提高(P<0.05)。與EGF組相比,EGF+LPS組細胞NaPi-ⅡbmRNA表達顯著提高(P<0.05)。與LPS組相比,EGF+LPS組細胞NaPi-ⅡbmRNA表達顯著提高(P<0.05)。EGF與LPS免疫應(yīng)激的互作效應(yīng)對NaPi-ⅡbmRNA表達影響顯著(P<0.05)。結(jié)果表明,EGF抑制細胞NaPi-ⅡbmRNA的表達,但在應(yīng)激狀態(tài)下EGF促進細胞NaPi-ⅡbmRNA的表達。
不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05),相同字母表示差異不顯著(P>0.05),圖2、圖3同。
Values with different small letters mean significant difference (P<0.05), while with the same letter mean no significant difference (P>0.05). The same as Fig.2 and Fig.3.
圖1EGF對LPS刺激的IPEC-J2細胞NaPi-ⅡbmRNA表達的影響
Fig.1 Effects of EGF onNaPi-ⅡbmRNA expression in IPEC-J2 cells challenged by LPS
由圖2可知,與對照組相比,EGF組細胞NaPi-Ⅱb蛋白表達顯著下降(P<0.05),EGF+LPS組細胞NaPi-Ⅱb蛋白表達顯著提高(P<0.05)。與EGF組相比,EGF+LPS組細胞NaPi-Ⅱb蛋白表達顯著提高(P<0.05)。與LPS組相比,EGF+LPS組細胞NaPi-Ⅱb蛋白表達顯著提高(P<0.05)。EGF與LPS免疫應(yīng)激的互作效應(yīng)對NaPi-Ⅱb蛋白表達影響顯著(P<0.05)。Western blot結(jié)果同樣表明,EGF抑制細胞NaPi-Ⅱb蛋白表達,但在應(yīng)激狀態(tài)下EGF促進細胞NaPi-Ⅱb蛋白的表達。
由表2可知,各組間血清鈣含量無顯著差異(P>0.05);EGF與LPS免疫應(yīng)激互作效應(yīng)對血清鈣含量無顯著影響(P>0.05)。LPS組血清磷含量顯著高于對照組、EGF組、EGF+LPS組(P<0.05),且EGF與LPS免疫應(yīng)激互作效應(yīng)對血清磷含量影響顯著(P<0.05);EGF組血清ALP活性顯著高于LPS組(P<0.05),與對照組、EGF+LPS組差異不顯著(P>0.05),EGF與LPS免疫應(yīng)激互作效應(yīng)對血清ALP活性無顯著影響(P>0.05)。
由圖3可知,與對照組相比,EGF組空腸(圖3-A)、回腸(圖3-B)黏膜NaPi-ⅡbmRNA的表達均顯著降低(P<0.05),EGF+LPS組空腸(圖3-A)、回腸(圖3-B)黏膜NaPi-ⅡbmRNA的表達均顯著增加(P<0.05)。與LPS組相比,EGF組空腸(圖3-A)、回腸(圖3-B)黏膜NaPi-ⅡbmRNA的表達均顯著降低(P<0.05),EGF+LPS組空腸(圖3-A)、回腸(圖3-B)黏膜NaPi-ⅡbmRNA的表達均顯著增加(P<0.05)。與EGF組相比,EGF+LPS組空腸(圖3-A)、回腸(圖3-B)黏膜NaPi-ⅡbmRNA的表達均顯著增加(P<0.05)。EGF與LPS免疫應(yīng)激互作效應(yīng)對空腸與回腸NaPi-ⅡbmRNA的表達影響顯著(P<0.05)。動物試驗結(jié)果表明,EGF抑制小腸黏膜NaPi-ⅡbmRNA表達,但在應(yīng)激狀態(tài)下促進小腸黏膜NaPi-ⅡbmRNA表達。
磷是動物必需的礦物質(zhì)元素之一,在動物生長發(fā)育、骨骼形成、能量代謝、核酸合成、細胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)以及維持血液酸堿平衡中起著重要作用[1,3,13]。血清堿性磷酸酶是反映動物機體鈣磷代謝狀況的血清生化指標(biāo),當(dāng)機體缺乏鈣磷時,堿性磷酸酶釋放增加。本研究結(jié)果表明,EGF對LPS刺激的仔豬血清鈣含量無顯著影響,但對血清磷含量影響顯著。EGF組血清ALP活性顯著高于LPS組,但飼糧EGF與LPS免疫應(yīng)激互作效應(yīng)對血清堿性磷酸酶活性無顯著影響。LPS是革蘭氏陰性菌細胞壁破裂后釋放的毒性物質(zhì),是導(dǎo)致急性腎損傷的主要因素之一[14]。本研究中LPS組血清磷含量顯著高于其他組,可能是LPS刺激導(dǎo)致了仔豬腎臟功能損傷,影響腎臟對磷的重吸收,從而導(dǎo)致血清磷含量異常升高。
A: Western blot電泳圖;B:NaPi-Ⅱb蛋白表達量。
A: Western blot electrophoretogram; B: NaPi-Ⅱb protein expression level.
圖2 EGF對LPS誘導(dǎo)的IPEC-J2細胞NaPi-Ⅱb蛋白表達影響
同行數(shù)據(jù)肩標(biāo)不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05),相同字母或無字母表示差異不顯著(P>0.05)。
Values with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), while with the same or no letter superscripts mean no significant difference (P>0.05).
A:空腸NaPi-ⅡbmRNA相對表達量;B:回腸NaPi-ⅡbmRNA相對表達量。
A:NaPi-ⅡbmRNA relative expression level in the jejunum; B:NaPi-ⅡbmRNA relative expression level in the ileum.
圖3EGF對LPS刺激的斷奶仔豬小腸黏膜NaPi-ⅡbmRNA表達影響
Fig.3 Effects of EGF onNaPi-ⅡbmRNA expression in the small intestinal mucosa of weaned piglets challenged by LPS
腸道磷的吸收主要有被動擴散和主動吸收2種方式,NaPi-Ⅱb是調(diào)節(jié)腸道磷主動轉(zhuǎn)運的主要載體[3-5],介導(dǎo)機體70%~90%磷的主動轉(zhuǎn)運[15-16]。NaPi-Ⅱb的調(diào)控受許多因素的影響,如磷[1]、維生素D3[17]、雌二醇[2]、神經(jīng)肽Y[4]、降鈣素基因相關(guān)肽、EGF[5-8]等。EGF是一種含有53個氨基酸殘基的小肽,其生物學(xué)功能的發(fā)揮是通過與其表皮生長因子受體(EGFR)結(jié)合后實現(xiàn)的[9]。EGFR廣泛存在于小腸刷狀緣頂端及基底側(cè),當(dāng)動物攝取的EGF遞送到小腸黏膜后與EGFR結(jié)合,形成二聚物,激活酪氨酸激酶(RTK)活性,促進RTK自我磷酸化,隨后激活Ras/絲裂原活化蛋白激酶(Ras/MAPK)、磷脂酰肌醇3激酶/蛋白激酶B(PI3K/AKT)、磷脂酶C-γ/蛋白激酶C(PLC-γ/PKC)等一系列的信號通路,對細胞生存、增殖與分化、遷移、凋亡等具有重要作用[9-11,18]。前人在人Caco2細胞中的研究表明,EGF通過修飾c-myb蛋白,經(jīng)蛋白激酶C/蛋白激酶A(PKC/PKA)和MAPK信號通路調(diào)節(jié)下游啟動子功能,從而抑制細胞NaPi-Ⅱb的轉(zhuǎn)錄活性,降低其表達量[5-6]。本課題組在豬IPEC-J2細胞中同樣發(fā)現(xiàn)EGF抑制了細胞中NaPi-Ⅱb的表達,進一步研究發(fā)現(xiàn)EGF作用NaPi-Ⅱb啟動子區(qū)域位于-1 092~-1 085 bp區(qū)域(5′-TCCAGTTG-3′),且EGF通過激活EGFR、PKA、PKC、P38、細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(ERK)、氨基末端激酶(JNK)等信號分子來下調(diào)IPEC-J2細胞中NaPi-Ⅱb的表達[7-8]。Tang等[11]研究表明,一定濃度的EGF可促進IPEC-J2細胞增殖,而細胞增殖過程中需要大量的磷用來合成RNA及DNA,說明EGF可促進磷的吸收,但不是通過NaPi-Ⅱb介導(dǎo)的磷的主動吸收,可能存在其他途徑介導(dǎo)磷的吸收。
應(yīng)激是動物生產(chǎn)過程中的普遍現(xiàn)象,可導(dǎo)致動物腸道損傷,影響生產(chǎn)成績。LPS對小腸上皮細胞具有毒害作用,能刺激豬小腸上皮細胞分泌大量白介素(IL)-1β、IL-6、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)等促炎細胞因子,最終導(dǎo)致炎癥的發(fā)生[19-21]。Tang等[11]研究表明,LPS刺激誘導(dǎo)了細胞氧化應(yīng)激及細胞凋亡的發(fā)生,而EGF可通過緩解氧化應(yīng)激減少細胞凋亡來保護LPS刺激的腸上皮細胞損傷。理論上講,在EGF對受損腸細胞修復(fù)過程中,必然伴隨大量DNA、RNA和蛋白質(zhì)的合成,其前提需要經(jīng)腸道吸收更多的磷,此過程中EGF是否解除對NaPi-Ⅱb表達的抑制作用,從而促進磷的主動吸收,以滿足機體對磷的需要,還未見報道。因此,本研究采用細胞試驗與動物試驗相結(jié)合的方法研究EGF對應(yīng)激狀態(tài)下(LPS刺激)豬小腸磷吸收的影響,結(jié)果表明,EGF抑制IPEC-J2細胞的NaPi-ⅡbmRNA及蛋白的表達,抑制仔豬空腸與回腸黏膜NaPi-ⅡbmRNA的表達,這與Xu等[4-5]、Xing等[6]、邢廷杰等[7]研究結(jié)果一致,而EGF可促進LPS刺激的IPEC-J2細胞NaPi-ⅡbmRNA及蛋白的表達,促進LPS刺激的斷奶仔豬空腸與回腸黏膜NaPi-ⅡbmRNA的表達,說明在非應(yīng)激狀態(tài)下EGF抑制NaPi-Ⅱb介導(dǎo)的磷的主動轉(zhuǎn)運,在應(yīng)激狀態(tài)下,EGF可解除對NaPi-Ⅱb的抑制,調(diào)控NaPi-Ⅱb介導(dǎo)的磷的主動吸收,以滿足機體對磷的需要,加快腸道修復(fù)進程。前人研究表明,EGF對斷奶仔豬的生長及腸道發(fā)育具有促進作用[22-23],說明EGF是促進磷吸收,但不是通過NaPi-Ⅱb介導(dǎo)的磷的主動吸收。機體磷穩(wěn)態(tài)的維持是通過腸道磷吸收與腎臟磷重吸收實現(xiàn)的[24]。腸道磷吸收有被動擴散和主動轉(zhuǎn)運,除了NaPi-Ⅱb介導(dǎo)的主動轉(zhuǎn)運,Ⅲ型鈉離子依賴轉(zhuǎn)運載體蛋白(type Ⅲ transporters PiT1 and PiT2)也能介導(dǎo)部分磷的主動吸收[25],腎臟重吸收主要由NaPi-Ⅱa與NaPi-Ⅱc 2種蛋白介導(dǎo),當(dāng)腸道磷吸收不足時,腎臟磷重吸收加強,從而滿足機體磷的需要[26]。因此,本研究中EGF可能通過增強腸道磷的被動擴散吸收,或通過增強PiT1和PiT2介導(dǎo)的磷主動轉(zhuǎn)運,或通過加強腎臟重吸收滿足機體磷的需要,但具體通過何種途徑調(diào)節(jié)磷的吸收還需進一步的研究。應(yīng)激條件下EGF如何解除對NaPi-Ⅱb的抑制,從而介導(dǎo)磷的主動轉(zhuǎn)運以滿足機體需求還需進一步的研究。
EGF對腸道NaPi-Ⅱb的表達起抑制作用,但在免疫應(yīng)激狀態(tài)下可促進NaPi-Ⅱb的表達。