項(xiàng) 萍,唐 喆
(西北農(nóng)林科技大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院,陜西 楊凌 712100)
糖醇類物質(zhì)廣泛存在于自然界各種生物中,植物體內(nèi)的糖醇具有提供能量、清除自由基以及調(diào)節(jié)植物細(xì)胞滲透壓等生理功能[1]。糖醇類物質(zhì)是植物體內(nèi)重要的初生代謝物,其含量的變化可直接反映植物組織的生理狀況。枸杞作為西北半干旱地區(qū)常見的植物,不僅是常用的傳統(tǒng)中藥材,還是百姓喜愛的保健品。據(jù)研究報(bào)道,枸杞的果、葉、苗、根都含有多種營養(yǎng)和活性組分,其中以葡萄糖、阿拉伯糖為活性基礎(chǔ)形成的水溶性多糖(LPB)[2]為主。
糖與糖醇類物質(zhì)的檢測方法一般有容量法、分光光度法、酶分析法、色譜分析法等[3-4],但由于植物組織中糖醇類物質(zhì)的濃度相對較低,使用上述方法很難得到準(zhǔn)確的含量,因此有必要建立一種快速且靈敏的糖醇類物質(zhì)分析方法。氣相色譜法的靈敏度高、分離能力強(qiáng),能夠有效地分離天然化合物中的同分異構(gòu)體,并能夠?qū)哿课镔|(zhì)進(jìn)行檢測;質(zhì)譜法能夠準(zhǔn)確地確定化合物的分子質(zhì)量,并且推算化合物的分子式,對于鑒定有機(jī)物分子具有重要作用。目前,氣相色譜-質(zhì)譜(GC/MS)聯(lián)用技術(shù)已廣泛應(yīng)用于各種檢測中[5-6],然而,糖醇類物質(zhì)高溫易分解或難以氣化,在進(jìn)行GC/MS分析前要對化合物進(jìn)行衍生化處理。
本研究擬以7種常見的糖醇類物質(zhì)作為目標(biāo)化合物,經(jīng)乙?;幚砗?,以核糖醇作為內(nèi)標(biāo)物,采用GC/MS法測定枸杞葉片和根系中的含糖情況,希望為各種植物組織中糖和糖醇類物質(zhì)的檢測提供方法參考。
GC/MS-QP2010氣相色譜-質(zhì)譜儀:日本島津公司產(chǎn)品,配有Aoc-20i自動(dòng)進(jìn)樣器、Rxi-5MS色譜柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm);MD200氮吹儀:杭州奧盛儀器有限公司產(chǎn)品;PL303電子天平:梅特勒-托利多上海有限公司產(chǎn)品;THZ-C-1全溫振蕩器:蘇州培英實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司產(chǎn)品。
果糖(Flu)、核糖醇(Ado)、葡萄糖(Glu)、半乳糖(Gal)、纖維醇(Ino)、甘露醇(Man)、山梨醇(Sor)、蔗糖(Suc)標(biāo)準(zhǔn)品:均為分析純,美國Sigma公司產(chǎn)品;甲醇、氯仿、1-甲基咪唑、鹽酸羥胺、乙酸酐、無水硫酸鈉:均為分析純,天津富宇精細(xì)化工有限公司產(chǎn)品。
精確稱取各0.005、0.02、0.05、0.1、0.2 mg果糖、葡萄糖、半乳糖、纖維醇、甘露醇、山梨醇、蔗糖標(biāo)準(zhǔn)品,分別加入0.02 mg核糖醇,混勻,再加入少許的1-甲基咪唑懸??;然后加入0.1 mL鹽酸羥胺溶液,混勻后置于80 ℃水浴中振蕩5 min,取出后加入0.15 mL乙酸酐,混勻,于室溫下反應(yīng)5 min;再加入1 mL氯仿萃取衍生化產(chǎn)物,然后用2倍體積水清洗4遍,有機(jī)相用無水硫酸鈉干燥后,封裝于色譜瓶中,即得質(zhì)量濃度分別為5、20、50、100、200 mg/L的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液,其中內(nèi)標(biāo)物核糖醇的濃度為20 mg/L。
對枸杞葉片與根系的單雙糖及其可溶性糖醇類化合物進(jìn)行GC/MS測定,具體步驟[1]為:取0.2 g枸杞鮮樣,加入0.02 mg核糖醇作為內(nèi)標(biāo),液氮環(huán)境中研磨成細(xì)碎粉末,加入4 mL甲醇-氯仿-水(12∶5∶3,V/V/V)碳水化合物抽提液,充分混勻,隨后加入等體積水,混勻,靜置片刻,將上清液過濾至試管中,氮?dú)獯蹈桑淅鋮s后加入少許的1-甲基咪唑懸??;然后加入0.1 mL鹽酸羥胺溶液,混勻后置于80 ℃水浴中振蕩5 min,取出后加入0.15 mL乙酸酐,混勻后于室溫下反應(yīng)5 min,加入1 mL氯仿萃取衍生化產(chǎn)物,用2倍體積水清洗4遍,有機(jī)相用無水硫酸鈉干燥后,直接封裝于色譜瓶中,待測。
1.4.1色譜條件 載氣He,流速0.8 mL/min;清洗流速3 mL/min,線速度32.4 cm/s;升溫程序:柱溫50 ℃,保持5 min,以15 ℃/min升至200 ℃,以10 ℃/min升至280 ℃,保持20 min;進(jìn)樣口溫度250 ℃;進(jìn)樣量1 μL。
1.4.2質(zhì)譜條件 轟擊電壓70 eV,界面溫度280 ℃,離子源溫度230 ℃,檢測器電壓0.9 kV,溶劑切割時(shí)間3 min,質(zhì)量掃描范圍m/z35~900。
注:1.果糖;2.核糖醇(內(nèi)標(biāo)物);3.葡萄糖;4.半乳糖;5.纖維醇;6.甘露醇;7.山梨醇;8.蔗糖圖1 8種乙酰化的糖和糖醇的總離子流圖Fig.1 Total ion chromatogram of 8 acetylated sugars and sugar alcohols
將乙酰化后的標(biāo)準(zhǔn)品通過單標(biāo)進(jìn)樣確定每種物質(zhì)的保留時(shí)間,進(jìn)混標(biāo)樣后優(yōu)化升溫程序、調(diào)整測試參數(shù),從而達(dá)到較好的分離效果,得到的總離子流圖示于圖1。
SIM模式較Scan模式的靈敏度有很大提高[7]。本研究根據(jù)8種乙?;瘶?biāo)準(zhǔn)品Scan模式的質(zhì)譜圖,選定特征離子創(chuàng)建了SIM方法,并對混合標(biāo)樣進(jìn)行分析,得到的離子流圖示于圖2,乙?;奶呛吞谴嫉腟IM模式參考離子列于表1。由于糖和糖醇類物質(zhì)含有較多的羥基,乙酰化處理后形成的酰氧鍵極易斷裂形成m/z43碎片離子,且豐度較高,結(jié)合其他特征碎片和保留時(shí)間,可以高選擇、高靈敏地檢測糖和糖醇類物質(zhì)的含量。
圖2 8種乙酰化的糖和糖醇的SIM模式總離子流圖Fig.2 Total ion chromatogram of 8 acetylated sugars and sugar alcohols at SIM mode
峰號Peaknumber糖和糖醇Sugarsandsugaralcohols保留時(shí)間tR/min參考離子Referenceions(m/z)1果糖12 3543,103,1452核糖醇13 6343,115,1453葡萄糖14 5643,145,1034半乳糖14 7943,145,1035纖維醇15 7443,168,1266甘露醇15 8743,115,1397山梨醇15 9643,115,1458蔗糖28 5843,169,211
分別取1.2節(jié)配制的標(biāo)準(zhǔn)混合工作液,采用1.3節(jié)方法對標(biāo)準(zhǔn)溶液乙?;幚砗?,按1.4節(jié)條件上機(jī)測定。為了避免前處理過程導(dǎo)致的誤差,選取植物組織中含量極少的核糖醇作為內(nèi)標(biāo)物,以其他標(biāo)準(zhǔn)品與核糖醇峰面積比y對7種標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)量濃度與核糖醇比x做線性回歸,以信噪比3計(jì)算檢出限,信噪比10計(jì)算定量限,其結(jié)果列于表2??梢姡堑臋z出限為5.5 mg/L外,其他糖和糖醇的檢出限均低于0.11 mg/L。
選取一組枸杞根樣品,在前處理前添加一定量的可溶性糖進(jìn)行分析檢測,重復(fù)測定5次,考察該方法在實(shí)際樣品中的回收率與精密度,結(jié)果列于表3。結(jié)果表明,回收率在96.98%~103.62%之間,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為2.3%~4.9%,該方法精密度良好,能夠滿足定量分析的要求。
表2 乙?;奶呛吞谴嫉墓ぷ髑€、相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限Table 2 Regression equations, correlation coefficients,limits of detection and limits of quantification of 8 acetylated sugars and sugar alcohols
表3 SIM模式下方法的回收率和精密度Table 3 Recoveries and precisions at SIM mode
選取枸杞葉片與根系作為樣本進(jìn)行糖和糖醇的測定,結(jié)果列于表4??梢?,枸杞根中的果糖、葡萄糖和蔗糖含量約是葉片中的2倍,這是因?yàn)楦饕獏⑴c植物無機(jī)離子和水的吸收,需要大量的能量,這些糖類可為根提供更多的能量。半乳糖和纖維醇是植物細(xì)胞重要合成物的前體,其中,半乳糖是植物果膠類成分的重要組成,纖維醇可用于植物細(xì)胞壁的合成[8-9],二者對枸杞的根和葉細(xì)胞具有同等重要的作用,二者的含量差異不大。山梨醇和甘露醇是單糖的重要衍生物,主要用于調(diào)節(jié)細(xì)胞滲透壓,提高植物抗逆性[10-11],由于根處于復(fù)雜環(huán)境中,需要對滲透壓有良好的調(diào)節(jié)能力,所以山梨醇和甘露醇的含量較高。
實(shí)際的枸杞樣品測定結(jié)果和理論分析表明,本實(shí)驗(yàn)采用的GC/MS選擇離子監(jiān)測(SIM)模式可以準(zhǔn)確地測定植物組織中的糖醇含量。雖然樣品的乙?;幚碓黾恿饲疤幚聿襟E,但是操作簡單,試劑為常規(guī)試劑,成本較低。同時(shí),采用核糖醇作為內(nèi)標(biāo)物,有效地減小了誤差。該方法可以去除背景干擾,得到清晰準(zhǔn)確的色譜峰,比GC/MS法全掃描模式的靈敏度高,適合測定糖含量較低的植物組織。
表4 枸杞葉片與根系中的糖和糖醇含量(mg/g)Table 4 Contents of sugars and sugar alcohols in leaves and roots of Lycium chinensis (mg/g)
本研究采用GC/MS法SIM模式快速分析測定乙酰糖和乙酰糖醇,以枸杞的根和葉片為例進(jìn)行了準(zhǔn)確的定量分析。為了避免乙?;^程影響測定結(jié)果,選擇核糖醇作為內(nèi)標(biāo)物進(jìn)行定量分析,同時(shí)SIM模式降低了基質(zhì)干擾、提高了靈敏度。該方法可為糖和糖醇類物質(zhì)的檢測提供參考依據(jù)。
參考文獻(xiàn):
[1] 胡磊,郭蓓,陸海,等. 植物組織中糖與糖醇乙?;懊?xì)管氣相色譜分析[J]. 植物學(xué)報(bào),2004,21(6):689-699.
HU Lei, GUO Bei, LU Hai, et al. Gas chromatographic analysis of sugar and sugar alcohol derivatives through 1-methylimidazole catalyzed acetylation[J]. Chinese Bulletin of Botany, 2004, 21(6): 689-699(in Chinese).
[2] 如克亞·加帕爾,孫玉敬,鐘烈州,等. 枸杞植物化學(xué)成分及其生物活性的研究進(jìn)展[J]. 中國食品學(xué)報(bào), 2013,13(8):161-172.
RUKEYA Jiapaer, SUN Yujing, ZHONG Lie-zhou, et al. A review of phytochemical composition and bio-active ofLyciumbarbarumFruit (Goji)[J]. Journal of Chinese Institute of Food Science & Technology, 2013, 13(8): 161-172(in Chinese).
[3] 楊柳,王建立,王淑英,等. 糖類物質(zhì)測定方法評價(jià)[J]. 北京農(nóng)學(xué)院學(xué)報(bào),2009,24(4):68-71.
YANG Liu, WANG Jianli, WANG Shuying, et al. A review on determination methods of sugar content[J]. Journal of Beijing University of Agriculture, 2009, 24(4): 68-71(in Chinese).
[4] 譚芳,劉甜. 煙草中糖類物質(zhì)測定方法評價(jià)[J]. 延邊大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2013,39(1):37-40.
TAN Fang, LIU Tian. Appraisal on determination of sugars in tobacco[J]. Journal of Yanbian University: Natural Sciene, 2013, 39(1): 37-40(in Chinese).
[5] KATONA Z F, SASS P, MOLNR-PERL I. Simultaneous determination of sugars, sugar alcohols, acids and amino acids in apricots by gas chromatography-mass spectrometry[J]. Journal of Chromatography A, 1999, 847(1/2): 91-102.
[6] FAN H, FAN W, XU Y. Characterization of key odorants in Chinese chixiang aroma-type liquor by gas chromatography-olfactometry, quantitative measurements, aroma recombination, and omission studies[J]. Journal of Agricultural & Food Chemistry, 2015, 63(14): 3 660.
[7] ZHONG W J, WANG D H, XU X W, et al. A gas chromatography/mass spectrometry method for the simultaneous analysis of 50 phenols in wastewater using deconvolution technology[J]. Chinese Science Bulletin, 2011, 56(3): 275-284.
[8] 郁有健,沈秀萍,曹家樹. 植物細(xì)胞壁同聚半乳糖醛酸的代謝與功能[J]. 中國細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報(bào),2014,36(1):93-98.
YU Youjian, SHEN Xiuping, CAO Jiashu. The metabolism and function of homogalacturonan in plant cell wall[J]. Chinese Journal of Cell Biology, 2014, 36(1): 93-98(in Chinese).
[9] 張夢,謝益民,楊海濤,等. 肌醇在植物體內(nèi)的代謝概述——肌醇作為細(xì)胞壁木聚糖和果膠前驅(qū)物的代謝途徑[J]. 林產(chǎn)化學(xué)與工業(yè),2013,33(5):106-114.
ZHANG Meng, XIE Yimin, YANG Haitao, et al. Myo-inositol metamolism as the precursor of xylan and pectin in plants[J]. Chemistry and Industry of Forest Products, 2013, 33(5): 106-114(in Chinese).
[10] 孟艷玲,劉林,白濤,等. 干旱脅迫下外源山梨醇對平邑甜茶耐旱性影響[J]. 北方園藝,2009,(5):69-70.
MENG Yanling, LIU Lin, BAI Tao, et al. The effect of exogenous sorbitol on drought tolerance of malus hupehensis under drought stress[J]. Northern Horticulture, 2009, (5): 69-70(in Chinese).
[11] TARI I, KISS G, DEéR A K, et al. Salicylic acid increased aldose reductase activity and sorbitol accumulation in tomato plants under salt stress[J]. Biologia Plantarum, 2010, 54(4): 677-683.