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    應用瓊脂糖微球抗體篩選原代乳鼠肺微血管內(nèi)皮細胞新方法的建立

    2018-06-02 02:06:07劉姍劉艷霞閆承慧田孝祥劉丹劉美麗張坡韓雅玲
    解放軍醫(yī)學雜志 2018年5期
    關鍵詞:貼壁瓊脂糖微血管

    劉姍,劉艷霞,閆承慧,田孝祥,劉丹,劉美麗,張坡,韓雅玲

    血管內(nèi)皮細胞覆蓋于血管內(nèi)膜表面,是研究血管生物學的常用模型。血管內(nèi)皮細胞不僅是血液與血管之間的機械屏障,還分泌縮血管因子和舒血管因子與自身細胞受體結(jié)合,在血管通透性、炎癥反應、血管生長等方面發(fā)揮重要作用[1-3]。微血管內(nèi)皮細胞是研究血管生長、通透性等的重要模型[4-6]。本研究采用瓊脂糖微球抗體篩選法,建立了一種簡便、高效的分離肺微血管內(nèi)皮細胞(pulmonary microvascular endothelial cells,PMVECs)的方法,現(xiàn)報告如下。

    1 材料與方法

    1.1 實驗動物 小于1周齡的清潔級健康C57BL/6乳鼠(購自遼寧長生生物有限公司),實驗動物許可證號:SCXK(遼)2015-0001。

    1.2 主要試劑與儀器 蛋白A/G瓊脂糖微球、Hanks液、膠原酶Ⅰ(美國Thermo Scientific公司),大鼠抗小鼠CD31抗體(美國BD Pharmingen公司),BSA牛血清白蛋白、CCK-8(中國Beyotime公司),異氟烷(中國河北一品制藥股份有限公司),內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基、胎牛血清、抗生素、生長因子(美國Sciencell公司),胰蛋白酶(中國上海生工公司),明膠(美國Sigma公司),基質(zhì)膠(美國Corning公司),山羊抗CD31抗體、兔抗血管性血友病因子(vWF)抗體、Cy3山羊抗兔熒光二抗、Cy3驢抗山羊熒光二抗、DAPI、抗熒光淬滅封片劑(中國谷歌生物公司),常溫離心機(英國Grant-Bio公司),低溫離心機、酶標儀(德國Eppendorf公司),旋轉(zhuǎn)混合儀(中國寧波新芝公司),倒置相差顯微鏡、共聚焦顯微鏡(日本Olympus公司),CO2培養(yǎng)箱(德國Heraeus公司)。

    1.3 乳鼠PMVECs的分離與培養(yǎng)

    1.3.1 制備CD31抗體瓊脂糖微球 在超凈臺內(nèi),取無菌EP管,將20μl瓊脂糖微球加入400μl 0.1%BSA溶液中,將EP管置于旋轉(zhuǎn)混合儀上旋轉(zhuǎn)1min;靜止5min后吸除上清,用0.1% BSA重懸,置于旋轉(zhuǎn)混合儀旋轉(zhuǎn)。該操作重復3次,盡量去除瓊脂糖微球溶液中對細胞有害的疊氮化鈉。上述EP管中加入10μl的CD31抗體,制備成CD31抗體瓊脂糖微球,置于旋轉(zhuǎn)混合儀上旋轉(zhuǎn)混合,于4℃冰箱內(nèi)孵育過夜。

    1.3.2 原代PMVECs的培養(yǎng) 將乳鼠用異氟烷麻醉后,以75%乙醇浸泡處死。在超凈臺內(nèi)解剖乳鼠,用無菌生理鹽水沖洗肺臟,盡量去除血細胞,取肺臟邊緣組織置于含有Hanks液的100mm培養(yǎng)皿中。然后用無菌剪刀盡量將肺臟剪碎約1min。先將25ml的0.2%膠原酶置入50ml離心管中,在37℃水浴箱中預熱。再將剪好的肺臟放入預熱的膠原酶中,在37℃、200r/min的搖床內(nèi)孵育45min。用無菌的玻璃研磨器研磨肺組織懸液,小心避免起泡沫。將研磨后的肺組織放入無菌的15ml離心管中,4℃、1300r/min離心8min,吸盡上清及未研碎的組織,剩下細胞沉淀。用1ml的0.1%冰BSA溶液重懸細胞,4℃、1300r/min離心8min,吸盡上清,剩下的沉淀為肺內(nèi)混合細胞(本步驟重復3次)。用1ml的PBS溶液重懸細胞,吸至新的1.5ml無菌EP管中,再加入50μl CD31抗體瓊脂糖微球,將EP管置于旋轉(zhuǎn)混合儀中,室溫旋轉(zhuǎn)混合10min,使PMVECs特異性地與CD31抗體瓊脂糖微球結(jié)合。1000r/min離心2min后,混合液分3層,吸盡上清及下層未與微球結(jié)合的細胞,留取中層微球至新的EP管中。用1ml的內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基重懸微球細胞,盡量使細胞與微球分離,將混合液加入含1ml內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基的6孔板(0.1%明膠包被)中。PMVECs的分離示意圖見圖1。

    圖1 PMVECs分離示意圖Fig.1 Sketch of isolating PMVECs

    1.3.3 傳代培養(yǎng) 細胞貼壁后,用PBS洗3次,更換新鮮的內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基,去除殘留的微球。當內(nèi)皮細胞融合達到80%時,吸盡培養(yǎng)基,PBS洗3次,加入0.25%胰酶消化3min,加入內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基及時終止消化。1000r/min離心5min,用內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基重懸細胞,按照1:2比例傳代至6孔板內(nèi)。

    1.4 形態(tài)學觀察 用倒置顯微鏡觀察細胞生長狀態(tài)和形態(tài)學變化。將倒置顯微鏡調(diào)至100倍放大倍數(shù),觀察單個細胞形態(tài)及整體細胞生長情況并拍照。

    1.5 細胞鑒定

    1.5.1 免疫熒光染色 用免疫熒光染色法分別檢測CD31、vWF的表達。用第2代細胞制備細胞爬片。4%多聚甲醛固定15min,PBS洗3次,0.2% Triton X-100穿膜通透15min,PBS洗3次,5%山羊血清封閉,室溫孵育30min。加入CD31抗體(1:100)100μl,4℃冰箱內(nèi)孵育過夜。PBS洗3次,加入Cy3驢抗山羊熒光二抗(1:100)100μl,室溫避光孵育1h。PBS洗3次。DAPI(1:1000)100μl染細胞核30s。最后用抗熒光淬滅封片劑封片,熒光顯微鏡觀察、拍照。vWF免疫熒光染色方法同上,采用Cy3山羊抗兔熒光二抗。兩種抗體免疫熒光染色各隨機選取5個視野,重復3次,分別計算PMVECs陽性率。PMVECs陽性率=(陽性細胞數(shù)/細胞總數(shù))×100%

    1.5.2 PMVECs體外血管形成實驗 實驗前1d將基質(zhì)膠放在冰上,置于4℃冰箱過夜融化。用預冷的槍頭取出基質(zhì)膠,在24孔板上每孔加入289μl基質(zhì)膠。將24孔板置于37℃培養(yǎng)箱內(nèi)孵育30min,使基質(zhì)膠凝固。輕輕滴加PMVECs細胞懸液300μl(105個細胞)。采用倒置顯微鏡每隔2h觀察1次PMVECs的體外血管形成情況。

    1.6 CCK8法繪制PMVECs生長曲線 取第2代PMVECs以每孔5000個細胞接種在96孔板上。實驗分為對照組和PMVECs組,每組設3個復孔。在細胞貼壁后,吸出原培養(yǎng)基,加入10μl CCK-8溶液和新鮮內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基90μl,在37℃培養(yǎng)箱內(nèi)孵育2h,檢測450nm波長處的吸光度(OD)值。同法連續(xù)測7d。繪制PMVECs的生長曲線。

    2 結(jié) 果

    2.1 PMVECs的形態(tài)學觀察結(jié)果 PMVECs貼壁24h后,倒置顯微鏡下可見細胞呈短梭形、類圓形貼壁生長(圖2A);PMVECs貼壁72h后,可見細胞單層融合呈典型鋪路石樣排列(圖2B)。

    2.2 細胞鑒定

    2.2.1 細胞免疫熒光染色 山羊抗CD31抗體免疫熒光染色后,胞質(zhì)呈紅色熒光,DAPI染細胞核呈藍色熒光(圖3A)。兔抗vWF抗體免疫熒光染色后,胞質(zhì)呈紅色熒光,DAPI染細胞核呈藍色熒光(圖3B)。兩種內(nèi)皮細胞特異性抗體CD31、vWF均表達陽性,證實培養(yǎng)的細胞為PMVECs。通過隨機選取5個視野,重復3次,CD31染色PMVECs陽性率為91.35%±3.06%,vWF染色PMVECs陽性率為92.99%±2.67%。

    2.2.2 PMVECs體外血管形成實驗 PMVECs接種至基質(zhì)膠,每隔2h觀察1次,發(fā)現(xiàn)在接種8h后,已完整形成血管網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)(圖4)。

    圖2 倒置顯微鏡下觀察的細胞形態(tài)學結(jié)果(×100)Fig.2 Morphology of PMVECs (Inverted microscope ×100)

    圖3 免疫熒光染色結(jié)果(×100)Fig.3 Immunofluorescence staining of PMVECs (×100)

    圖4 PMVECs接種8h后基質(zhì)膠上形成的血管管狀結(jié)構(gòu)(×40)Fig.4 Vascular tubular structure formed on matrigel 8h after inoculation of PMVECs (×40)

    2.3 CCK8法繪制生長曲線 PMVECs接種后前2d,細胞貼壁生長,細胞增殖較為緩慢。接種后2~5d,細胞處于對數(shù)期生長。接種后7d,細胞增殖減慢,甚至出現(xiàn)凋亡現(xiàn)象(圖5)。

    圖5 CCK8法繪制的生長曲線Fig.5 Growth curve drawn by CCK8 method

    3 討 論

    獲取微血管內(nèi)皮細胞的常用方法有組織塊貼壁法[7]、酶消化法[8]、免疫磁珠法[9]。通過組織塊貼壁法獲得的PMVECs培養(yǎng)時間長,首次傳代時間為13.0±0.7d。通過酶消化法獲得的PMVECs陽性率(61.05%±7.38%)不高[10]。通過免疫磁珠法獲得的PMVECs雖然細胞純度較高,但操作需有特殊儀器,且試劑比較昂貴。本研究采用的CD31抗體瓊脂糖微球法是通過抗原抗體結(jié)合的方式篩選出PMVECs,具有培養(yǎng)時間短、陽性率高、操作簡便等優(yōu)勢,首次傳代時間少于4d,PMVECs陽性率超過90%。

    蛋白A/G瓊脂糖微球是將蛋白A/G共價耦聯(lián)在固體載體瓊脂糖微球上,常用于免疫沉淀或免疫共沉淀實驗,對蛋白功能進行研究。CD31被稱為血小板內(nèi)皮細胞黏附分子,主要表達于內(nèi)皮細胞、血小板、巨噬細胞,被認為是一種不成熟和成熟的血管內(nèi)皮細胞標記物[11]。CD31的同種型是IgG2a,與蛋白A/G的結(jié)合屬于強結(jié)合[12]。蛋白A/G瓊脂糖微球和CD31抗體預先孵育,使微球能夠特異性吸附抗原,而PMVECs細胞表面存在與CD31抗體結(jié)合的特異性抗原,這樣就可以通過瓊脂糖微球?qū)MVECs吸附分離出來。本方法重復多次,均可成功分離、培養(yǎng)出PMVECs。

    在本實驗的PMVECs培養(yǎng)過程中需要注意以下5個方面:①選用1周內(nèi)的乳鼠,其細胞增殖能力強,可縮短細胞培養(yǎng)周期。細胞在3代以內(nèi)生長快且形態(tài)穩(wěn)定,可用于實驗研究。②采用0.1%明膠包被6孔板,有利于細胞的貼壁生長。分離培養(yǎng)過程中,有時混雜少量成纖維細胞,采用內(nèi)皮細胞專用培養(yǎng)基、內(nèi)皮細胞生長因子,可抑制成纖維細胞的生長。另外,采用差速消化法,傳代過程中胰酶消化3min及時終止消化,此時大多數(shù)內(nèi)皮細胞被消化下來,而成纖維細胞仍舊貼壁。③選用膠原酶Ⅰ,能溫和地將研磨后的肺組織消化成單個細胞,優(yōu)于其他消化酶。④CD31表達于內(nèi)皮細胞表面,其免疫熒光染色陽性是內(nèi)皮細胞的經(jīng)典鑒定方式。vWF僅在內(nèi)皮細胞、血小板、巨核細胞和合體滋養(yǎng)細胞中表達,在內(nèi)皮細胞中存儲于桿狀Weibel-Palade小體中,可產(chǎn)生核周染色[13]。⑤基質(zhì)膠是從Engelbreth-Holm-Swarm小鼠肉瘤(富含細胞外基質(zhì)蛋白)中提取的,其主要成分是層粘連蛋白,其次是Ⅳ型膠原、硫酸乙酰肝素蛋白多糖等。實驗證明內(nèi)皮細胞借助基質(zhì)膠可形成血管管狀結(jié)構(gòu)[14]。

    綜上,本實驗室采用瓊脂糖微球抗體篩選法分離、培養(yǎng)乳鼠原代PMVECs,方法簡便、高效,是一種值得推廣的分離培養(yǎng)乳鼠PMVECs的新方法,為血管功能研究等提供了參考。

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