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    紅景天苷對小鼠原代T淋巴細(xì)胞體外行為的影響*

    2018-08-27 07:56:26尹樂樂葉莎莎歐陽東云曾耀英
    中國病理生理雜志 2018年8期
    關(guān)鍵詞:胸腺懸液線粒體

    尹樂樂, 葉莎莎, 歐陽東云, 曾耀英

    (暨南大學(xué)1附屬第一醫(yī)院臨床檢驗中心,2生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院組織移植與免疫研究中心, 廣東 廣州 510632)

    紅景天苷(salidroside,Sal)是從傳統(tǒng)藏藥紅景天(Rhodiolarosea)根部提取出來的一種具有苯酚結(jié)構(gòu)的化合物[1]。Sal作為傳統(tǒng)藏藥廣泛應(yīng)用于抗炎[2]、抗氧化[3]和抗疲勞等方面的治療。有研究表明,Sal對多種細(xì)胞(如神經(jīng)細(xì)胞、心肌細(xì)胞及內(nèi)皮祖細(xì)胞[4]等)具有抗凋亡作用。在Sal對機(jī)體固有免疫細(xì)胞的影響方面,我們已在前期實驗中證實了Sal對小鼠腹腔巨噬細(xì)胞體外增殖、吞噬及NO產(chǎn)生均有促進(jìn)作用,而對細(xì)胞凋亡和活性氧簇(reactive oxygen species,ROS)產(chǎn)生均有抑制作用[5]。在Sal與T淋巴細(xì)胞研究方面,目前已有文獻(xiàn)表明,紅景天苷對某些動物模型體內(nèi)T淋巴細(xì)胞型別轉(zhuǎn)換及相關(guān)細(xì)胞因子調(diào)節(jié)具有一定的作用[4-7],但其對小鼠原代T淋巴細(xì)胞體外行為的影響卻鮮有報道。因此,我們通過分析Sal對小鼠T淋巴細(xì)胞體外活化、增殖、ROS產(chǎn)生及凋亡的影響,評價其免疫效應(yīng)及作用機(jī)制。

    材 料 和 方 法

    1 動物

    清潔級 BALB/c近交系雄性小鼠,3~4周齡及8~10 周齡,均購于廣東省醫(yī)學(xué)實驗動物中心,許可證號為SYXK(粵)2012-0122。 其中,3~4周齡清潔級 BALB/c近交系小鼠用于獲取胸腺T淋巴細(xì)胞,8~10周齡清潔級 BALB/c近交系小鼠用于獲取淋巴結(jié)T淋巴細(xì)胞。

    2 主要試劑和儀器

    紅景天苷購自中國江蘇華榮生物科技有限公司,粉末狀,水溶性,純度為99 %,將紅景天苷用PBS溶解配制成 400 mmol/L的儲存液,分裝,于-20 ℃避光保存,臨用前用 PBS稀釋成工作液;RPMI-1640 細(xì)胞培養(yǎng)液和胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自Gibco;大鼠抗小鼠CD3-PE和倉鼠抗小鼠CD69-FITC購自BD Pharmingen;羧基二乙酸熒光素琥珀酰亞胺酯(carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester,CFDA-SE)購自Molecular Probe;L-谷氨酰胺、β-巰基乙醇(β-mercaptoethanol,β-ME)、刀豆蛋白 A(concanavalin A,Con A)、地塞米松(dexamethasone,DEX)、DMSO、MTT、2’,7’-二氯二氫熒光素二乙酸酯(2’,7’-dichlorodihydrofluorescein diacetate,H2DCFDA)及DiOC6(3)均購自Sigma。

    手術(shù)剪、眼科剪和眼科鑷購自中國蘇州手術(shù)器械廠;細(xì)胞培養(yǎng)板、移液管、離心管、平皿和培養(yǎng)瓶均購自Corning;流式細(xì)胞儀(FACSCalibur)購自Becton Dickinson;酶標(biāo)儀(680 型)購自Bio-Rad。

    3 主要方法

    3.1淋巴細(xì)胞懸液的制備 將BALB/c小鼠斷髓處死,浸泡于75%乙醇中進(jìn)行消毒,無菌分離雙側(cè)腋窩、鎖骨下、腹股溝淺淋巴結(jié)和腸系膜淋巴結(jié),置于盛有預(yù)冷的PBS的無菌平皿中,去掉被膜,研磨,200目尼龍網(wǎng)過濾。收集細(xì)胞,PBS離心(250×g, 4 ℃, 5 min)洗滌細(xì)胞2次,用RPMI-1640 完全培養(yǎng)液(含10% FBS、2 mmol/L L-谷氨酰胺、50 μmol/L β-ME、100 mg/L鏈霉素和1×105U/L青霉素)調(diào)成密度為3×109/L的淋巴細(xì)胞懸液。

    3.2MTT比色法檢測Sal對小鼠T淋巴細(xì)胞活力的影響 實驗分組:陰性對照(negative)組、正常對照(control)組和單純藥物(Sal)組,每組設(shè)3個復(fù)孔。將密度為3×109/L的細(xì)胞懸液接種在96孔板中,每孔190 μL,加入10 μL終濃度分別為80 μmol/L、160 μmol/L和320 μmol/L的Sal工作液,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。每孔加入20 μL MTT (5 mg/L),避光孵育4 h后,離心(300×g,5 min)棄上清,每孔加100 μL DMSO,振蕩器上避光振蕩10 min,以溶解孔底紫色結(jié)晶,在酶標(biāo)儀490 nm波長檢測各孔吸光度(A)值,并計算細(xì)胞的相對存活率,細(xì)胞相對存活率(%)=(Sal組A值-negative 組A值)/(control組A值-negative 組A值)×100%。

    3.3熒光標(biāo)記的單克隆抗體染色分析T淋巴細(xì)胞活化抗原CD69表達(dá)水平 實驗分組:control組、Con A組和Sal+Con A組,每組設(shè)3個復(fù)孔。Sal同T淋巴細(xì)胞孵育培養(yǎng)4 h后,加入終濃度為5 mg/L的Con A繼續(xù)作用8 h 后收集細(xì)胞。PBS離心(250×g,4 ℃,5 min)洗滌細(xì)胞2 次,重懸于PBS中,加入anti-mouse CD3-PE和anti-mouse CD69-FITC(終濃度為1 μg/106cells),混勻后室溫避光染色30 min,PBS離心(250×g,4 ℃,5 min)洗滌細(xì)胞2次,立即上流式細(xì)胞儀檢測。

    3.4CFDA-SE染色法檢測小鼠T淋巴細(xì)胞增殖情況 調(diào)整細(xì)胞密度為1×1010/L,加入CFDA-SE工作液(終濃度為1 μmol/L),充分混勻,于室溫避光輕輕振蕩10 min。用等體積RPMI-1640培養(yǎng)液終止染色,離心(250×g,4 ℃,5 min),棄上清,相同條件洗滌細(xì)胞2 次后,用RPMI-1640完全培養(yǎng)液重懸,并調(diào)整細(xì)胞密度為3×109/L。實驗分組:control組、Con A組和Sal+ Con A組,每組設(shè)3個復(fù)孔。Sal同T淋巴細(xì)胞孵育培養(yǎng)4 h后,加入終濃度為5 mg/L的Con A繼續(xù)作用72 h 后收集細(xì)胞,上流式細(xì)胞儀檢測。

    3.5H2DCFDA熒光探針檢測小鼠T淋巴細(xì)胞胞內(nèi)ROS的生成量 實驗分組:control組和單純藥物(Sal)組,每組設(shè)3個復(fù)孔。Sal同T淋巴細(xì)胞孵育培養(yǎng)48 h后,棄細(xì)胞培養(yǎng)板內(nèi)上清液,再用板內(nèi)PBS 清洗細(xì)胞后棄上清。用200 μL終濃度為5 μmol/L的H2CFDA將細(xì)胞重懸。將細(xì)胞懸液于室溫避光染色30 min,2 mL PBS離心(250×g,4 ℃,5 min)洗滌細(xì)胞2 次,棄去上清,用200 μL的PBS將細(xì)胞重懸,且立即上流式細(xì)胞儀檢測。

    3.6DIOC6(3)染色檢測不同濃度Sal對T淋巴細(xì)胞線粒體活性的影響 實驗分組:control組和單純藥物(Sal)組,且每組設(shè)3個復(fù)孔。Sal同T淋巴細(xì)胞孵育培養(yǎng)48 h后,棄細(xì)胞培養(yǎng)板內(nèi)上清液,再用板內(nèi)PBS 清洗細(xì)胞后棄上清。用200 μL終濃度為20 nmol/L的DiOC6(3) 將細(xì)胞重懸。將細(xì)胞懸液于室溫避光染色30 min,加2 mL PBS離心(250×g,4 ℃,5 min)洗滌細(xì)胞2 次,棄去上清,用200 μL的PBS將細(xì)胞重懸,立即上流式細(xì)胞儀檢測。

    3.7DiOC6(3)染色檢測DEX 誘導(dǎo)作用下Sal對T淋巴細(xì)胞線粒體膜電位的影響 實驗分組:control組、DEX組和Sal+DEX組,且每組設(shè)3個復(fù)孔。調(diào)整密度為3×109/L的細(xì)胞懸液,接種在96孔板中,每孔190 μL,加入10 μL Sal工作液,在37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中待藥物作用4 h后,加入1 μL濃度為100 μmol/L的地塞米松,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后收集細(xì)胞,用2 mL PBS洗滌2 次(250×g,4 ℃,5 min),棄去上清,用200 μL終濃度為20 nmol/L的DiOC6(3) 將細(xì)胞重懸。將細(xì)胞懸液于室溫避光染色30 min,PBS離心(250×g,4 ℃,5 min)洗滌細(xì)胞2 次,棄去上清,用200 μL的PBS將細(xì)胞重懸,立即上流式細(xì)胞儀檢測。

    3.8小鼠胸腺T淋巴細(xì)胞懸液的制備 取3~4周齡BALB/c小鼠,斷頸處死,浸泡于75%乙醇中進(jìn)行消毒,無菌分離胸腺組織,在含有PBS的無菌平皿中去掉被膜,于200目尼龍網(wǎng)研磨過濾,收集細(xì)胞,PBS離心(250×g,4 ℃,5 min)洗滌細(xì)胞2次。用含10% FBS的RPMI-1640完全培養(yǎng)液將胸腺細(xì)胞重懸,并調(diào)整細(xì)胞密度為3×109/L,即得胸腺細(xì)胞懸液。

    3.9流式細(xì)胞術(shù)檢測Sal 對DEX誘導(dǎo)作用下胸腺T淋巴細(xì)胞凋亡的影響 實驗分組:control組、DEX組和Sal+DEX組,且每組設(shè)3個復(fù)孔。調(diào)整胸腺T淋巴細(xì)胞懸液接種于96 孔板,每孔190 μL體系。加入10 μL Sal工作液,在37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中待藥物作用4 h后,加入終濃度為10-7mol/L的DEX。于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng) 4 h,收集細(xì)胞,用PBS洗滌2 次(250×g,4 ℃,5 min),棄去上清,用200 μL終濃度為20 nmol/L的DiOC6(3) 將細(xì)胞重懸。將細(xì)胞懸液于室溫避光染色30 min,PBS離心(250×g,4 ℃,5 min)洗滌細(xì)胞2 次,棄去上清,用200 μL 的PBS將細(xì)胞重懸,立即上流式細(xì)胞儀檢測。

    3.10流式細(xì)胞術(shù)檢測及數(shù)據(jù)統(tǒng)計 全部數(shù)據(jù)經(jīng) FACSCalibur、FACSAria 型流式細(xì)胞儀和 CellQuest、FACSDivaTM軟件獲取,獲得的數(shù)據(jù)用CellQuest、 ModFit LT 3.2和FCS Express 3.0軟件進(jìn)行分析。采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差 (mean±SD)表示,組間均數(shù)比較則采用單因素方差分析(one-way ANOVA)結(jié)合Student-Newman-Keulsq檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1 不同濃度Sal對小鼠T淋巴細(xì)胞體外細(xì)胞活力的影響

    采用MTT法檢測Sal對小鼠T淋巴細(xì)胞存活的影響。結(jié)果顯示,終濃度分別為80、160及320 μmol/L的Sal同原代小鼠T淋巴細(xì)胞共孵育48 h后所得的細(xì)胞存活率都在90%以上,且與control組相比,無顯著差異,見表1。這一結(jié)果表明,實驗所選濃度范圍內(nèi)Sal對小鼠T淋巴細(xì)胞活力的毒性影響較小。

    表1 MTT法檢測不同濃度Sal對小鼠T淋巴細(xì)胞體外存活率的影響

    2 Sal對Con A誘導(dǎo)作用下小鼠T淋巴細(xì)胞 CD69 分子表達(dá)水平的影響

    小鼠淋巴結(jié)T細(xì)胞在靜息狀態(tài)下很少表達(dá)CD69;經(jīng)單純Con A誘導(dǎo)T淋巴細(xì)胞8 h后, Con A組中表達(dá) CD69 的 T淋巴細(xì)胞百分率顯著增加,與對照組相比較差異顯著(P<0.01);實驗所用各濃度Sal均能升高 Con A 誘導(dǎo)的T細(xì)胞 CD69的表達(dá)水平,且呈一定的劑量依賴關(guān)系,其中,320 μmol/L Sal能明顯提高T淋巴細(xì)胞CD69的表達(dá)水平,與Con A相比較差異顯著(P<0.01),見圖1、表2。

    Figure 1. Effects of Sal on the expression of CD69 on activatited T lymphocytes in response to Con A stimulus.

    表2 Sal對Con A刺激的T淋巴細(xì)胞CD69表達(dá)的影響

    △△P<0.01vscontrol group;*P<0.05,**P<0.01vsCon A group.

    3 Sal 對ConA 誘導(dǎo)作用下T淋巴細(xì)胞體外增殖的影響

    CFDA-SE標(biāo)記技術(shù)利用活細(xì)胞染料CFDA-SE隨細(xì)胞每增殖一代后,其熒光強(qiáng)度減半的原理,結(jié)合流式細(xì)胞術(shù)可動態(tài)追蹤分析淋巴細(xì)胞增殖。用ModFit LT 3.2軟件擬合后,我們計算得出各代細(xì)胞所占的百分率及增殖指數(shù)(proliferation index,PI),即增殖后的細(xì)胞總數(shù)與增殖前的細(xì)胞總數(shù)的比值。CFDA-SE標(biāo)記的T淋巴細(xì)胞經(jīng)Con A誘導(dǎo)刺激72 h后增殖一次的代表性結(jié)果見圖2,正常對照組僅見一個親代峰,無增殖峰,未出現(xiàn)CFDA-SE熒光強(qiáng)度減弱;經(jīng)Con A誘導(dǎo)刺激72 h后, Con A對照組的細(xì)胞出現(xiàn)4 個子代峰;而加入80、160及320 μmol/L的Sal后,各藥物組內(nèi)細(xì)胞分裂的代數(shù)及PI值均有增長(P<0.01),見表3。

    4 Sal 對小鼠T淋巴細(xì)胞胞內(nèi)ROS產(chǎn)生的影響

    H2DCFDA 作為一種活細(xì)胞染料,它在進(jìn)入活細(xì)胞膜內(nèi)能夠被細(xì)胞內(nèi)酯酶作用并轉(zhuǎn)化生成為H2DCF,而后者對細(xì)胞內(nèi)各類ROS敏感且極容易被其氧化并生成2’,7’-dichloroflurorescein,該產(chǎn)物具有強(qiáng)熒光特性,通常結(jié)合熒光顯微鏡或流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞內(nèi)ROS水平,根據(jù)平均熒光強(qiáng)度(mean fluorescence intensity,MFI)的變化來表示細(xì)胞內(nèi)ROS生成量的改變。結(jié)果顯示,各濃度Sal與T淋巴細(xì)胞共孵育作用48 h后均能顯著降低T淋巴細(xì)胞胞內(nèi)ROS 的產(chǎn)量,其MFI值與control組相比顯著降低 (P<0.05),見圖3。

    5 不同濃度Sal對T淋巴細(xì)胞線粒體活性的影響

    DiOC6(3)是一種親脂性熒光染料,它能夠與活細(xì)胞線粒體發(fā)生結(jié)合,其結(jié)合過程依賴于線粒體自身的膜電位水平,線粒體膜電位的變化又反映線粒體的自身活性,即線粒體膜穩(wěn)定性所處的狀態(tài)。一旦線粒體膜穩(wěn)定性變差,即線粒體膜通透性增高致使細(xì)胞趨向發(fā)生凋亡。通常在流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果中DiOC6(3)的MFI發(fā)生左移往往是意味著細(xì)胞線粒體膜穩(wěn)定性變差。本次實驗結(jié)果顯示,單獨Sal作用于T淋巴細(xì)胞均能夠明顯提高其線粒體膜電位水平,且與control組相比較差異顯著(P<0.01),且呈一定劑量依賴關(guān)系,見圖4。

    Figure 2. Effects of Sal on the proliferation of T cells stimulated by Con A for 72 h.

    表3 Sal對Con A誘導(dǎo)72 h條件下T淋巴細(xì)胞體外增殖的影響

    Parent: parent cells; G: the cells at different generations; PI: proliferation index.**P<0.01vsCon A group.

    6 Sal對DEX誘導(dǎo)作用下小鼠 T淋巴細(xì)胞線粒體膜電位的影響

    我們分別用終濃度為80 μmol/L、160 μmol/L和320 μmol/L的Sal與T淋巴細(xì)胞共孵育4 h,然后再用DEX體外誘導(dǎo)T淋巴細(xì)胞24 h,結(jié)果顯示,DEX組DiOC6(3)的MFI值與control組相比顯著降低(P<0.01);各濃度Sal在DEX誘導(dǎo)條件下能顯著提升T淋巴細(xì)胞內(nèi)線粒體膜電位水平(P<0.01),見圖5。

    7 Sal 對DEX誘導(dǎo)作用下小鼠胸腺T淋巴細(xì)胞凋亡的影響

    結(jié)果顯示,control組內(nèi)胸腺T淋巴細(xì)胞發(fā)生凋亡率為(19.36±1.91)%,而經(jīng)DEX誘導(dǎo)后,胸腺T淋巴細(xì)胞的凋亡比率上升至(35.48±2.13)%,與control組相比顯著升高(P<0.01);終濃度為80 μmol/L、160 μmol/L和 320 μmol/L的Sal均可以明顯降低DEX誘導(dǎo)的胸腺T淋巴細(xì)胞凋亡,其細(xì)胞凋亡率分別為(31.34±3.57)%、(28.99±2.54)%和(24.47±2.03)%(P<0.01),見圖6。

    討 論

    T淋巴細(xì)胞源自機(jī)體骨髓中的淋巴樣前祖細(xì)胞,它在胸腺中發(fā)育成熟,并具有高度的異質(zhì)性。它介導(dǎo)特異性免疫應(yīng)答,在T細(xì)胞依賴性抗原誘導(dǎo)的體液免疫應(yīng)答中發(fā)揮重要作用。我們知道,T淋巴細(xì)胞在執(zhí)行特異性免疫應(yīng)答過程中,可分為3個階段:(1)T淋巴細(xì)胞特異性識別抗原階段;(2)T淋巴細(xì)胞活化、增殖和分化階段;(3)效應(yīng)T淋巴細(xì)胞的產(chǎn)生和效應(yīng)階段。幾乎所有免疫相關(guān)病癥的發(fā)生、發(fā)展均與T淋巴細(xì)胞行為的改變相關(guān)。而T淋巴細(xì)胞行為改變的程度又可直接影響著特異性免疫應(yīng)答的模式、強(qiáng)弱和結(jié)果。例如,在機(jī)體感染病原微生物過程中,T淋巴細(xì)胞在識別特異性抗原后能否發(fā)生快速細(xì)胞活化和增殖這一事件是影響機(jī)體免疫系統(tǒng)對外界抗原進(jìn)行免疫防御和免疫應(yīng)答功能的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。另外,T淋巴細(xì)胞的自身活性又是影響T淋巴細(xì)胞發(fā)揮功能的基礎(chǔ)。當(dāng)T淋巴細(xì)胞因過度活化而發(fā)生大量凋亡時,通常會引起機(jī)體對外界病原微生物等抗原物質(zhì)進(jìn)行特異性免疫應(yīng)答反應(yīng)的能力下降。因此,保護(hù)機(jī)體T淋巴細(xì)胞行為對增強(qiáng)機(jī)體對特異性抗原的應(yīng)答能力以及預(yù)防和控制相關(guān)感染性疾病的發(fā)生具有重要意義。

    Figure 3. Effects of Sal on the production of ROS from T-lymphocytes. Mean±SD.n=3.△P<0.05,△△P<0.01vscontrol group.

    Figure 4. Effects of Sal on the mitochondrial activity in T-lymphocytes. Mean±SD.n=3.△△P<0.01vscontrol group.

    Figure 5. Effects of Sal on the mitochondrial membrane potential of T-lymphocytes stimulated by DEX. Mean±SD.n=3.△△P<0.01vscontrol group;##P<0.01vsDEX group.

    紅景天苷是從傳統(tǒng)藏藥紅景天根部提取出來的一種具有苯酚化學(xué)結(jié)構(gòu)的化合物[1],它作為傳統(tǒng)藏藥廣泛應(yīng)用于抗炎[2]、抗氧化[3]和抗疲勞等方面的治療。我們已在前期實驗中證實了Sal對小鼠腹腔巨噬細(xì)胞體外增殖、凋亡、吞噬、ROS和 NO產(chǎn)生等方面均有一定作用[5]。而在Sal與T淋巴細(xì)胞研究方面,目前已有文獻(xiàn)表明,Sal對某些動物模型體內(nèi)T淋巴細(xì)胞型別轉(zhuǎn)換及相關(guān)細(xì)胞因子調(diào)節(jié)具有一定的作用[4-7],但Sal對小鼠原代T淋巴細(xì)胞體外行為的影響卻鮮有報道。因此,我們通過分析Sal小鼠T淋巴細(xì)胞體外活化、增殖、ROS及凋亡的影響,評價其可能的免疫效應(yīng)及作用機(jī)制。

    Figure 6. Effects of Sal on apoptosis of thymus T cells in response to DEX. Mean±SD.n=3.△△P<0.01vscontrol group;##P<0.01vsDEX group.

    Con A是一種重要的多克隆刺激劑,其作用于T淋巴細(xì)胞表面的TCR/CD3復(fù)合體而誘導(dǎo)T淋巴細(xì)胞的活化及增殖。活化的T淋巴細(xì)胞表面表達(dá)早期活化表面分子CD69,它是T淋巴細(xì)胞活化后最早表達(dá)的表面分子,在多克隆刺激劑Con A作用下,T淋巴細(xì)胞會迅速活化,即T淋巴細(xì)胞經(jīng)ConA刺激后30~60 min即可檢到CD69 mRNA,2~3 h表達(dá)于T淋巴細(xì)胞表面,18~24 h表達(dá)量達(dá)到高峰。以CD69的表達(dá)水平作為T淋巴細(xì)胞的早期活化標(biāo)志來研究體外干預(yù)對T淋巴細(xì)胞活化的影響是重要的免疫學(xué)研究方法。本實驗結(jié)果表明,通過對小鼠T淋巴細(xì)胞表面分子CD69表達(dá)百分率變化的檢測,Sal能夠促進(jìn)Con A刺激下T淋巴細(xì)胞表面分子CD69的表達(dá)。這為Sal促進(jìn)T淋巴細(xì)胞早期活化提供了直接證據(jù),并可能對細(xì)胞活化后的細(xì)胞增殖等行為的影響提供實驗依據(jù)。

    初始T淋巴細(xì)胞在病原微生物或免疫刺激原刺激下迅速活化,被活化的T淋巴細(xì)胞迅速進(jìn)入細(xì)胞周期,并通過有絲分裂大量增殖,并進(jìn)一步分化成為效應(yīng)T 淋巴細(xì)胞并快速增殖,然后離開淋巴器官隨血液循環(huán)到達(dá)特異性抗原聚集部分執(zhí)行其免疫效應(yīng)功能。因此本研究中,我們選用CFDA-SE染色結(jié)合流式細(xì)胞術(shù)檢測Sal對Con A刺激下小鼠T淋巴細(xì)胞增殖的影響。實驗結(jié)果表明,Sal 對 Con A 誘導(dǎo)的細(xì)胞增殖有明顯的促進(jìn)作用,可顯著增加細(xì)胞的增殖指數(shù)及子代細(xì)胞所占的比例,并且呈劑量依賴性。謝樂斯等[8]研究表明,Sal具有類絲裂原樣效應(yīng),可增強(qiáng)T淋巴細(xì)胞介導(dǎo)的特異性免疫。這與我們結(jié)果相一致。但Sal對促進(jìn)小鼠T 淋巴細(xì)胞增殖的機(jī)制尚未有研究表明,還有待進(jìn)一步探討。

    ROS能夠起始細(xì)胞的凋亡級聯(lián)反應(yīng)。當(dāng)細(xì)胞產(chǎn)生過量ROS往往導(dǎo)致細(xì)胞發(fā)生凋亡或壞死[9]。而細(xì)胞凋亡是一個主動的由基因決定的自動結(jié)束生命的過程。本研究分別以H2DCFDA染色法和DiOC6(3)染色結(jié)合流式細(xì)胞術(shù)分析Sal 對 T 細(xì)胞ROS產(chǎn)生和對細(xì)胞胞內(nèi)線粒體膜電位的影響。結(jié)果表明,Sal的長時間作用能夠使T淋巴細(xì)胞內(nèi)ROS的產(chǎn)量降低。同時,Sal亦能夠通過加強(qiáng)線粒體膜的穩(wěn)定性來抑制 DEX誘導(dǎo)T淋巴和胸腺細(xì)胞的凋亡。前人研究表明,Sal能清除機(jī)體內(nèi)不同種類的超氧陰離子自由基和羥基自由基[10-11]。本研究結(jié)果與文獻(xiàn)研究結(jié)果相一致,但Sal在抑制T淋巴細(xì)胞胞內(nèi)ROS產(chǎn)生以及保護(hù)細(xì)胞凋亡方面中所參與的環(huán)節(jié)尚未清楚,還需進(jìn)一步工作加以證實。

    綜上所述,Sal能夠明顯提高小鼠T淋巴細(xì)胞的活性,促進(jìn)T淋巴細(xì)胞的體外活化和增殖,抑制細(xì)胞內(nèi)ROS的產(chǎn)生以及DEX誘導(dǎo)的T淋巴細(xì)胞和胸腺細(xì)胞的凋亡。但Sal在抑制T淋巴細(xì)胞胞內(nèi)ROS產(chǎn)生及保護(hù)細(xì)胞免于凋亡方面所參與的環(huán)節(jié)尚未清楚,還需我們進(jìn)一步工作加以證實。

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