薛正楷,楊根慶,張宿義,倪 斌,5
(1.瀘州職業(yè)技術(shù)學(xué)院 白酒學(xué)院,四川 瀘州 646001;2.瀘州市生物醫(yī)學(xué)工程研究所,四川 瀘州 646000;3.新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院第三附屬醫(yī)院檢驗(yàn)科,河南 新鄉(xiāng) 453003;4.瀘州老窖股份有限責(zé)任公司,四川 瀘州 646002;5.瀘州江潭窖酒業(yè)有限公司,四川 瀘州 646005)
目前,中國(guó)白酒有12種香型,其中濃香型白酒以其芳香濃郁、綿柔甘洌、香味協(xié)調(diào)、入口甜、落口綿、尾凈余長(zhǎng)等特點(diǎn),成為中國(guó)人青睞的白酒,其年產(chǎn)量占中國(guó)白酒總產(chǎn)量的70%以上。已有研究表明,濃香型白酒的風(fēng)味物質(zhì)有130余種,其中己酸乙酯是濃香型白酒的主體香物質(zhì),己酸乙酯含量的高低決定著濃香型白酒品質(zhì)的高低[1-3]。
己酸是己酸乙酯的風(fēng)味物質(zhì)前體,其來源于濃香型白酒生產(chǎn)過程中的窖泥微生物,梭菌屬(Clostridium)、芽孢桿菌屬(Lysinibacillus)等屬的專性厭氧微生物成為產(chǎn)己酸微生物的最重要類群,目前已發(fā)現(xiàn)的產(chǎn)己酸微生物包括Lysinibacillus fusiformis、Clostridium kluyveri、Lysinibacillus sphaericus、Clostridium sartagoneforme等菌株,這些菌株皆為專性厭氧微生物。
σ因子是一類啟始細(xì)菌核糖核酸(ribonucleic acid,RNA)合成的蛋白質(zhì),其唯一功能是啟始特定的RNA聚合酶結(jié)合到特定環(huán)境因素誘導(dǎo)下的特定基因的啟動(dòng)子,啟動(dòng)特定基因在特定時(shí)空條件下的轉(zhuǎn)錄,以利微生物抗環(huán)境脅迫的不利影響,被其選擇表達(dá)控制的基因決定于基因的內(nèi)在功能和環(huán)境信號(hào)的雙重作用。σ70因子是一類管家基因SigA基因表達(dá)的分子質(zhì)量70 kDa的蛋白質(zhì),控制細(xì)胞類大多數(shù)基因的轉(zhuǎn)錄合成;σB屬于選擇性σ因子,為革蘭氏陽性菌特有的一類轉(zhuǎn)錄起始蛋白,其基因?yàn)镾igB,在枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)細(xì)胞內(nèi),σB調(diào)節(jié)大量一般應(yīng)激操縱子的轉(zhuǎn)錄,從而促進(jìn)轉(zhuǎn)錄的200多個(gè)基因參與熱、酸、乙醇、鹽和氧化應(yīng)激性[4-7]。
近年,對(duì)轉(zhuǎn)錄因子進(jìn)行易錯(cuò)聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(erro-prone polymerasechainreaction,epPCR)突變篩選有義突變,成為微生物育種的重要方法。張賽等[8]運(yùn)用定向進(jìn)化-易錯(cuò)PCR方法獲得了耐高溫和低pH的突變酶,其酶活力比野生酶分別提高了6.5倍、21.0倍和12.6倍;王睿等[9]用同樣的進(jìn)化方法提高了華根霉Rhizopus chinensisCCTCC M201021的脂肪酶活力,其最佳突變株脂肪酶酶活與野生菌株相比分別提高2倍和4倍;汪先薇[10]利用易錯(cuò)PCR構(gòu)建突變庫時(shí),獲得大片段的基因簇突變庫;王聰?shù)萚11]利用實(shí)時(shí)-熒光定量-聚合酶鏈反應(yīng)(real time-fluorescence quantitive-polymerase chainreaction,RT-FQ-PCR)對(duì)耐高滲基因的表達(dá)變化研究發(fā)現(xiàn),T酵母能夠耐高滲是由于甘油的合成迅速同時(shí)外排通道被關(guān)閉,使得胞內(nèi)甘油的含量升高,保證T酵母的正常生長(zhǎng);李璟等[12]采用易錯(cuò)PCR方法對(duì)枯草芽孢桿菌脂肪酶基因lipaseA進(jìn)行定向進(jìn)化,突變株4B2發(fā)酵上清液轉(zhuǎn)化生物柴油的轉(zhuǎn)酯效率較對(duì)照菌pET 32a-lipaseA有明顯提高,前者為79.5%,后者為49.72%。
目前,己酸菌育種菌均采用窖泥分離并產(chǎn)酸鑒定,發(fā)酵條件優(yōu)化后,直接用于生產(chǎn)[13-17],并對(duì)其抗脅迫能力的研究及基因工程育種,國(guó)內(nèi)外少見報(bào)道。由于產(chǎn)己酸微生物在窖池中伴隨糟醅的發(fā)酵過程,始終處于低pH、高乙醇濃度等高脅迫不良環(huán)境中,如何提高抗脅迫基因的表達(dá),成為產(chǎn)己酸微生物生死悠關(guān)分子進(jìn)化策略。為了提高產(chǎn)己酸菌的抗脅迫能力,因此,本研究嘗試以Lysinibacillus fusiformis為出發(fā)菌,利用易錯(cuò)PCR篩選有義突變技術(shù)分別轉(zhuǎn)染SigA和SigB基因,獲得抗高乙醇和低pH脅迫的優(yōu)良己酸產(chǎn)生工程菌,為己酸的選育提供理論依據(jù)和應(yīng)用基礎(chǔ)。
1.1.1 質(zhì)粒與菌株
穿梭質(zhì)粒pBE3-MCS:由南昌大學(xué)生命科學(xué)院提供;菌株Lysinibacillusfusiformis:由本研究所分離并保存;pET32a(+)-SigA和pET32a(+)-SigB:由本研究所構(gòu)建并保存。
1.1.2 培養(yǎng)基
LB培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g,酵母浸粉5 g,氯化鈉10 g,蒸餾水1 000 mL,調(diào)pH 7.0±0.2,固體培養(yǎng)基加入15 g瓊脂,121℃滅菌30 min。
改良麥?zhǔn)吓囵B(yǎng)基:葡萄糖1.0 g,KCl 1.8 g,酵母膏4 g,醋酸鈉15 g,固體培養(yǎng)基加入瓊脂15 g,蒸餾水1 000 mL,pH自然,121℃滅菌30 min,使用前加入20 mL無水乙醇。
乙酸鈉培養(yǎng)基:葡萄糖1.0 g,KCl 1.8 g,酵母膏2.5 g,醋酸鈉8.2 g,固體培養(yǎng)基加入瓊脂15 g,蒸餾水1 000 mL,pH自然,121℃滅菌30 min,使用前加入10 mL無水乙醇。
1.1.3 試劑
限制性核酸內(nèi)切酶XbaI、HindIII、KpnI:美國(guó)Thermos Fisher Scientific公司;T4脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)連接酶、DNALigationKitVer.1(CodeNo.6021):大連TaKaRa公司;小量質(zhì)粒抽提試劑盒、普通瓊脂糖凝膠回收試劑盒(DP209)、DNA純化試劑盒、脫氧核糖核苷三磷酸(deoxy-ribonucleoside triphosphate,dNTP)和DNA Marker:天根生化有限公司;易錯(cuò)PCR試劑盒:天恩澤生物技術(shù)有限公司;PCR引物:由捷瑞生物工程有限公司合成;卡那霉素(分析純):湖北信康醫(yī)藥化工有限公司;氨芐青霉素(分析純):杭州百思生物技術(shù)有限公司。
BSD-YF3600全溫培養(yǎng)搖床:上海博迅醫(yī)療生物儀器股份有限公司;TGL-16M臺(tái)式高速冷凍離心機(jī):金壇市良友儀器有限公司;WD-9413A型凝膠成像分析儀、DYY-8C電泳儀:北京市六一儀器廠;NanoDrop 2000微量紫外分光光度計(jì):美國(guó)Bio-Rad公司;SmartSpecPlus核酸蛋白分析儀:美國(guó)伯樂公司;SC-B梯度PCR儀:杭州艾普儀器設(shè)備股份有限公司;GC-2014氣相色譜儀:日本島津公司;YQX-II厭氧培養(yǎng)箱:上海衡柏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;Scientz-2C基因?qū)雰x:寧波新芝生物科技股份有限公司。
1.3.1 重組菌的構(gòu)建篩選與引物的設(shè)計(jì)
Lysinibacillus fusiformis SigA/SigB原位超表達(dá)菌株構(gòu)建按照如下流程進(jìn)行。
為了從pET32a(+)-SigA和pET32a(+)-SigB重組質(zhì)粒獲得目的基因SigA和SigB基因,參考pET32a(+)質(zhì)粒、SigA、SigB及酶切位點(diǎn)基因序列,采用Primerpremier5.0軟件設(shè)計(jì)SigA和SigB基因的上下游引物,結(jié)果見表1。SigA和SigB基因的上下游引物分別帶有XbaI、HindIII和KpnI酶切位點(diǎn),設(shè)計(jì)的引物由上海捷瑞生物技術(shù)公司合成。
表1 擴(kuò)增SigA/SigB基因的引物設(shè)計(jì)Table 1 Design of primer sequences for amplification of SigA/SigBgene
1.3.2 pET32(+)-SigA/SigB重組質(zhì)粒的提取
取E.coliBL21(DE3)/pET32a(+)-SigA/SigB,單菌落接種至5 mL含100 μg/mL氨芐青霉素LB培養(yǎng)基中,37℃、200 r/min振蕩培養(yǎng)12 h,采用天根公司質(zhì)粒小提試劑盒DP103)提取質(zhì)粒pET32a(+)-SigA/SigB,采用微量紫外分光光度計(jì)分別測(cè)定重組質(zhì)粒濃度和波長(zhǎng)分別為260 nm、280 nm處的吸光度值比值(A260nm/A280nm)。
1.3.3 易錯(cuò)PCR條件的優(yōu)化
在PCR過程中Mg2+可以穩(wěn)定非互補(bǔ)的堿基對(duì),而Mn2+可以降低聚合酶對(duì)模板的特異性,因而調(diào)整兩種離子的濃度,可以獲得不同突變頻率的多樣性文庫。本研究選擇Mn2+濃度為0.3~0.8mmol/L,Mg2+濃度為3~7mmol/L作為梯度進(jìn)行epPCR試驗(yàn)。采用數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)(dataprocessingsystem,DPS)7.5對(duì)Mn2+濃度和Mg2+濃度進(jìn)行2因素6水平U6(62)的均勻試驗(yàn)設(shè)計(jì),其設(shè)計(jì)方案見表2。
表2 U6(62)均勻試驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 2 U6(62)design of uniform experiments
以重組質(zhì)粒pET-32a(+)-SigA/SigB為模板,按下列PCR體系和條件進(jìn)行ep PCR。反應(yīng)體系:10×Mix 5 μL,三磷酸腺嘌呤脫氧核苷酸(deoxyadenosine triphosphate,dATP)、三磷酸脫氧胸苷(deoxy-thymidine triphosphate,dTTP)、三磷酸脫氧鳥苷酸(deoxyguanosine triphosphate,dGTP)和三磷酸脫氧胞苷(deoxycytidine triphosphate,dCTP)各2.5 μL,模板1 μL,上下游引物各1 μL,Mn2+和Mg2+按表2進(jìn)行添加,Taq酶2 μL,補(bǔ)雙蒸水至50 μL。
反應(yīng)條件:SigB基因:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性1 min,45℃退火1 min,72℃延伸2 min,40個(gè)循環(huán);72℃再延伸10 min。SigA基因:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性1 min,58℃退火1 min,72℃延伸1.2 min,32個(gè)循環(huán);72℃再延伸10 min。
利用1%瓊脂糖電泳確認(rèn)PCR產(chǎn)物,采用天根膠回收試劑盒回收特異性高條件下的目的基因片段,用已回收片段為模板按第一輪ep PCR方案進(jìn)行第二輪ep PCR,選取特異性高的ep PCR條件進(jìn)行第二輪ep PCR,回收二輪易錯(cuò)產(chǎn)物于-20℃?zhèn)溆谩?/p>
1.3.4SigA/SigB基因ep PCR突變文庫的構(gòu)建
雙酶切:取第二輪易錯(cuò)PCR純化產(chǎn)物SigA、SigB基因和穿梭載體pBE3-MCS,分別采用XbaI/HindIII和KpnI/HindIII進(jìn)行雙酶切,酶切體系和條件見表3。酶切產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳確定酶切效果。
純化:取酶切效果良好產(chǎn)物,采用天根公司普通瓊脂糖凝膠回收試劑盒(DP209)對(duì)SigA、SigB基因和穿梭載體pBE3-MCS的雙酶切產(chǎn)物進(jìn)行回收,對(duì)回收產(chǎn)物進(jìn)行DNA濃度和純度檢測(cè)。
表3 易錯(cuò)PCRSigA/SigB基因和pBE3-MCS雙酶切體系及條件Table 3 Double enzyme digestion system and conditions of error-prone PCRSigA/SigBgene and pBE3-MCS
連接:按照DNA Ligation Kit Ver.1(Code No.6021)說明書,各取8 μLSigA和SigB純化酶切產(chǎn)物,分別加入2 μL pBE3-MCS片段配制成混合溶液,加入10 μL溶液I,充分混勻,16℃反應(yīng)30 min后,分別加入1 μL溶液III混勻。
轉(zhuǎn)化:各取10μL連接體系加入到200μLBL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞中進(jìn)行轉(zhuǎn)化,各取100μL轉(zhuǎn)化細(xì)胞涂至含100μg/mL氨芐青霉素的LB平板上,37℃培養(yǎng)18 h,獲得SigA和SigB基因易錯(cuò)PCR突變文庫。
菌落PCR驗(yàn)證:各取含100 μg/mL氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基3 mL注入E.coliBL21(DE3)/pBE3-ep-SigA/SigB平板中,洗下單菌落加入到10 mL試管,補(bǔ)充含100 μg/mL的LB液體培養(yǎng)基至5 mL,于37℃、200 r/min條件下振蕩培養(yǎng)12 h后,進(jìn)行菌液PCR鑒定。
雙酶切驗(yàn)證:經(jīng)菌液PCR驗(yàn)證后,挑取陽性克隆子的重組質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切驗(yàn)證。
1.3.5L.fusiformis-pBE3-ep-SigA/SigB工程菌的構(gòu)建
提取陽性克隆子菌液質(zhì)粒,經(jīng)電轉(zhuǎn)化導(dǎo)入L.fusiformis感受態(tài)細(xì)胞中。電轉(zhuǎn)化參數(shù)為電壓2 000 V,電容25 μF,電阻200 Ω,時(shí)間5.2 ms。取200 μL轉(zhuǎn)化液涂至含卡那霉素(50μg/mL)和2%乙醇的乙酸鈉培養(yǎng)基平板,34℃培養(yǎng)16h。
1.3.6 抗高乙醇和低pH己酸產(chǎn)生菌株L.fusiformis-pBE3-ep-SigA/SigB的篩選
己酸含量的檢測(cè):參考薛正楷等的方法[15]。
乙醇耐受性的測(cè)定:取2mL含2%乙醇的改良麥?zhǔn)吓囵B(yǎng)基加入到1.3.5的平板上,洗滌克隆子,取200 μL洗滌液加入到含2%、4%、6%、8%、10%、12%乙醇和50 μg/mL卡那霉素的10mL乙酸鈉培養(yǎng)基中,90℃水浴5min,置于0.08MPa、34℃真空培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)1 d后,按50 μg/mL加入卡那霉素繼續(xù)培養(yǎng)10 d,觀察氣泡出現(xiàn)時(shí)間并檢測(cè)10 d發(fā)酵液中己酸含量。
pH耐受性的測(cè)定:按5%接種量接種至pH值為2.5、3.0、3.5、4.0、4.5和5.0的10 mL最大乙醇含量且能產(chǎn)氣泡的改良麥?zhǔn)吓囵B(yǎng)基中,培養(yǎng)至產(chǎn)氣泡,取pH值耐受性最高且產(chǎn)氣改良麥?zhǔn)吓囵B(yǎng)基涂板,隨機(jī)挑選10個(gè)單克隆子至10 mL含8%的乙醇和50 μg/mL的卡那霉素改良麥?zhǔn)吓囵B(yǎng)基中,培養(yǎng)10 d,檢測(cè)己酸含量。
1.3.7 抗高乙醇和低pH己酸產(chǎn)生菌株L.fusiformis-pBE3-ep-SigB的鑒定
菌落PCR鑒定:采用下列PCR體系和條件對(duì)1.3.5項(xiàng)下單克隆菌液,進(jìn)行菌液PCR鑒定,反應(yīng)體系:2×Tsingke mastermix25μL,模板1μL,上下游引物各1μL,菌液0.3μL,補(bǔ)雙蒸水到50 μL;反應(yīng)條件同1.3.3。
測(cè)序結(jié)果分析:取PCR鑒定陽性菌液1 mL送上海生工生物工程有限公司進(jìn)行基因測(cè)序,
將測(cè)序結(jié)果與美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(National Center of Biotechnology Information,NCBI)數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對(duì)分析。
按照均勻試驗(yàn)設(shè)計(jì),對(duì)L.fusiformis SigA/SigB基因進(jìn)行隨機(jī)突變,結(jié)果見圖1。
圖1 SigA/SigB基因易錯(cuò)PCR結(jié)果Fig.1 Results of error-prone PCR ofSigA/SigBgene
由圖1A可知,SigB基因第一輪PCR產(chǎn)物中,所有條件下的SigB基因均較清晰,本試驗(yàn)選用試驗(yàn)5號(hào)條件進(jìn)行SigB基因第二輪PCR擴(kuò)增,電泳檢測(cè)結(jié)果見圖1B。由圖1B可知,SigB第二輪易錯(cuò)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物以試驗(yàn)5號(hào)條件為最好,因此,本試驗(yàn)采用試驗(yàn)5號(hào)條件進(jìn)行第二輪SigB基因的易錯(cuò)PCR擴(kuò)增。由圖1C可知,在SigA基因的第一輪PCR產(chǎn)物中,試驗(yàn)5號(hào)產(chǎn)物濃度較高,且特異性較高,因此本試驗(yàn)采用試驗(yàn)5號(hào)條件進(jìn)行第二輪PCR擴(kuò)增,結(jié)果見圖1D。由圖1D可知,相對(duì)于其他易錯(cuò)PCR體系而言,試驗(yàn)4號(hào)為SigA基因較為適宜的第二輪PCR條件,因此,本試驗(yàn)采用試驗(yàn)4號(hào)進(jìn)行SigA基因的第二輪PCR擴(kuò)增。
以優(yōu)化的易錯(cuò)PCR條件和第一輪易錯(cuò)PCR產(chǎn)物為模板,分別對(duì)SigA和SigB為模板進(jìn)行第二輪PCR擴(kuò)增,將第二輪擴(kuò)增產(chǎn)物擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行膠回收純化,將純化產(chǎn)物和pBE3-MCS分別用XbaI/HindIII和KnpI/HindIII進(jìn)行雙酶切,并對(duì)酶切產(chǎn)物采用Takara連接試劑盒進(jìn)行連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)大腸桿菌BL21,按每板100 μL接種至含50 μg/mL卡那霉素平板中,34℃培養(yǎng)14 h,觀察轉(zhuǎn)化板菌落,獲得SigA/SigB易錯(cuò)PCR突變庫。
取1mL含50 μg/mL卡那霉素LB培養(yǎng)基,加入易錯(cuò)PCR突變庫平板中,洗出易錯(cuò)PCR突變庫平板克隆子,接種至3支5mL含50μg/mL卡那霉素LB培養(yǎng)基中,于34℃、180r/min條件下培養(yǎng)14 h,取3 μL進(jìn)行菌液PCR鑒定。提取PCR鑒定正確的菌液質(zhì)粒,進(jìn)行雙酶切鑒定,結(jié)果見圖2。
由圖2可知,提取的重組質(zhì)粒PBE3-ep-SigA和PBE3-ep-SigB分別經(jīng)XbaI-HindIII和KnPI-HindIII雙酶切后,在1100bp左右(圖2A)和900 bp多(圖2B)有條帶,分別與SigA和SigB基因大小相符合,說明工程菌E.coliBL21(DE3)/PBE3-ep-SigA/SigB構(gòu)建成功。
圖2 重組質(zhì)粒PBE3-ep-SigA和PBE3-ep-SigB雙酶切結(jié)果Fig.2 Results of double enzyme digestion of recombinant plasmid PBE3-ep-SigAand PBE3-ep-SigB
檢 測(cè) 菌 株L.fusiformis、L.fusiformis-PBE3-SigA、L.fusiformis-PBE3-SigB、L.fusiformis-PBE3-ep-SigA和L.fusiformis-PBE3-ep-SigB發(fā)酵10 d后發(fā)酵液中的己酸含量,結(jié)果見表4。
表4 不同脅迫條件下的己酸產(chǎn)量比較Table 4 Comparison of caproic acid yield under different stress conditionsmg/100 mL
由表4可知,在抗乙醇脅迫條件下,出發(fā)菌L.fusiformis的抗乙醇最高濃度為4%,其己酸含量為264.35 mg/mL;L.fusiformis-PBE3-SigA和L.fusiformis-PBE3-SigB的抗乙醇濃度為6%左右,其己酸濃度分別為175.45 mg/mL和198.46 mg/mL;L.fusiformis-PBE3-ep-SigA和L.fusiformis-PBE3-ep-SigB的耐乙醇濃度為8%左右,其己酸濃度為137.45 mg/mL和277.68 mg/mL,因此,出發(fā)菌轉(zhuǎn)入SigA和SigB基因獲得的重組菌株及其易錯(cuò)PCR重組突變菌株均能提高其在脅迫條件的產(chǎn)己酸能力,且L.fusiformis-ep-SigB在高乙醇濃度條件下的產(chǎn)己酸能力高于L.fusiformis-PBE3-ep-SigA達(dá)102%;在抗pH值脅迫條件下,出發(fā)菌L.fusiformis和重組菌L.fusiformis-PBE3-SigA、L.fusiformis-PBE3-SigB的抗pH均為3.5,其己酸產(chǎn)量分別為23.54mg/100mL、86.36mg/100mL和96.43mg/100mL,但重組菌己酸產(chǎn)量高于出發(fā)菌,易錯(cuò)PCR重組菌L.fusiformis-PBE3-ep-SigA和L.fusiformis-PBE3-ep-SigB的抗pH值分別為3.0和2.5,其己酸產(chǎn)量分別為35.44 mg/100 mL和77.00 mg/100 mL,因此在pH脅迫條件下,易錯(cuò)PCR重組菌L.fusiformis-PBE3-ep-SigB產(chǎn)己酸量高于易錯(cuò)PCR重組菌L.fusiformis-PBE3-ep-SigA達(dá)263.7%,因此,本研究采用L.fusiformis-PBE3-ep-SigB菌株進(jìn)行后續(xù)研究。
從L.fusiformis-PBE3-ep-SigB突變庫中,隨機(jī)挑取6個(gè)單克隆進(jìn)行菌落PCR鑒定,結(jié)果見圖3。由圖3可知,PCR產(chǎn)物電泳條帶與目的基因大小相符,說明L.fusiformis-PBE3-ep-SigB單克隆菌株構(gòu)建成功。
圖3 L.fusiformis-PBE3-ep-SigB的PCR鑒定結(jié)果Fig.3 Results of PCR identification ofL.fusiformis-PBE3-ep-SigB
經(jīng)菌落PCR驗(yàn)證正確的菌株L.fusiformis-PBE3-ep-SigB在8%乙醇濃度,pH3.5條件下發(fā)酵10 d,采用氣相色譜測(cè)定發(fā)酵液中的己酸含量,結(jié)果見表5。由表5可知,在高酸度和高乙醇濃度發(fā)酵條件下,L.fusiformisPBE3-ep-SigB產(chǎn)己酸能力顯著高于L.fusiformis-PBE3-SigB和L.fusiformis(P<0.01),說明成功選育高抗性產(chǎn)己酸工程菌株。
表5 高抗性產(chǎn)己酸菌株的己酸產(chǎn)量測(cè)定結(jié)果Table 5 Determination results of caproic acid yield for caproic acid-producing strain with high resistant
取取己酸產(chǎn)量最高的菌酸菌菌液500 μL,送上海生工進(jìn)行測(cè)序結(jié)果,將測(cè)序結(jié)果采用NCBI工具blast(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)進(jìn)行比較,結(jié)果見圖4。
圖4 L.fusiformis-ep-SigB菌株突變株測(cè)序結(jié)果Fig.4 Sequencing results of mutant strain ofL.fusiformis-ep-SigB strain
由圖4A可知,L.fusiformis-ep-SigB突變株的易錯(cuò)基因(SigBv)與出發(fā)基因(SigB)相比,有7個(gè)點(diǎn)突變位點(diǎn),分別是95位(C→G)、232位(A→T)、324位(T→A)、505位(C→G)、545位(C→G)、602位(G→C)、723位(A→T);由圖4B可知,其蛋白質(zhì)序列有44位(T→R)、81位(N→Y)、100位(H→Q)、176位(H→D)、198位(T→R)、208位(R→P)、251位(Q→H)共7個(gè)氨基酸發(fā)生突變。
σ因子SigA和SigB基因經(jīng)優(yōu)化的易錯(cuò)PCR條件進(jìn)行兩輪易錯(cuò)PCR突變,分別建立SigA和SigB的易錯(cuò)PCR突變庫,通過epSigA/SigB基因與表達(dá)載體pBE3-MCS連接,構(gòu)建L.fusiformis-PBE3-ep-SigA和L.fusiformis-PBE3-ep-SigB菌體庫,將兩種菌體庫在pH值2.0~5.0和乙醇含量2%~12%條件下進(jìn)行篩選。結(jié)果表明,L.fusiformis-PBE3-ep-SigB重組菌株最高耐乙醇含量為8%左右,最低耐pH值為2.5左右;當(dāng)乙醇含量為8%、pH值為3.5時(shí),L.fusiformis-PBE3-ep-SigB重組菌株的己酸產(chǎn)量到達(dá)(254.35±39.74)mg/100 mL,為出發(fā)菌L.fusiformis己酸產(chǎn)量(93.62±10.33)mg/100 mL的271.68%,表明L.fusiformis-PBE3-ep-SigB重組菌株是具有較強(qiáng)的抗高乙醇濃度和低pH值脅迫能力的優(yōu)良己酸產(chǎn)生菌株。
1]FAN W,QIAN M C.Characterization of aroma compounds of Chinese"Wuliangye"and"Jiannanchun"liquorsbyaroma extract dilution analysis[J].J Agric Food Chem,2006,54(7):2695-704.
2]ZHAO C,YAN X,YANG S,et al.Screening ofBacillus,strains from Luzhou-flavor liquor makingfor high-yield ethyl hexanoate and low-yield propanol[J].LWT-Food Sci Technol,2017,77:60-66.
3]中華人民共和國(guó)衛(wèi)生部,中國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)化管理委員會(huì).GB/T 10781.1—2006濃香型白酒[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2006.
4]胡曉龍.濃香型白酒窖泥中梭菌群落多樣性與窖泥質(zhì)量關(guān)聯(lián)性研究[D].無錫:江南大學(xué),2015.
5]ABRAM F,STARR E,KARATZAS K,et al.Identification of components of the sigma B regulon inListeria monocytogenesthat contribute to acid and salt tolerance[J].Appl Environ Microbiol,2008,74(22):6848-6858.
6]LARISCH C,NAKUNST D,HüSER A T,et al.The alternative sigma factorSigBofCorynebacterium glutamicummodulates global gene expression during transition from exponential growth to stationary phase[J].BMC Genom,2007,8(1):4-4.
[7]ZHANG Q,FENG Y,ZHOU Q,et al.Contribution of sigma b to environmental stress tolerance inListeria monocytogenes-a review[J].Acta Microbiol Sinica,2009,49(10):1282-1288.
[8]張 賽,邢克克,胡亞冬,等.基于易錯(cuò)PCR的黃曲霉毒素解毒酶體外分子定向進(jìn)化[J].生物工程學(xué)報(bào),2011,27(7):1100-1108.
[9]王 睿,喻曉蔚,沙 沖,等.定向進(jìn)化-易錯(cuò)PCR方法提高華根霉Rhizopus chinensisCCTCC M201021脂肪酶的活力[J].生物工程學(xué)報(bào),2009,25(12):1892-1899.
[10]汪先薇.一種利用整合酶位點(diǎn)特異性重組構(gòu)建隨機(jī)突變庫的方法[J].基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué),2017(6):2440-2446.
[11]王 聰,王 檬,赫景鈺,等.醬油釀造風(fēng)味菌株T酵母耐鹽機(jī)理的初步研究[J].中國(guó)釀造,2015,34(2):26-30.
[12]李 璟,童 晉,羅明銀,等.枯草芽孢桿菌脂肪酶基因lipaseA突變文庫構(gòu)建及其生物柴油轉(zhuǎn)酯研究[J].浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2016,28(5):864-869.
[13]HU X L,DU H,XU Y.Identification and quantification of the caproic acid-producing bacteriumClostridium kluyveriin the fermentation of pit mud used for Chinese strong-aroma type liquor production[J].Int J Food Microbiol,2015,214:116-122.
[14]彭 兵,祝 熙,李忠奎,等.窖泥高產(chǎn)己酸菌分離鑒定及培養(yǎng)條件優(yōu)化的研究[J].中國(guó)釀造,2016,35(5):43-46.
[15]薛正楷,薛 原.一株窖泥己酸菌株的多相鑒定及產(chǎn)酸研究[J].釀酒科技,2016(6):65-71.
[16]趙 輝,敞 顏,王 葳,等.濃香型白酒窖泥中高產(chǎn)己酸兼性厭氧細(xì)菌的分離鑒定[J].食品科學(xué),2012,33(5):177-182.
[17]劉 雪,楊愛華,曹建全,等.己酸菌的分離篩選及發(fā)酵條件優(yōu)化[J].釀酒,2016,43(6):37-40.