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      MRI評價抗腫瘤中藥康萊特注射液療效的實驗研究

      2018-02-06 09:03:08李曉琴朱紅革劉春玲
      關(guān)鍵詞:康萊特成瘤皮下

      李曉琴,朱紅革,劉春玲

      (新疆醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院 肺內(nèi)二科,新疆 烏魯木齊 830011)

      康萊特對于中晚期肺癌、肝癌及結(jié)直腸癌等具有一定的療效,同時還能調(diào)節(jié)機體的免疫系統(tǒng),增強放、化療殺傷腫瘤細胞的效果。大量研究表明,其具有抑制腫瘤細胞增殖和調(diào)節(jié)免疫等綜合效果[1]。隨著現(xiàn)代醫(yī)藥研發(fā)和中醫(yī)藥逐步結(jié)合,將有大量的抗癌中藥用于腫瘤患者[2]??鼓[瘤藥物的研發(fā)和臨床實驗需要確定腫瘤藥物治療的最佳作用時間和藥物濃度、藥物療效和機體副作用間的平衡,以及殺傷腫瘤細胞的機制,因此需要進行實時有效的監(jiān)測腫瘤變化,這些都是病理學(xué)檢測所不具備的[3]。分子影像學(xué)技術(shù)是將一種或者幾種具有成像功能的分子標志物打入到體內(nèi),這些標志物能夠與體內(nèi)腫瘤細胞特異性結(jié)合,在影像學(xué)下顯示腫瘤病變的各種信息[4]?,F(xiàn)在很多抗腫瘤藥物就是基于腫瘤的血管依賴性進行設(shè)計的[5]。目前,診斷血管新生的金標準是微血管密度(microvascular density,MVD),然而其測量方法創(chuàng)傷大,不能實時監(jiān)測和反復(fù)測量,不能應(yīng)用于抗腫瘤藥物療效的檢測[6-7]。臨床上,MRI廣泛用于評價腫瘤的生成狀況,可作為一種有效的手段,持續(xù)評價抗腫瘤藥物的療效[8]。

      1 材料與方法

      1.1 實驗試劑

      免疫組織化學(xué)染色試劑盒、DAB濃縮試劑盒、PBS濃縮粉末、枸櫞酸修復(fù)液購自北京中杉金橋生物科技有限公司,CD34、血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)、增殖細胞核抗原(proliferating cell nuclear antigen,PCNA)抗體購自美國Abcom生物技術(shù)公司,Aneexin-V FITC/PI凋亡流式細胞術(shù)檢測試劑盒(上海碧云天生物科技有限公司),VEGF酶聯(lián)免疫吸附法(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)檢測試劑盒、癌胚抗原ELISA檢測試劑盒購自廣州慧嘉生物科技公司。

      1.2 實驗動物、細胞及分組

      康萊特注射液(浙江康萊特藥業(yè)有限公司)。實驗動物采用BALB/c-nu裸鼠,共20例,均為雄性,鼠齡6~8周,體重約18 g。

      人結(jié)腸癌細胞株HT-29(上海生命科學(xué)研究院的細胞庫)。取4~6代處于對數(shù)生長期的細胞,生長狀態(tài)差或者代數(shù)高的細胞均不用于實驗。

      裸鼠的右后肢皮下接種人結(jié)腸癌HT-29細胞成瘤,其中10例為對照組,腹腔注射0.9%氯化鈉注射液1 ml/(d·只);10例為治療組,腹腔注射1 ml康萊特注射液1 ml/(d·只),兩組治療時間均為7 d。

      1.3 方法

      1.3.1 細胞復(fù)蘇、培養(yǎng)與傳代復(fù)蘇后的細胞傳代≥1代后用于實驗,以減少凍存液對細胞的損傷和對實驗結(jié)果的影響。本實驗選取第4~6代對數(shù)生長期的細胞進行實驗研究。

      1.3.2 細胞增殖與凋亡細胞增殖與凋亡采用5-乙炔基-2’脫氧尿嘧啶核苷(5-ethynyl-2’-deoxyuridine,EDU)細胞增殖檢測及Annexin-V FITC/PI凋亡的流式細胞術(shù)檢測

      1.3.3 HT-29細胞成瘤接種液的制備及皮下接種取對數(shù)生長期的人結(jié)腸癌HT-29細胞,PBS清洗3次后,用無菌PBS制成接種腫瘤細胞懸液,在潔凈操作室中接種1 ml至裸鼠的右后肢皮下組織,接種時注意無菌操作。由2位測量者用游標卡尺測量腫瘤底部的最大(a)和最小直徑(b),按照公式體積(V)=ab2π/6,計算各組裸鼠皮下成瘤的體積大小,對照組皮下成瘤體積>200 mm3表明本實驗成瘤操作成功。

      1.4 MRI的檢測方法

      1.4.1 MRI的檢測時間和設(shè)備待裸鼠右下肢的皮下成瘤大小達到模型復(fù)制成功的標準,10~15 d時進行MRI掃描檢測。采用1.5T Tim Avanto 磁共振掃描儀(德國西門子公司)檢測腫瘤的大小和血管情況,采用上海辰光醫(yī)療科技公司研發(fā)的25 mm實驗動物專用射頻線圈進行裸鼠的MRI掃描(專利號:ZL201020236347.3)。

      1.4.2 裸鼠的麻醉采用10%水合氯醛進行麻醉,麻醉前在天平上精確測量裸鼠的體重,按照0.4 ml/100 g的劑量進行腹腔麻醉。

      1.4.3 MRI成像參數(shù)設(shè)定MRI的具體參數(shù)根據(jù)掃描序列進行相應(yīng)調(diào)整。根據(jù)預(yù)實驗所得的MRI掃描序列、參數(shù)及圖像,T1WI-TSE序列:TR=280,TE=18,層厚2 mm,層間距0.0 mm,層數(shù)10層,F(xiàn)OV=70,信號平均次數(shù)(number of signal averaged,NSA)3次,矩陣256×256;T2WI-TSE序列:TR=3 000,TE=82,層厚2 mm,層間距0.0 mm,層數(shù)10層,F(xiàn)OV=70,NSA 3次,矩陣512×512;磁共振彌散加權(quán)成像(diffusion weighted imaging,DWI)序列:10個擴散敏感梯度因子b值,分別為0、50、100、150、200、250、300、500、750 和 1 000 s/mm2,TR=24 00,TE=101,層厚2 mm,層間距0.0 mm,層數(shù)10層,F(xiàn)OV=60,NSA 6次,矩陣80×80。

      1.4.4 圖像的處理和分析采用Biomap軟件處理DWI圖像,首先計算出ADC值并繪出ADC圖像,先根據(jù)10個b值擬合出ADC10b圖,再分別取3個低b值(0、50和100 s/mm2)擬合出ADClow圖,提取3個高b值(500、750和1 000 s/mm2)擬合出ADChigh圖,將ADClow與ADChigh的差值定義為ADCperf值。根據(jù)0、500和1 000 s/mm2擬合出ADC3b圖,每個ADC值的計算提取≥3個不同的b值,以便提高結(jié)果的準確性,最后分析出腫瘤組織的感興趣區(qū)及其像素分布。

      1.5 瘤體的大小與取材

      接受結(jié)腸癌HT-29細胞注射的裸鼠采用單個籠喂養(yǎng),并堅持每隔一段時間更換墊料和食物,保證裸鼠喂養(yǎng)環(huán)境的潔凈和干燥,并預(yù)防各種病原體的感染。一段時間后,根據(jù)實驗需要,用10%水合氯醛0.4 ml/100 g腹腔注射麻醉裸鼠后,用相機拍照,記錄成瘤體的大小。用IPP 6.0軟件計算各組瘤體的大小及組間差異。每次拍照后,用剪刀分離皮下的成瘤體,取下整個成瘤體,PBS清洗后,用4%多聚甲醛固定。根據(jù)MRI掃描圖像,實驗選取與橫斷位對應(yīng)的腫瘤最大橫徑切面進行石蠟切片。每個樣本切6張組織切片,切片厚度4μm。

      1.6 免疫組織化學(xué)法

      包埋成瘤體組織,石蠟切片,切片脫蠟。封閉抗原,孵育一抗、二抗。抗原、抗體結(jié)合顯色,切片復(fù)染、脫水、封片。

      1.7 MVD的測定

      使用CD34抗體染色,判定標準采用Weidner改進式方法。先在低倍鏡(×100)下掃視整個玻片,找出MVD最大的熱點后,變換高倍鏡(×200)觀察并計數(shù)。任何被抗體染成棕色的單個細胞或細胞團,不管有無形成管腔,只要與周圍的微血管、腫瘤組織及其他結(jié)締組織界限清楚,都作為1條可計數(shù)的血管。腫瘤內(nèi)硬化區(qū),以及與腫瘤交界處軟組織內(nèi)的微血管不作計數(shù);具有厚的平滑肌或管腔面積>8個紅細胞直徑的血管也排除在外。記錄5個視野的微血管數(shù),取其平均數(shù)作為MVD。

      1.8 VEGF的測定

      使用VEGF單克隆抗體染色,采用兼顧VEGF陽性染色強度和陽性細胞百分比作為判斷標準。在排除非特異染色前提下,按染色強度計分:0分為無色,1分為淡黃色,2分為棕黃色,3分為棕褐色;按陽性細胞百分比計分:陰性為0分,陽性細胞百分比<10%為1分,11%~50%為2分,51%~75%為3分,>75%為4分。染色強度與陽性細胞百分比的乘積>3分為免疫反應(yīng)陽性。并按乘積分數(shù)分為4個等級:0~2分為陰性(-)、3~5分為弱陽性(+)、6~8分為陽性(++)、9~12分為強陽性(+++)。

      1.9 統(tǒng)計學(xué)方法

      數(shù)據(jù)分析采用SPSS 18.0統(tǒng)計軟件,計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,用t檢驗或方差分析;計數(shù)資料以率表示用χ2檢驗;相關(guān)分析用Pearson法,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      2 結(jié)果

      2.1 康萊特注射液對人結(jié)腸癌HT-29細胞增殖的影響

      加入康萊特注射液作用7 d后,兩組人結(jié)腸癌HT-29細胞增殖率比較,經(jīng)t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),治療組較對照組降低33.113%。見表1和圖1。

      2.2 康萊特注射液對人結(jié)腸癌HT-29細胞凋亡的影響

      兩組人結(jié)腸癌HT-29細胞凋亡率比較,經(jīng)t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),治療組較對照組升高28.243%。見表2和圖2。

      2.3 康萊特抑制裸鼠皮下移植瘤的生長

      在裸鼠皮下接種人結(jié)腸癌HT-29細胞后5 d,裸鼠在右后肢出現(xiàn)米粒大小的小成瘤體,未見潰瘍,皮膚光滑完整,證明模型復(fù)制成功。接種15 d后,接種部位出現(xiàn)明顯隆起,其體積均達到300 mm3,瘤體質(zhì)地硬,活動度差,與皮膚緊密結(jié)合,證明模型復(fù)制成功,成功率為100%??等R特注射后7 d,皮下移植瘤體積下降,相對于對照組,體積下降49%。

      2.4 康萊特注射液對裸鼠結(jié)腸癌皮下移植瘤DWI的影響

      MRI的b值增加使兩組皮下移植瘤DWI的清晰程度逐漸降低,并出現(xiàn)圖像變形,同時腫瘤信號增加強度也不清晰,與周圍組織的邊界也逐漸模糊??等R特注射液治療后引起腫瘤壞死區(qū)域變得模糊。在兩組ADC顯示圖表明,腫瘤呈低信號,邊界清晰;而康萊特注射液治療后7 d存在高信號斑點或片狀局部液性暗區(qū)。治療組DWI指標與對照組比較,經(jīng)t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。見表3。

      表1 兩組人結(jié)腸癌HT-29細胞增殖率比較(n =10,%,±s)

      表1 兩組人結(jié)腸癌HT-29細胞增殖率比較(n =10,%,±s)

      圖1 兩組人結(jié)腸癌HT-29細胞增殖率比較(n =10,±s)

      2.5 康萊特注射液抑制裸鼠結(jié)腸癌皮下移植瘤血管的生成

      治療后7 d,治療組、對照組的VEGF陽性表達的率分別為43%和58%,經(jīng)χ2檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=3.306,P=0.021)。治療組CD34染色陽性的新生血管降低,僅在腫瘤的邊緣部分可見。兩組MVD計數(shù)、VEGF計分、PCNA陽性細胞百分比比較,經(jīng)t檢驗,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),治療組PCNA陽性細胞百分比較對照組下降55%。見表4和圖 3、4。

      2.6 MVD參數(shù)與DWI的相關(guān)性

      治療后7 d,兩組ADCperf值與MVD呈正相關(guān),ADC10b與 MVD 呈負相關(guān)(P<0.05)。見表 5、6。

      表2 兩組人結(jié)腸癌HT-29細胞凋亡率比較(n =10,%,±s)

      表2 兩組人結(jié)腸癌HT-29細胞凋亡率比較(n =10,%,±s)

      圖2 兩組人結(jié)腸癌HT-29細胞凋亡率比較(n =10,%,±s)

      表3 兩組治療后DWI指標比較 (n =10,×10-3 mm2/s,±s)

      表3 兩組治療后DWI指標比較 (n =10,×10-3 mm2/s,±s)

      對照組 0.234±0.026 0.044±0.005 0.141±0.013 0.030±0.004 0.101±0.006治療組 0.316±0.037 0.059±0.005 0.109±0.006 0.043±0.005 0.090±0.006 t值 4.968 6.869 5.327 9.345 5.821

      表4 兩組治療后MVD計數(shù)、VEGF計分、PCNA陽性細胞百分比比較 (n =10,±s)

      表4 兩組治療后MVD計數(shù)、VEGF計分、PCNA陽性細胞百分比比較 (n =10,±s)

      對照組 11.701±2.524 4.432±1.074 91.234±8.227治療組 4.958±1.963 2.218±1.034 49.617±4.363 t值 4.957 6.122 10.284

      圖3 抗腫瘤血管藥物治療前移植瘤組織CD34染色(免疫組織化學(xué)法×200)

      圖4 抗腫瘤血管藥物治療后移植瘤組織CD34染色(免疫組織化學(xué)法×200)

      表5 治療組DWI參數(shù)與MVD的相關(guān)性分析

      表6 對照組DWI參數(shù)與MVD的相關(guān)性分析

      3 討論

      研究表明,DWI圖像可以反映早期腫瘤內(nèi)部變化及療效,在評估化學(xué)藥物治療腫瘤中具有很好的效果[9-10]。在未治療的結(jié)腸癌皮下移植瘤,ADCperf值與血流灌注緊密相關(guān),隨著灌注量的增加,其不斷變大,因此可以反映血流的情況。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),康萊特注射液治療后,ADCperf值下降,這說明中藥康萊特注射液可以有效降低結(jié)腸癌皮下瘤的血流灌注。同時本研究也結(jié)果證實,ADCperf值與MVD計數(shù)呈正相關(guān)。ADChigh值主要與水分子的運動功能相關(guān)密切,因此ADChigh值越高,腫瘤內(nèi)部血流速度也越快,對營養(yǎng)和氧氣的供給也越豐富。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),康萊特注射液治療后,ADChigh值下降,說明中藥康萊特注射液可以降低腫瘤內(nèi)部營養(yǎng)和氧氣的供給,達到進一步抑制腫瘤的目的。本實驗結(jié)果證明,ADChigh值與MVD計數(shù)呈正相關(guān)。本研究還發(fā)現(xiàn),康萊特注射液治療后,VEGF計分與ADClow值呈正相關(guān),其可能的原因是體外實驗發(fā)現(xiàn)康萊特注射液可以誘導(dǎo)結(jié)腸癌細胞的凋亡,水腫是凋亡的一種狀態(tài),最終引起細胞內(nèi)水分子運動減少,即ADClow值的改變。PCNA計分與ADChigh呈負相關(guān)。因此,DWI參數(shù)特別是ADCperf值、ADC3b及ADC10b,可以作為評估中藥抗腫瘤療效的有效指標,具有很強的臨床研究價值。

      康萊特注射液能抑制人結(jié)腸癌HT-29細胞增殖,用于體內(nèi)實驗將具有很好的療效。康萊特能促進人結(jié)腸癌HT-29細胞的凋亡,在動物實驗中均能達到很好的抑制皮下成瘤體生長,以及抑制腫瘤血管生成的作用。

      康萊特能抑制裸鼠的人結(jié)腸癌皮下移植瘤生長,其機制可能是通過促進其凋亡和抑制增殖來實現(xiàn)的[11-12]。免疫組織化學(xué)結(jié)果顯示,康萊特注射液治療能抑制新生血管生成和腫瘤細胞的增殖活力。DWI參數(shù)可以作為評估抗腫瘤中藥療效的有效手段,其中ADCperf值、ADC3b及ADC10b與康萊特注射液治療后的免疫組織化學(xué)結(jié)果有相關(guān)性,因此可以作為評估中藥抗腫瘤療效的有效指標,具有很強的臨床應(yīng)用和研究價值。

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