銀杏bHLH91轉(zhuǎn)錄因子基因的克隆及表達(dá)分析

何昌文 朱麗 沈珊 張威威

摘 要： bHLH轉(zhuǎn)錄因子在植物的生長(zhǎng)發(fā)育、脅迫應(yīng)答和次生代謝中具有重要的調(diào)控作用。該研究通過(guò)PCR技術(shù)從銀杏（Ginkgo biloba）葉中分離得到了一個(gè)bHLH基因的cDNA序列，并將其命名為GbbHLH91。序列分析結(jié)果顯示擴(kuò)增的GbbHLH91基因cDNA序列長(zhǎng)度為1 425 bp，開(kāi)放閱讀框是1 065 bp，編碼354個(gè)氨基酸，分子量為 40.1 kDa，等電點(diǎn)為8.20。系統(tǒng)進(jìn)化分析結(jié)果顯示，從用于進(jìn)化樹(shù)構(gòu)建的bHLH蛋白質(zhì)聚類(lèi)情況來(lái)看，銀杏GbbHLH91蛋白與裸子植物油松（Pinus tabuliformis）bHLH蛋白親緣關(guān)系最近，且與被子植物無(wú)油樟（Amborella trichopoda）bHLH蛋白相似性達(dá)到60%，表明該基因在進(jìn)化過(guò)程中相對(duì)比較保守。實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析發(fā)現(xiàn)銀杏bHLH91基因在銀杏的各個(gè)組織中均有表達(dá)，其中在銀杏葉中表達(dá)量最高，在根和莖中基因的表達(dá)量次之，在銀杏雌花和果中表達(dá)量較少，在雄花中的表達(dá)水平最低；GbbHLH91基因在不同發(fā)育時(shí)期的銀杏葉片中，表達(dá)量也存在一定的差異，其中在4月中旬該基因的表達(dá)水平達(dá)到最高，而后隨著葉片的生長(zhǎng)發(fā)育，該基因的表達(dá)水平呈現(xiàn)下降趨勢(shì)。該研究結(jié)果為進(jìn)一步驗(yàn)證GbbHLH91基因的功能奠定了前期基礎(chǔ)。

關(guān)鍵詞： 銀杏， bHLH， 轉(zhuǎn)錄因子， 基因克隆， 表達(dá)分析

中圖分類(lèi)號(hào)： Q943.2

文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼： A

文章編號(hào)： 1000-3142（2018）02-0202-08

Cloning and expression analysis of a bHLH91 transcription factor gene from Ginkgo biloba

HE Changwen1， ZHU Li2， SHEN Shan2， ZHANG Weiwei2*

（ 1. Jingzhou Branch， Hubei Academy of Forestry Sciences， Jingzhou 434020， Hubei， China； 2. College of Horticulture and Gardening， Yangtze University， Jingzhou 435025， Hubei， China ）

Abstract： bHLH transcription factor plays an important role in plant growth， stress response and secondary metabolism. In order to study the function of bHLH transcription factor gene in Ginkgo biloba， we isolated a bHLH gene from G. biloba and carried out bioinformatics and expression analyses. In this study， a cDNA sequence of bHLH gene was isolated from G. biloba by PCR， which was designated as GbbHLH91. DNA sequencing and sequence analysis showed that the amplified GbbHLH91 gene was 1 425 bp， GbbHLH91 gene contained a complete open reading frame， and the open reading frame of GbbHLH91 was 1 065 bp， encoding 354 amino acids. The predicted GbbHLH91 protein had a molecular mass of 40.1 kDa with isoelectric point value of 8.20. Homology analysis with BLASTP and Align X indicated that the putative GbbHLH91 share a high identical with other known bHLH proteins from different plant species. Phylogenetic analysis showed that the GbbHLH91 protein was closely related to bHLH protein from Pinus tabuliformis， and was 60% identity to bHLH from Amborella trichopoda， which indicated the bHLH gene was relatively conserved during evolution. Real-time PCR assay found that GbbHLH91 gene was expressed in all tested tissues of Ginkgo biloba， while expression level in leaf was the highest， followed by root and stem， the GbbHLH91 gene was lowly expressed in female flowers and fruits of G. biloba， and the lowest in male flower. The expression level of GbbHLH91 gene in G. biloba leaves at different developmental stages was also different. The expression level of GbbHLH91 gene was the highest in mid-April， and then the expression level of the gene showed a decreasing trend with the growth and development of G. biloba leaves. These results provide a preliminary basis for further validation of the GbbHLH91 gene function.

Key words： Ginkgo biloba， bHLH， transcription factors， gene clone， express analysis

銀杏（Ginkgo biloba）是一種十分古老的珍貴樹(shù)種，享有植物界 “活化石”的美譽(yù)，銀杏用途廣泛，具有重要的觀賞、經(jīng)濟(jì)和藥用等價(jià)值。銀杏葉活性成分主要是類(lèi)黃酮和萜內(nèi)酯。類(lèi)黃酮作為植物次生代謝主要成分之一，在植物體內(nèi)具有保護(hù)植物免受紫外線損傷（Harborne & Williams， 2000）、調(diào)節(jié)植物的花色或果實(shí)顏色（Lepiniec et al， 2006）、調(diào)節(jié)生長(zhǎng)素運(yùn)輸和防御病原體和昆蟲(chóng)（Dixon et al， 2005），以及響應(yīng)外界脅迫等功能（Cominelli et al， 2005）。銀杏類(lèi)黃酮是預(yù)防治療早期阿爾茨海默病，心血管疾病和癌癥等疾病的有效藥用成分（Diamond et al， 2000）。銀杏也是一種童期特別長(zhǎng)的中生代孑遺裸子植物，一般實(shí)生苗種植15～20 a才能開(kāi)花結(jié)果，這給銀杏優(yōu)良品種的選育帶來(lái)了嚴(yán)重的影響。

bHLH（basic Helix-Loop-Helix）轉(zhuǎn)錄因子構(gòu)成了真核生物蛋白質(zhì)中的一個(gè)大家族，其成員在生物的生長(zhǎng)發(fā)育調(diào)控過(guò)程中起著極為重要的作用（王勇等，2008）。bHLH蛋白在動(dòng)物中有6大類(lèi) （A-F），其中A類(lèi)含有20個(gè)家族，B-F分別含有12、7、1、3、1個(gè)家族（Ledent & Vervoort， 2001）；植物中的bHLH蛋白大多屬于B組，系統(tǒng)發(fā)育分析擬南芥（Arabidopsis thaliana）、水稻（Oryza sativa）、白楊（Populus tomentosa）、苔蘚（Bryophyta）及藻類(lèi)（Algae）的bHLH轉(zhuǎn)錄因子，可以將這些植物的bHLH基因細(xì)分為32個(gè)亞家族（Carreteropaulet et al， 2010）。bHLH轉(zhuǎn)錄因子在不同的植物組織中廣泛存在，可參與植物的生長(zhǎng)發(fā)育、脅迫應(yīng)答以及植物的次生代謝等。例如，在擬南芥中，編碼bHLH蛋白質(zhì)的雄性不育基因DYT1能夠在絨氈層中高水平表達(dá)，控制絨氈層的分化和發(fā)育（Zhang et al， 2006）；在許多植物中，bHLH轉(zhuǎn)錄因子也可以上調(diào)次生代謝途徑中酶基因的表達(dá)，調(diào)控植物中類(lèi)黃酮、生物堿、萜類(lèi)等活性成分生物合成（張?chǎng)蔚龋?014）。bHLH參與調(diào)控類(lèi)黃酮代謝往往和其他轉(zhuǎn)錄因子如MYB，WDR等形成復(fù)合物來(lái)實(shí)現(xiàn)（Nakatsuka et al， 2008）。bHLH轉(zhuǎn)錄因子在植物體內(nèi)也可以響應(yīng)外界生物脅，將葡萄VvbHLH1轉(zhuǎn)入擬南芥中表達(dá)，能夠促進(jìn)類(lèi)黃酮的積累和ABA信號(hào)傳遞，從而提高擬南芥對(duì)鹽和干旱的抵抗力（Wang et al， 2016）。bHLH轉(zhuǎn)錄因子是蛋白質(zhì)的一個(gè)超級(jí)大家族，其在不同植物體內(nèi)的分子機(jī)制尚未研究清楚。

目前，有關(guān)bHLH轉(zhuǎn)錄因子的功能研究在銀杏上尚未見(jiàn)報(bào)道。本研究以銀杏為試材，首次通過(guò)PCR技術(shù)從銀杏葉中分離出目的基因GbbHLH91，分析了該轉(zhuǎn)錄因子結(jié)構(gòu)特點(diǎn)，以及GbbHLH91基因在銀杏各組織、銀杏葉不同發(fā)育時(shí)期中的表達(dá)水平，為后期驗(yàn)證生物學(xué)功能奠定了基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料

用于試驗(yàn)的30年生銀杏種植于長(zhǎng)江大學(xué)西校區(qū)校園，水肥管理?xiàng)l件相同，長(zhǎng)勢(shì)一致。隨機(jī)選取1株銀杏樹(shù)進(jìn)行樣品采集，在4月中旬，采集用于不同部位分析的根、莖、葉、雄花、雌花，在5月中旬，采集果實(shí)；在4月初到7月中旬采集用于不同時(shí)間表達(dá)分析的銀杏葉片，每?jī)芍懿杉淮巍悠凡杉^(guò)程中帶一次性手套和口罩。采集后立即在液氮中速凍，帶回實(shí)驗(yàn)室并保存在-80 ℃冰箱中用于后續(xù)RNA的提取實(shí)驗(yàn)。

1.2 方法

1.2.1 RNA的提取 將采集的銀杏各組織樣品在液氮中碾成粉末狀，參照Plant RNA Extraction Kit（TaKaRa， MiniBEST）試劑盒說(shuō)明書(shū)提取各組織總RNA。通過(guò)使用分光光度計(jì)在OD260/280吸光值和1%（w/v）瓊脂凝膠電泳，檢測(cè)總RNA的質(zhì)量、濃度和純度。

1.2.2 GbbHLH91基因cDNA合成與克隆測(cè)序 采用PrimeScriptTM 1st Strand cDNA Synthesis Kit（TaKaRa，大連）試劑盒把提取的銀杏RNA反轉(zhuǎn)錄得到cDNA。根據(jù)課題組前期測(cè)序得到的銀杏轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)，設(shè)計(jì)bHLH基因特異引物，送往上海生工合成。上游引物GbbHLHF為5′-GCAGCAGCAGCAACAACAACAACAT-3′，下游引物GbbHLHR為5′-TATTGCTCTAAAAAACCTTTAAGGGACG-3′。以cDNA為模板擴(kuò)增銀杏bHLH基因。PCR反應(yīng)體系50 μL：包括ddH2O 40.5 μL，10×Buffer（Mg2+）5 μL，dNTP（10 mmol·L-1）1 μL，上下游引物各1 μL，模板1 μL，Taq DNA polymerase（5 U·μL-1）0.5 μL。PCR擴(kuò)增條件：94 ℃預(yù)變性5 min；94 ℃、30 s，60 ℃退火30 s，72 ℃延伸90 s，共32個(gè)循環(huán)；最后72 ℃延伸10 min，4 ℃結(jié)束。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1%凝膠電泳檢測(cè)，利用凝膠回收試劑盒切膠回收預(yù)期目的基因產(chǎn)物，純化后連接到pMD18-T（TaKaRa，大連）載體上，并轉(zhuǎn)化到DH5α大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中，轉(zhuǎn)化后的菌液均勻涂抹在平板上進(jìn)行藍(lán)白斑篩選，挑選白色菌落做菌液PCR，將檢測(cè)含有目的基因的菌液送往生工生物工程（上海）股份有限公司測(cè)序。

1.2.3 生物信息學(xué)分析 利用在線生物信息學(xué)工具blastx和blastp（NCBI， http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/），對(duì)PCR擴(kuò)增的核苷酸序列和氨基酸序列進(jìn)行了比對(duì)。使用Vector NTI Suite v11.5和DNAMAN 8來(lái)分析GbbHLH91基因的cDNA序列，進(jìn)行ORF的查找和蛋白質(zhì)的翻譯。利用在線工具ExPASy（http：//web.expasy.org/protparam/）對(duì)GbbHLH91氨基酸的分子量、等電點(diǎn)等理化學(xué)性質(zhì)進(jìn)行分析。利用軟件Align X（Vector NTI Suite V 11.5）對(duì)多種植物的bHLH蛋白質(zhì)進(jìn)行多重比對(duì)分析；在用Clustal X 2.0軟件進(jìn)行多重序列比對(duì)的基礎(chǔ)上，借助MEGA 6.0軟件采用鄰接法（Neighbor-joining）構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)，使用Bootstrap對(duì)系統(tǒng)樹(shù)可信性進(jìn)行檢驗(yàn)，重復(fù)1 000次。

1.2.4 實(shí)時(shí)熒光定量PCR分析 使用Plant RNA Extraction Kit（TaKaRa， MiniBEST）試劑盒分別提取銀杏根、莖、葉、雄花、雌花、果的總RNA，以及不同發(fā)育時(shí)期葉片的總RNA。按照試劑盒PrimeScriptTM RT reagent Kit with gDNA Eraser說(shuō)明書(shū)把提取的RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA。根據(jù)GbbHLH91的cDNA序列設(shè)計(jì)實(shí)時(shí)熒光定量引物，上游引物GbbHLHRTS為5′-CGTGAAGGTGCCTTGGCTGAT-3′，下游引物GbbHLHRTA為5′-TGCGACGTTTCCTTTGAATGAGT-3′。qRT-PCR內(nèi)參基因選用的是GAPDH，其上游引物序列GAPDH-F：5′-CTGGCGTAGAGTATGTGGTTGAAT-3′，下游引物序列GAPDH-R：5′-CACGCCAACAACGAACATG-3′。實(shí)時(shí)熒光定量PCR在Bio-Rad公司的PCR儀Mini OpticonTM Real-Time PCR system上進(jìn)行，用SYBR Green熒光染料法進(jìn)行實(shí)時(shí)定量表達(dá)分析，具體操作步驟參照TaKaRa公司的SYBR Premix Ex Taq Ⅱ（TliRNase H Plus）試劑盒說(shuō)明書(shū)。每種實(shí)驗(yàn)樣品進(jìn)行定量PCR擴(kuò)增時(shí)均進(jìn)行三次技術(shù)重復(fù)，bHLH91和內(nèi)參基因GAPDH以三次重復(fù)的cDNA為模板進(jìn)行定量PCR擴(kuò)增，并分別設(shè)置一個(gè)陰性對(duì)照（模板為ddH2O）。反應(yīng)程序?yàn)?5 ℃、30 s，95 ℃、5 s；60 ℃、30 s，共40個(gè)循環(huán)。用Microsoft Excel 2013分析輸出結(jié)果，采用2-△△Ct法計(jì)算GbbHLH91基因相對(duì)表達(dá)水平。

2 結(jié)果與分析

2.1 GbbHLH91基因全長(zhǎng)cDNA克隆和序列分析

利用試劑盒提取銀杏葉總RNA，其OD260/280吸光值在1.8～2.1之間，瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)顯示質(zhì)量較好（圖 1），可用于反轉(zhuǎn)錄實(shí)驗(yàn)。利用GbbHLH基因特異性引物，從反轉(zhuǎn)錄獲得的銀杏cDNA中PCR擴(kuò)增得到一條GbbHLH基因序列。經(jīng)NCBI網(wǎng)站的Blastx在線程序比對(duì)分析顯示該cDNA序列與無(wú)油樟的bHLH91序列具有60%相似性；在轉(zhuǎn)錄因子數(shù)據(jù)庫(kù)中PlantTFDB（http：//planttfdb.cbi.pku.edu.cn/） 運(yùn)行Blast工具比對(duì)擬南芥轉(zhuǎn)錄因子數(shù)據(jù)庫(kù)，比對(duì)結(jié)果為擬南芥bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族的bHLH91。兩次比對(duì)結(jié)果表明從銀杏中克隆的bHLH基因應(yīng)為bHLH91基因，因此命名為GbbHLH91。該序列長(zhǎng)度為1 425 bp，包含1 065 bp的開(kāi)放閱讀框，編碼354個(gè)氨基酸（圖 2）。

2.2 銀杏GbbHLH91編碼蛋白質(zhì)特征性分析

GbbHLH91基因編碼354個(gè)氨基酸，在線工具ExPASy分析結(jié)果顯示，GbbHLH91基因編碼的蛋白質(zhì)分子量為 40.1 kDa，等電點(diǎn)為8.20。蛋白質(zhì)序列同源比對(duì)分析借助在線工具BLASTP（NCBI）和Align X（Vetctor NTI 11.5）完成。同源比對(duì)結(jié)果發(fā)現(xiàn)，GbbHLH91蛋白質(zhì)與其他植物的bHLH蛋白質(zhì)具有一定的相似性（圖 3）。其中，和無(wú)油樟（Amborella trichopoda， XP_006854151）、油松（Pinus tabuliformis， AJP_06244）、陸地棉（Gossypium hirsutum， XP_016753830）、可可（Thebroma cacao， EOY17565）、核桃（Juglans regia， EOY17565）、葡萄（Vitis vinifera， CAN77001）、蓖麻（Ricinus communis，XP_008347044）、蘋(píng)果（Malus domestic， XP_002534354）的bHLH蛋白質(zhì)之間的一致性分別為60%、51%、51%、52%、51%、52%、50%、50%。比對(duì)結(jié)果顯示銀杏GbbHLH91與其它植物的bHLH蛋白質(zhì)具有共同的保守域Helix-Loop-Helix，表明銀杏GbbHLH91屬于bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族成員。

2.3 GbbHLH91基因系統(tǒng)進(jìn)化分析

為了研究GbbHLH91基因的系統(tǒng)進(jìn)化，本研究選取來(lái)自不同科屬的10個(gè)物種的bHLH氨基酸序列，利用軟件ClustalX 2.0和MEGA 6.0通過(guò)鄰接法（Neighbor-joining）構(gòu)建了系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)結(jié)果顯示，進(jìn)化樹(shù)分為裸子植物、被子植物門(mén)兩大分支（圖 4）。其中，銀杏GbbHLH91與同為裸子植物的松科植物油松（Pinus tabuliformis， AJP_06244）bHLH聚類(lèi)在一個(gè)分支，表明在這些用于進(jìn)化樹(shù)構(gòu)建的蛋白質(zhì)中，二者親緣關(guān)系相對(duì)更近。單子葉植物禾本科的玉米（Zea May， NP_001149299）、水稻（Oryza brachyantha， AAO00687）、節(jié)節(jié)麥（Aegilops tausc， EMT07628）親緣關(guān)系相對(duì)較近，聚類(lèi)在同一個(gè)進(jìn)化分支上；而雙子葉植物，如大戟科的麻風(fēng)樹(shù)（Jatropha curcas， XP_012065727）、蓖麻（Ricinus communis， XP_002534354），薔薇科的蘋(píng)果（Malus domestic， XP_008347044）、白梨（Pyrus bretschneideri， XP_009373855），豆科的野生大豆（Glycine soja， KHN25939）、蒺藜苜宿（Medicago truncatula， XP_013457399）聚在另一大類(lèi)。這些結(jié)果表明在基因的進(jìn)化中，同科植物的bHLH基因進(jìn)化關(guān)系較近，與植物本身之間的親緣關(guān)系一致，表明bHLH基因在進(jìn)化過(guò)程中比較保守。

2.4 GbbHLH91基因的表達(dá)分析

利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)（qRT-PCR）測(cè)定了銀杏各組織和不同發(fā)育時(shí)期銀杏葉中GbbHLH91基因的表達(dá)水平。結(jié)果表明，GbbHLH91基因在銀杏各個(gè)組織中都有表達(dá)（圖5：A），其中GbbHLH91基因在銀杏葉中表達(dá)量最高， 根中表達(dá)量次之，在雄花、雌花和果中表達(dá)量較低，該結(jié)果說(shuō)明GbbHLH91基因在銀杏各個(gè)組織中的表達(dá)量具有較大的差異性。GbbHLH91基因在不同發(fā)育時(shí)期的銀杏葉片中表達(dá)量也有差異（圖5：B），其中GbbHLH91基因的表達(dá)量在4月、5月表達(dá)量較高，并在4月中旬達(dá)到最大值，而后表達(dá)水平呈現(xiàn)逐漸下降趨勢(shì)。GbbHLH91基因表達(dá)量的差異可能與該蛋白質(zhì)在銀杏中的分子功能有關(guān)。

3 討論與結(jié)論

bHLH轉(zhuǎn)錄因子是植物中的一大重要轉(zhuǎn)錄因子家族。本研究從銀杏中分離得到了GbbHLH91轉(zhuǎn)錄因子基因。前期研究表明，bHLH基因在植物體內(nèi)可參與植物的生長(zhǎng)發(fā)育、脅迫應(yīng)答和次生代謝。目前，有關(guān)bHLH91轉(zhuǎn)錄因子的研究報(bào)道較少，擬南芥bHLH091在花藥中大量表達(dá)，可以與 bHLH010、bHLH089 結(jié)合，一起參與擬南芥花藥的生長(zhǎng)發(fā)育（Zhu et al， 2015）。bHLH010/bHLH089/bHLH091主要通過(guò)與DYT1相互作用的反饋調(diào)節(jié)來(lái)調(diào)控?cái)M南芥花藥的發(fā)育轉(zhuǎn)錄過(guò)程（Cui et al， 2016）。與擬南芥bHLH091基因的表達(dá)模式不同，本研究中，GbbHLH91基因在雄花中的表達(dá)量最低，而在葉中、莖中表達(dá)量相對(duì)較高。在不同發(fā)育時(shí)期的銀杏葉中，4月該基因的表達(dá)量較高，而此時(shí)也是銀杏雄花的發(fā)育時(shí)期。銀杏是童期非常長(zhǎng)的一種植物，其開(kāi)花調(diào)控機(jī)制可能存在著物種的特異性，推測(cè)bHLH91基因在銀杏和擬南芥中的具體調(diào)控功能或者調(diào)控方式可能不同。Bai et al（2011）研究發(fā)現(xiàn)，煙草bHLH基因NtAn1a和NtAn1b的異位表達(dá)能顯著提高煙草中花青素含量。在本研究中，GbbHLH91基因在銀杏的葉片中表達(dá)量最高，雄花中最低。另外，相對(duì)于其他組織而言，黃酮類(lèi)化合物在銀杏葉中含量最高（高麗雅等，2007）；因此，GbbHLH91基因在銀杏葉片中表達(dá)量最高，推測(cè)該基因在銀杏中也可能與類(lèi)黃酮的代謝合成有關(guān)。轉(zhuǎn)錄因子在植物抵抗逆境脅迫信號(hào)傳導(dǎo)過(guò)程中發(fā)揮著重要的作用。研究發(fā)現(xiàn)，一些植物bHLH轉(zhuǎn)錄因子不但參與植物的次生代謝，同時(shí)還參與響應(yīng)植物的非生物脅迫。比如擬南芥AtbHLH61/93/122（Zhao et al， 2013； Liu et al， 2014）轉(zhuǎn)錄因子、水稻OrbHLH2（Zhou et al， 2009）、水稻 OsbHLH148（Seo et al， 2011）轉(zhuǎn)錄因子等。在剛毛檉柳中，ThbHLH1轉(zhuǎn)錄因子可以提高脅迫相關(guān)基因的表達(dá)從而來(lái)提高植物的抗性（Ji et al， 2016）?？嗍wFtbHLH3基因在擬南芥中表達(dá)，可以通過(guò)ABA信號(hào)途徑提高擬南芥抵御干旱脅迫的能力（Yao et al， 2017）。GbbHLH91基因在銀杏葉片、根中表達(dá)量較高，推測(cè)GbbHLH91轉(zhuǎn)錄因子可能在銀杏根部也參與響應(yīng)了外界逆境脅迫。

總之，本研究克隆獲得了銀杏一個(gè)GbbHLH91轉(zhuǎn)錄因子基因，對(duì)該轉(zhuǎn)錄因子結(jié)構(gòu)特點(diǎn)進(jìn)行了分析；并分析了GbbHLH91基因在銀杏不同組織、不同發(fā)育時(shí)期銀杏葉中的表達(dá)情況，為進(jìn)一步弄清GbbHLH91轉(zhuǎn)錄基因在銀杏中的調(diào)控功能奠定了基礎(chǔ)。

參考文獻(xiàn)：

BAI Y， PATTANAIK S， PATRA B， et al， 2011. Flavonoid-related basic helix-loop-helix regulators， NtAn1a and NtAn1b， of tobacco have originated from two ancestors and are functionally active [J]. Planta， 234（2）： 363.

CARRETEROPAULET L， GALSTYAN A， ROIGVILLANOVA I， et al， 2010. Genome wide classification and evolutionary analysis of the bHLH family of transcription factors in Arabidopsis， poplar， rice， moss and algae [J]. Plant Physiol， 153（3）： 1398-1412.

COMINELLI E， GALBIATI M， VAVASSEUR A， et al， 2005. A guard-cell-specific MYB transcription factor regulates stomatal movements and plant drought tolerance [J]. Curr Biol， 15（13）： 1196-1200.

CUI J， YOU C， ZHU E， et al， 2016. Feedback regulation of dyt1 by interactions with downstream bHLH factors promotes DYT1 nuclear localization and anther development [J]. Plant Cell， 28（5）：1078-1093.

DIAMOND BJ， SHIFLETT SC， FEIWEL N， et al， 2000. Ginkgo biloba extract： mechanisms and clinical indications [J]. Arch Phys Med Rehabil， 81（5）： 668-678.

DIXON RA， XIE DY， SHARMA SB， 2005. Proanthocyanidins—a final frontier in flavonoid research？ [J]. New Phytol， 165（1）： 9-28.

GAO LY， LI WH， HAN F， et al， 2007. A study on the rule of content distribution on the flavonoid compounds in different parts of Ginkgo biloba L. [J]. J NW Univ （Nat Sci Ed）， 37（2）： 225-227. [高麗雅， 李穩(wěn)宏， 韓楓， 等， 2007. 黃酮類(lèi)化合物在銀杏不同部位含量的分布 [J]. 西北大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版）， 37（2）：225-227.]

HARBORNE JB， WILLIAMS CA， 2000. Advances in flavonoid research since 1992 [J]. Phytochemistry， 55（6）： 481-504.

JI X， NIE X， LIU Y， et al， 2016. A bHLH gene from Tamarix hispida improves abiotic stress tolerance by enhancing osmotic potential and decreasing reactive oxygen species accumulation [J]. Tree Physiol， 36（2）： 193-207.

LEDENT V， VERVOORT M， 2001. The basic helix-loop-helix protein family： comparative genomics and phylogenetic analysis [J]. Genome Res， 11（5）： 754-770.

LEPINIEC L， DEBEAUJON I， ROUTABOUL JM， et al， 2006. Genetics and biochemistry of seed flavonoids [J]. Ann Rev Plant Biol， 57： 405-430.

LIU W， TAI H， LI S， et al， 2014. bHLH122 is important for drought and osmotic stress resistance in Arabidopsis and in the repression of ABA catabolism [J]. New Phytol， 201（4）： 1192-1204.

NAKATSUKA T， HARUTA KS， PITAKSUTHEEPONG C， et al， 2008. Identification and characterization of R2R3-MYB and bHLH transcription factors regulating anthocyanin biosynthesis in gentian flowers [J]. Plant Cell Physiol， 49（12）： 1818-1829.

SEO JS， JOO J， KIM MJ， et al， 2011. OsbHLH148， a basic helix-loop-helix protein， interacts with OsJAZ proteins in a jasmonate signaling pathway leading to drought tolerance in rice [J]. Plant J， 65（6）： 907-921.

WANG F， ZHU H， CHEN D， et al， 2016. A grape bHLH transcription factor gene， VvbHLH1， increases the accumulation of flavonoids and enhances salt and drought tolerance in transgenic Arabidopsis thaliana [J]. Plant Cell Tiss Organ Cult， 125（2）： 387-398.

WANG Y， CHEN KP， YAO Q， 2008. Progress of studies on bHLH transcription factor families [J]. Hereditas， 30（7）： 821-830. [王勇， 陳克平， 姚勤， 2008. bHLH 轉(zhuǎn)錄因子家族研究進(jìn)展 [J]. 遺傳， 30（7）： 821-830.]

YAO PF， LI CL， ZHAO XR， et al， 2017. Overexpression of a tartary buckwheat gene， FtbHLH3， enhances drought/oxidative stress tolerance in transgenic Arabidopsis [J]. Front Plant Sci， 8： 625.

ZHANG W， SUN Y， TIMOFEJEVA L， et al， 2006. Regulation of Arabidopsis tapetum development and function by DYSFUNCTIONAL TAPETUM1 （DYT1） encoding a putative bHLH transcription factor [J]. Development， 133（16）：3085-3095.

ZHANG X， SONG JY， HU YL， et al， 2014. Research progress of the regulation on active compound biosynthesis by the bHLH transcription factors in plants [J]. Acta Pharm Sin， 49（4）： 435-442. [張?chǎng)危?宋經(jīng)元， 胡鳶雷， 等， 2014. bHLH 轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控植物活性成分生物合成的研究進(jìn)展 [J]. 藥學(xué)學(xué)報(bào)， 49（4）： 435-442.]

ZHAO L， GAO L， WANG H， et al， 2013. The R2R3-MYB， bHLH， WD40， and related transcription factors in flavonoid biosynthesis [J]. Funct Integr Genomics， 13（1）： 75-98.

ZHOU J， LI F， WANG J， et al， 2009. Basic helix-loop-helix transcription factor from wild rice （OrbHLH2） improves tolerance to salt-and osmotic stress in Arabidopsis [J]. J Plant Physiol， 166（12）： 1296-1306.

ZHU E， YOU C， WANG S， et al， 2015. The DYT1-interacting proteins bHLH010， bHLH089 and bHLH091 are redundantly required for Arabidopsis anther development and transcriptome [J]. Plant J， 83（6）： 976-990.