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    發(fā)酵鷹嘴豆乳產(chǎn)γ-氨基丁酸乳酸菌的復(fù)合誘變選育

    2018-08-31 02:32:26董明盛
    食品科學(xué) 2018年16期
    關(guān)鍵詞:氯化鋰鷹嘴豆致死率

    李 文,董明盛*

    γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)是一種非蛋白質(zhì)氨基酸,其作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)重要的抑制性神經(jīng)遞質(zhì),具有多種生理功能,如神經(jīng)傳導(dǎo)、降血壓、利尿、抗氧化、抗炎等[1-3]。GABA廣泛存在于自然界中,蔬菜和水果中的GABA含量太低,以鮮質(zhì)量計(jì),約只有0.03~2.00 μmol/g,而直接將GABA添加到食物中又被認(rèn)為是非天然、不安全的[4-5]。因此,有必要通過(guò)一種自然的發(fā)酵過(guò)程,通過(guò)轉(zhuǎn)化GABA前體物的方式,來(lái)增加食物中的GABA含量,乳酸菌是國(guó)際公認(rèn)的食品安全級(jí)微生物[6],具有多種益生功效[7-8],乳酸菌已被廣泛用于泡菜、奶酪、面包和酸奶等食品的生產(chǎn)中。研究表明乳酸菌具有胞內(nèi)谷氨酸脫羧酶活性[9-11],其可催化L-谷氨酸或谷氨酸鈉(monosodium glutamate,MSG)脫羧生成GABA。

    鷹嘴豆是世界第二大消費(fèi)豆類(lèi),產(chǎn)量居世界豆類(lèi)第三[12]。鷹嘴豆富含蛋白質(zhì)、氨基酸、維生素、粗纖維、谷胱甘肽及鈣、鐵、鎂等成分,而淀粉和脂肪含量較低[13],且其具有降膽固醇及降血糖等功效。此外,其含有5%~10%的低聚半乳糖,有助于乳酸菌的生長(zhǎng),為GABA的產(chǎn)生提供了必要條件。目前,尚鮮見(jiàn)富含GABA鷹嘴豆乳生產(chǎn)的相關(guān)報(bào)道。

    從自然界直接篩選得到的野生型菌株積累產(chǎn)物能力往往較低,無(wú)法滿足實(shí)際生產(chǎn)的需要,因此,通過(guò)誘變育種手段改造菌株,為發(fā)酵工藝提供所需的突變型菌株是提高GABA產(chǎn)量最有效的途徑。紫外誘變作為一種使用最早的物理誘變技術(shù),沿用至今,效果顯著[14]。紫外誘變是一種非電離福射,可以使DNA形成嘧啶二聚體,此二聚體可以在單鏈和雙鏈相鄰的兩個(gè)胸腺嘧啶間形成[15],阻礙了DNA復(fù)制的正常進(jìn)行,從而引起突變。紫外誘變操作方便,節(jié)約成本,已在細(xì)菌、真菌等菌種的選育中取得了較好的效果[16-18]。氯化鋰作為一種高效、低毒的化學(xué)誘變劑,經(jīng)常被用作誘變育種,已被成功應(yīng)用于多種菌種選育[19-22]。復(fù)合誘變具有協(xié)同效應(yīng),如果兩種或兩種以上誘變劑合理搭配使用,誘變效果較單一誘變好[23]。其中,紫外與化學(xué)誘變劑的復(fù)合誘變被廣泛應(yīng)用[24-26]。

    本研究在篩選獲得具有發(fā)酵鷹嘴豆乳產(chǎn)GABA能力的野生型菌株的基礎(chǔ)上,采用紫外誘變及紫外-氯化鋰復(fù)合誘變的方式來(lái)提高菌株產(chǎn)GABA的能力,采用紙層析、篩選平板法、比色法、液相色譜法等篩選方式來(lái)獲得產(chǎn)量提高的菌株,并檢測(cè)其遺傳穩(wěn)定性,以期獲得1株GABA產(chǎn)量提高且遺傳穩(wěn)定的菌株,更好地將其應(yīng)用于富含GABA發(fā)酵鷹嘴豆乳的生產(chǎn)。

    1 材料與方法

    1.1 材料、試劑與培養(yǎng)基

    植物乳桿菌M-6為本實(shí)驗(yàn)室分離自新疆波孜中,并保藏于本實(shí)驗(yàn)室。

    GABA標(biāo)準(zhǔn)品 美國(guó)Sigma公司;牛肉膏、酵母膏、蛋白胨(均為生化試劑) 天津市福晨化學(xué)試劑廠;氯化鋰、谷氨酸鈉、茚三酮、鄰苯二甲醛(o-phthalaldehyde,OPA)、β-巰基乙醇、正丁醇、冰醋酸等均為國(guó)產(chǎn)分析純。

    MRS(de Man Rogosa Sharpe)培養(yǎng)基:葡萄糖20.0 g、牛肉膏15.0 g、酵母膏5.0 g、蛋白胨10.0 g、無(wú)水乙酸鈉5.0 g、檸檬酸銨2.0 g、K2HPO4·3H2O 2.62 g、MnSO4·H2O 0.198 g、MgSO4·7H2O 0.58 g、吐溫-80 1.0 mL、蒸餾水1 000 mL,pH 6.0~6.5,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。

    MRSG培養(yǎng)基:葡萄糖20.0 g、牛肉膏15.0 g、酵母膏5.0 g、蛋白胨10.0 g、無(wú)水乙酸鈉5.0 g、檸檬酸銨2.0 g、K2HPO4·3H2O 2.62 g、MnSO4·H2O 0.198 g、MgSO4·7H2O 0.58 g、MSG 10 g、吐溫-80 1.0 mL、蒸餾水1 000 mL,pH 6.0~6.5,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。

    篩選平板:MRS平板,MRS培養(yǎng)基中添加1.5%的瓊脂;高濃度MSG平板,MRS平板里添加MSG,使其終質(zhì)量濃度分別為130、132、134、136、138、140 g/L,以出發(fā)菌株恰好無(wú)法生長(zhǎng)的臨界質(zhì)量濃度作為篩選平板。

    1.2 儀器與設(shè)備

    ECLIPSE 80i科研級(jí)生物顯微鏡 日本Nikon Corporation公司;LRH-150型生化培養(yǎng)箱 上海益恒實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;PB-20型pH計(jì) 德國(guó)Sartarius公司;64RL高速冷凍離心機(jī) 美國(guó)Beckman公司;1100型高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)儀 美國(guó)Agilent公司;ZORBAX Eclipse Plus C18反相分析柱(4.60 mm×250 mm,5μm) 美國(guó)Agilent公司;722型分光光度計(jì) 上海菁華科技儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 菌株生長(zhǎng)曲線的繪制

    將植物乳桿菌M-6接種于MRS培養(yǎng)基,于37 ℃活化培養(yǎng)14~16 h,再以3%的接種量接種到MRS培養(yǎng)基中,于37 ℃培養(yǎng)。從0 h開(kāi)始,每隔2 h,取適量菌懸液用分光光度計(jì)測(cè)其600 nm波長(zhǎng)處的OD值,以培養(yǎng)時(shí)間為橫坐標(biāo),OD600nm值為縱坐標(biāo),繪制菌株的生長(zhǎng)曲線。

    1.3.2 紫外誘變

    將M-6活化兩次,培養(yǎng)至對(duì)數(shù)中后期,取10 mL菌懸液于平皿中,平皿置磁力攪拌器上,垂直擺放在功率為18 W的紫外燈下,在30 cm距離處進(jìn)行紫外誘變,照射時(shí)間分別為0、30、60、90、120、180、240、300 s。照射完畢后,分別移取0.1 mL稀釋至10-4、10-5、10-6的菌懸液涂布于MRS固體培養(yǎng)基或高濃度MSG平板上,于37 ℃避光培養(yǎng)48 h,統(tǒng)計(jì)紫外照射不同時(shí)間的突變株在MRS平板上的菌落數(shù),按照如下公式計(jì)算致死率:

    1.3.3 紫外-氯化鋰復(fù)合誘變

    將紫外誘變后的菌懸液涂布于含0%、0.5%、0.75%、1.00%、1.25%、1.5%、1.75%、2.00%氯化鋰的誘變培養(yǎng)基平板上,37 ℃避光培養(yǎng)48 h,計(jì)數(shù),統(tǒng)計(jì)致死率。

    1.3.4 誘變菌株的篩選

    1.3.4.1 高濃度MSG平板法

    將活化兩次的出發(fā)菌株涂布于含MSG質(zhì)量濃度分別為130、132、134、136、138、140 g/L的MRS平板上,找出臨界質(zhì)量濃度,以此質(zhì)量濃度作為篩選平板,將紫外誘變后的菌懸液涂布于此臨界質(zhì)量濃度的平板上,挑出能在此質(zhì)量濃度平板上生長(zhǎng)的突變株,留待下一步篩選。

    1.3.4.2 MRSG發(fā)酵上清液的制備

    將紫外-氯化鋰誘變菌株活化兩次后,以3%(體積分?jǐn)?shù))接種量接種于MRSG液體培養(yǎng)基中,置于37 ℃,靜置培養(yǎng)48 h。發(fā)酵液經(jīng)低溫冷凍離心(10 000×g,4 ℃,10 min)后,收集上清液并置于4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.4.3 紙層析法

    采用預(yù)染紙層析法篩選GABA產(chǎn)量提高的乳酸菌[27]。吸取MRSG發(fā)酵上清液1 μL,點(diǎn)樣于層析紙上。采用正丁醇-冰醋酸-水體積比為2∶1∶1的體系為展開(kāi)劑,添加0.8 g/100 mL茚三酮為顯色劑,做密閉上行展開(kāi),展開(kāi)后于80 ℃下顯色30 min。以質(zhì)量濃度為2 g/L的GABA和MSG標(biāo)準(zhǔn)品作對(duì)照。

    1.3.4.4 Berthelot比色法[28-29]

    取MRSG發(fā)酵上清液0.5 mL,依次加入0.5 mL濃度為0.2 mol/L的硼酸緩沖液(pH 9.0)、1 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為6%的苯酚和1 mL次氯酸鈉溶液,充分混勻后置于沸水浴中反應(yīng)10 min,立刻放在冰浴中20 min,待樣品出現(xiàn)藍(lán)綠色后加入體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇溶液,混勻,645 nm波長(zhǎng)處測(cè)定其吸光度。

    1.3.4.5 鷹嘴豆乳的制備及發(fā)酵

    選取優(yōu)質(zhì)鷹嘴豆,清水沖洗后,室溫浸泡12 h,以豆水比1∶10(g/mL)加入水,煮沸15 min,磨漿,過(guò)濾,濾液中加入0.2%的MSG,108 ℃滅菌15 min。

    將活化后的乳酸菌用0.85 g/100 mL的生理鹽水清洗兩次,獲得菌懸制備液。具體方法為[30]:發(fā)酵液于4 ℃、8 000 r/min離心15 min,去上清液,加等體積的生理鹽水吹打菌體,重復(fù)操作兩次。

    待豆乳冷卻后,按5%的接種量接入菌懸液,于37 ℃培養(yǎng)箱發(fā)酵48 h。發(fā)酵液經(jīng)低溫冷凍離心 (10 000×g,4 ℃,10 min)后,收集上清液并置于4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.4.6 HPLC法分析

    采用HPLC進(jìn)行GABA的定量分析[31]。洗脫條件見(jiàn)表1,流動(dòng)相A為20 mmol/L的醋酸鈉(pH 7.3),流動(dòng)相B為乙腈。衍生試劑為OPA 40 mg,乙腈10 mL,β-巰基乙醇40 μL,混勻。硼酸緩沖液:硼酸2.47 g,用雙蒸水溶解,調(diào)節(jié)pH 10.4,定容至100 mL。依次吸取500 μL硼酸緩沖液、100 μL OPA衍生試劑、100 μL發(fā)酵上清液混勻,室溫反應(yīng)5 min。取20 μL進(jìn)樣,流速0.8 mL/min,波長(zhǎng)334 nm,柱溫25 ℃。以GABA濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),即可繪制出標(biāo)準(zhǔn)曲線和測(cè)定發(fā)酵上清液中GABA含量。

    表1 梯度洗脫條件Table 1 Gradient program of mobile phase

    1.3.5 遺傳穩(wěn)定性檢測(cè)

    將篩選得到的高產(chǎn)菌株進(jìn)行傳代培養(yǎng),連續(xù)傳10 代,分別檢測(cè)每代菌株在鷹嘴豆乳中的GABA產(chǎn)量,以考察突變菌株的遺傳穩(wěn)定性。

    1.4 統(tǒng)計(jì)分析

    實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均為3次重復(fù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的平均值,數(shù)據(jù)表示成 ±s的形式,采用SPSS 16.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,采用Duncan’s ANOVA進(jìn)行多重比較,不同處理組之間P<0.05表明差異性顯著,P<0.01表明差異性極顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 出發(fā)菌株的生長(zhǎng)曲線

    出發(fā)菌株M-6的生長(zhǎng)曲線見(jiàn)圖1,菌株在MRS培養(yǎng)基中生長(zhǎng)迅速,延滯期很短,2 h后即進(jìn)入對(duì)數(shù)期,14 h后進(jìn)入穩(wěn)定期,當(dāng)菌體處于對(duì)數(shù)中后期時(shí),細(xì)胞生長(zhǎng)迅速,代謝旺盛,對(duì)外界條件的變化較為敏感,因此,選定10~12 h的菌體進(jìn)行之后的誘變實(shí)驗(yàn)。

    圖1 出發(fā)菌株的生長(zhǎng)曲線Fig. 1 Growth curve of the parental strain

    2.2 紫外誘變最佳時(shí)間的確定

    紫外線作為一種常用的物理誘變劑,可以使DNA形成胸腺嘧啶二聚體,胞嘧啶水合物及DNA鏈或氫鍵斷裂等,從而導(dǎo)致DNA結(jié)構(gòu)變化[32]。紫外照射時(shí)間對(duì)菌株致死率的影響見(jiàn)圖2,隨著誘變時(shí)間的不斷延長(zhǎng),M-6的致死率呈上升趨勢(shì),而當(dāng)致死率在70%~80%左右時(shí),有利于正突變的產(chǎn)生[32],故誘變的最佳時(shí)間為240 s。

    圖2 紫外誘變時(shí)間對(duì)致死率的影響Fig. 2 Effect of UV irradiation time on morality

    2.3 紫外-氯化鋰復(fù)合誘變劑量的確定

    氯化鋰作為一種化學(xué)誘變劑,其單獨(dú)使用時(shí),誘變效果不是很明顯,因此,常作為一種助誘變劑與其他誘變劑復(fù)合使用,往往可以起到較好的誘變效果[32]。采用紫外-氯化鋰復(fù)合誘變對(duì)出發(fā)菌株進(jìn)行處理,將紫外照射240 s的菌株涂布于不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)梯度的氯化鋰平板上,由圖3可見(jiàn),隨著氯化鋰質(zhì)量分?jǐn)?shù)的升高,菌株的致死率呈現(xiàn)上升趨勢(shì),低質(zhì)量分?jǐn)?shù)范圍內(nèi)致死率上升很快,質(zhì)量分?jǐn)?shù)大于1.5%后,上升速率變緩,當(dāng)氯化鋰質(zhì)量分?jǐn)?shù)繼續(xù)增大至2%,平板上無(wú)菌落長(zhǎng)出,當(dāng)氯化鋰質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1.25%時(shí),菌株的致死率為78.05%,選用此劑量作為氯化鋰誘變的最佳劑量。

    圖3 氯化鋰質(zhì)量分?jǐn)?shù)對(duì)致死率的影響Fig. 3 Effect of LiCl concentration on morality

    2.4 菌株初篩

    2.4.1 高濃度MSG平板初篩

    由于誘變的目的是獲得GABA產(chǎn)量提高的菌株,因此,其對(duì)轉(zhuǎn)化底物的轉(zhuǎn)化能力應(yīng)有所提高,耐受性也應(yīng)更好[23]。配制一系列含高質(zhì)量濃度底物MSG的篩選平板,考察出發(fā)菌株在平板上的生長(zhǎng)能力,結(jié)果見(jiàn)圖4??梢钥闯觯霭l(fā)菌株在含138 g/L MSG的平板上,不再有菌落長(zhǎng)出,因此,選用此質(zhì)量濃度的MSG平板作為篩選平板,若突變株能在此平板上生長(zhǎng),則其GABA產(chǎn)量應(yīng)有所提高。采用此法從紫外誘變的突變株中篩選出18 株能在高M(jìn)SG平板上生長(zhǎng)的突變株,留待復(fù)篩。

    圖4 菌株在含136 g/L(A)和138 g/L (B) MSG的MRS上的生長(zhǎng)情況Fig. 4 Growth of strains on MRS with 136 g/L (A) and 138 g/L (B) of MSG

    2.4.2 紙層析初篩

    采用紙層析的方式對(duì)紫外-氯化鋰誘變菌株進(jìn)行初步篩選,通過(guò)GABA斑點(diǎn)的深淺初步判斷GABA產(chǎn)量的高低,初步排除低產(chǎn)或不產(chǎn)GABA的菌株。

    圖5 誘變菌株的紙層析結(jié)果Fig. 5 Paper chromatography profiles of mutant strains

    代表性紙層析的結(jié)果如圖5所示,與出發(fā)菌株相比,2、3、5號(hào)GABA斑點(diǎn)加深,6號(hào)GABA斑點(diǎn)變淺,其他變化不大,因此,挑出2、3、5號(hào)進(jìn)行后續(xù)的篩選。采用此法從紫外-氯化鋰復(fù)合誘變的200多株突變株中挑選出20株突變株留待復(fù)篩。

    2.5 Berthelot比色法及HPLC法復(fù)篩

    圖6 誘變菌株在MRSG里產(chǎn)GABA的篩選結(jié)果Fig. 6 GABA production in MRSG by mutant strains obtained by UV and UV-LiCl

    利用高M(jìn)SG平板法和紙層析法,共篩選出紙層析GABA斑點(diǎn)顏色深于出發(fā)菌株的、138 g/L的MSG平板上能夠生長(zhǎng)的38 株菌株進(jìn)行Berthelot比色法測(cè)定,通過(guò)比較OD值的大小,得到21 株誘變后GABA含量顯著高于出發(fā)菌株的突變株,其中,紫外誘變的7 株,紫外-氯化鋰復(fù)合誘變的14 株,利用HPLC法進(jìn)行準(zhǔn)確定量,結(jié)果見(jiàn)圖6,紫外誘變所得的7 株菌GABA產(chǎn)量都極顯著高于出發(fā)菌株(P<0.01),其中U-15產(chǎn)量最高,為795.75 mg/L,比出發(fā)菌株的產(chǎn)量提高了45.34%;復(fù)合誘變的菌株,除UL-1、UL-66、UL-148、UL-155四株菌與出發(fā)菌株無(wú)顯著差異外,UL-56的GABA產(chǎn)量顯著高于M-6(P<0.05),其他9 株菌的GABA產(chǎn)量極顯著高于M-6(P<0.01)。其中UL-4的產(chǎn)量最高,為899.27 mg/L,比出發(fā)菌株M-6產(chǎn)量提高了64.25%。

    圖7 誘變菌株在鷹嘴豆乳里產(chǎn)GABA的篩選結(jié)果Fig. 7 GABA production in chickpea milk by mutant strains obtained by UV and UV-LiCl

    圖8 M-6(A)及UL-4(B)發(fā)酵上清衍生物的HPLC圖譜Fig. 8 HPLC chromatograms for cultural supernatants of M-6 and UL-4

    從以上突變株中挑選出產(chǎn)量在700 mg/L以上的突變株,采用HPLC法檢測(cè)其在鷹嘴豆乳中產(chǎn)GABA的能力,結(jié)果見(jiàn)圖7。復(fù)合誘變突變株中的UL-4在鷹嘴豆乳中的GABA產(chǎn)量最高,為369.53 mg/L,比出發(fā)菌株提高了30.46%,在鷹嘴豆乳里GABA產(chǎn)量提高的幅度不如在MRSG培養(yǎng)基中大,可能是由于發(fā)酵基質(zhì)的改變和底物濃度的降低,引起菌株轉(zhuǎn)化能力的相應(yīng)改變。出發(fā)菌株M-6及突變株UL-4在鷹嘴豆乳中發(fā)酵上清液的OPA衍生物HPLC見(jiàn)圖8??梢?jiàn),M-6和UL-4中出現(xiàn)了同樣的GABA的OPA衍生物峰(箭頭所指),且UL-4的GABA產(chǎn)量有所提高,體現(xiàn)在對(duì)應(yīng)的峰面積大于M-6。

    2.6 突變株性狀

    除檢測(cè)GABA產(chǎn)量外,比較誘變對(duì)于突變株性狀的影響。從圖9菌株的單菌落形態(tài)來(lái)看,突變菌株和出發(fā)菌株的菌落形態(tài)均呈圓形,較小而厚,表面光滑,邊緣整齊,形態(tài)基本一致。但紫外誘變后的菌落出現(xiàn)的時(shí)間稍晚于出發(fā)菌株,而紫外-氯化鋰復(fù)合誘變后的菌株的出現(xiàn)時(shí)間更晚,這可能是因?yàn)樽贤庹丈涫辜?xì)胞受到一定程度的損傷,需要一定時(shí)間的恢復(fù),才能正常生長(zhǎng);復(fù)合誘變時(shí),已經(jīng)接受過(guò)紫外照射的菌株對(duì)氯化鋰更為敏感,且在整個(gè)生長(zhǎng)階段都接觸到誘變劑氯化鋰,生長(zhǎng)受到了較大且持久的影響。

    圖9 出發(fā)菌株(A)、紫外誘變菌株(240 s)(B)、紫外-氯化鋰復(fù)合誘變菌株(C)的單菌落形態(tài)Fig. 9 Colonies of original strain (A), and mutant strains after UV irritation (240 s) (B) and after UV-LiCl mutagenesis (C) on MRS plates

    2.7 遺傳穩(wěn)定性結(jié)果

    將復(fù)合誘變所得產(chǎn)量最高的突變株UL-4傳代10 次,測(cè)定每一代在鷹嘴豆乳中的GABA產(chǎn)量,結(jié)果見(jiàn)圖10,可以看出,每代菌株的GABA產(chǎn)量間無(wú)顯著性差異(P>0.05),即傳代次數(shù)對(duì)GABA的產(chǎn)量無(wú)顯著影響,說(shuō)明該菌株具有較好的遺傳穩(wěn)定性。

    圖10 突變株UL-4不同傳代次數(shù)發(fā)酵鷹嘴豆乳的GABA產(chǎn)量Fig. 10 GABA content in chickpea milk inoculated with different generations of mutant UL-4

    3 討 論

    紫外誘變方法是一種廣泛采用的對(duì)微生物菌種進(jìn)行改良的方法,其簡(jiǎn)便快捷,效果較為顯著。在GABA的菌種選育方面,也得以廣泛應(yīng)用。蔣冬花等[33]以米曲霉(Aspergillus oryzae)的孢子為對(duì)象進(jìn)行紫外誘變,經(jīng)初篩、復(fù)篩后獲得1 株GABA產(chǎn)量較高且穩(wěn)定遺傳的突變株As-8,其在合適的培養(yǎng)條件下,GABA產(chǎn)量最高可達(dá)4.2 g/L。姜宏瑛[34]采用紫外誘變唾液鏈球菌嗜熱亞種,得到的突變株在含100 mmol/L L-谷氨酸鈉的底物緩沖液中,GABA的轉(zhuǎn)化率最高可達(dá)19.974 mg/(g·h),較出發(fā)菌株提高44.52%。相比單獨(dú)一種誘變方法,復(fù)合誘變能有效改變菌株對(duì)誘變因素的敏感性,提高正向突變率,能夠大規(guī)模提高生產(chǎn)菌株的產(chǎn)量[35]。黃翠萍等[36]采用紫外及亞硝基胍誘變嗜酸乳桿菌,得到高產(chǎn)突變株SW-135-13,其GABA產(chǎn)量為1.31 g/L。本實(shí)驗(yàn)嘗試紫外-氯化鋰復(fù)合誘變的方法對(duì)植物乳桿菌進(jìn)行選育,得到的突變菌株UL-4,其在MRSG培養(yǎng)基和鷹嘴豆乳中的GABA產(chǎn)量分別為899.27 mg/L和369.53 mg/L,比出發(fā)菌株M-6產(chǎn)量分別提高了64.25%和30.46%,比單獨(dú)紫外照射誘變獲得的GABA產(chǎn)量增加幅度最大的突變株提高了13.01%和11.41%,可見(jiàn)紫外-氯化鋰復(fù)合誘變可以發(fā)揮紫外線和氯化鋰兩種誘變劑的協(xié)同作用,好于單一紫外線誘變的效果。

    隨著天然食品與有機(jī)食品概念的提出,人們?cè)絹?lái)越傾向于采用益生菌發(fā)酵食品中的谷氨酸及其鈉鹽的方式來(lái)生產(chǎn)富含GABA的功能性食品,或是通過(guò)其他天然的方式來(lái)增加食品中的GABA含量,而不是額外地加入化學(xué)合成的GABA。GABA含量較高的發(fā)酵產(chǎn)品有發(fā)酵乳制品,醬油和奶酪等。Pouliot-Mathieu等[37]使用Lactococcus lactis ssp. lactis發(fā)酵奶酪后,GABA含量為320 mg/kg。Nejati等[38]采用植物乳桿菌和其他乳酸菌混合發(fā)酵牛奶,GABA含量為144.5 mg/kg。但鮮有乳酸菌發(fā)酵鷹嘴豆乳產(chǎn)GABA的相關(guān)報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)誘變所得菌株可以較好地用于鷹嘴豆乳的發(fā)酵以富集GABA,為新型富含GABA功能性食品的開(kāi)發(fā)提供了可能性。

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