黃佳,宋長(zhǎng)明,楊敏光,李建鴻,黃盛,柳維林,陶靜,2,3,陳立典,2,3,4
1.福建中醫(yī)藥大學(xué)康復(fù)醫(yī)學(xué)院,福建福州市350122;2.福建省康復(fù)技術(shù)協(xié)同創(chuàng)新中心,福建福州市350122;3.康復(fù)醫(yī)療技術(shù)國(guó)家地方聯(lián)合工程研究中心,福建福州市350122;4.國(guó)家中醫(yī)藥管理局中醫(yī)康復(fù)研究中心,福建福州市350122
腦卒中是全球第二大致死病因及成人致殘的首要原因。在一些發(fā)達(dá)國(guó)家,67.3%~80.5%的腦卒中歸因?yàn)槿毖阅X卒中[1-2]。認(rèn)知功能障礙是學(xué)習(xí)記憶、言語(yǔ)、表達(dá)、理解、計(jì)算等能力的缺失。腦卒中后認(rèn)知障礙發(fā)生率達(dá)47.3%[3],嚴(yán)重影響腦卒中患者日常生活,阻礙患者全面康復(fù)。臨床研究表明,針刺可改善患者的認(rèn)知功能[4]。本課題組通過(guò)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床試驗(yàn)研究均證明電針百會(huì)、神庭穴在改善認(rèn)知障礙方面有一定作用[5-8]。
海馬是調(diào)節(jié)學(xué)習(xí)記憶的關(guān)鍵部位,CA1區(qū)神經(jīng)元對(duì)結(jié)構(gòu)蛋白損害和能量障礙特別敏感;腦缺血缺氧或炎癥等損傷易引起海馬CA1區(qū)神經(jīng)元損傷及突觸丟失,導(dǎo)致記憶障礙,特別是空間記憶受損[9-12]。
嘌呤受體與海馬密切相關(guān)[13-14]。嘌呤受體可分為P1和P2兩大類,P2受體的配基是嘌呤核苷酸。P2受體又分為兩類:離子通道P2X受體和G蛋白偶聯(lián)P2Y受體。P2X7受體在海馬神經(jīng)元及神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞均有表達(dá)[15]。研究表明[16-18],腦卒中后,受損神經(jīng)元和膠質(zhì)細(xì)胞迅速釋放ATP,激活膠質(zhì)細(xì)胞P2X7受體;P2X7受體通過(guò)自身膜孔道結(jié)構(gòu)或激活下游信號(hào)通路,促進(jìn)炎癥介質(zhì)白細(xì)胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)、腫瘤壞死因子-α (tumor necrosis factor-α,TNF-α)和IL-6產(chǎn)生和釋放;炎癥介質(zhì)進(jìn)一步上調(diào)P2X7受體表達(dá),并增加其對(duì)細(xì)胞外ATP的敏感性,從而加速炎癥反應(yīng),促進(jìn)神經(jīng)元死亡。側(cè)腦室注射P2X7受體特異性抑制劑后,能有效保護(hù)海馬區(qū)神經(jīng)元,改善腦缺血再灌注大鼠空間記憶能力[19-20]。
本研究觀察腦缺血再灌注大鼠學(xué)習(xí)記憶能力及海馬CA1區(qū)P2X7受體表達(dá),探討電針治療認(rèn)知功能障礙的機(jī)制。
SPF清潔級(jí)雄性Sprague-Dawley大鼠42只,體質(zhì)量230~260 g,購(gòu)于上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物責(zé)任有限公司,生產(chǎn)許可證號(hào)SCXK(滬)2012-0002;由福建中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心飼養(yǎng),許可證號(hào)SYXK(閩)2012-001。每籠5只,自由進(jìn)食及飲水。
所有實(shí)驗(yàn)均遵照國(guó)際動(dòng)物保護(hù)和使用指南的規(guī)定實(shí)施。
P2X7受體抗體(11144-1-AP):美國(guó)PROTEINTECH公司。 大鼠IL-1β酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(F15810)、大鼠TNF-α ELISA試劑盒(F16960):上海西唐生物科技有限公司。3600A線栓:廣州佳靈生物技術(shù)有限公司。華佗牌G6805型電針儀:蘇州醫(yī)療用品廠有限公司。Barnes迷宮:上海欣軟信息科技有限公司。DMI4000B熒光倒置顯微鏡系統(tǒng):德國(guó)LEICA公司。Motic Med 6.0數(shù)碼醫(yī)學(xué)圖像分析系統(tǒng)、Image-lab圖像分析系統(tǒng):美國(guó)BIO-RAD LABORATORIES公司。
隨機(jī)數(shù)字表法將大鼠分為假手術(shù)組(n=12)和手術(shù)組(n=30)。手術(shù)組參考Longa法[21]制備左側(cè)大腦缺血再灌注動(dòng)物模型。大鼠10%水合氯醛3 ml/kg腹腔注射麻醉,常規(guī)消毒頸部皮膚,頸正中切口,暴露左側(cè)頸總動(dòng)脈,向上分離并暴露左側(cè)頸外動(dòng)脈和頸內(nèi)動(dòng)脈;結(jié)扎頸總動(dòng)脈和頸外動(dòng)脈,用血管夾夾閉頸內(nèi)動(dòng)脈。在頸總動(dòng)脈結(jié)扎處約3 mm處剪一小口,將線栓插入;撤去血管夾,緩慢推送線栓至大腦中動(dòng)脈分支處,稍有阻力時(shí)停止,線栓距動(dòng)脈分叉約18~20 mm;結(jié)扎頸內(nèi)動(dòng)脈固定線栓,清洗縫合創(chuàng)口。90 min后,緩慢抽出線栓,剪斷體外多余線拴。
假手術(shù)組分離動(dòng)脈,不予結(jié)扎和插線。
術(shù)中、術(shù)后注意保暖,置于25℃環(huán)境下蘇醒。
動(dòng)物蘇醒后,按Longa評(píng)分判斷模型是否成功。評(píng)分l~3分者入組實(shí)驗(yàn)。最終納入24只大鼠,分為模型組、電針組各12只。
造模成功后第2天,電針組采用自制捆綁法固定,參考《實(shí)驗(yàn)針灸學(xué)》[22]定位方法取百會(huì)、神庭。斜刺,深2 mm左右。接電針儀,疏密波,頻率2/20 Hz,強(qiáng)度1~3 mA。每次30 min,每天1次,共7 d。假手術(shù)組和模型組同等條件抓取,不予任何治療。
1.5.1 神經(jīng)行為學(xué)評(píng)分
造模后2 h和干預(yù)后1 d、3 d、7 d對(duì)各組大鼠行Longa評(píng)分。
1.5.2 Barnes迷宮測(cè)試
干預(yù)后3 d,采用Barnes迷宮測(cè)試大鼠空間記憶功能。迷宮由直徑122 cm的圓形平臺(tái)構(gòu)成,四周分布20個(gè)洞口,洞口直徑10 cm。逃避盒放在其中一個(gè)洞口的底部。檢測(cè)前把大鼠置于逃避盒內(nèi)30 s;風(fēng)吹以及噪聲等干擾刺激作為大鼠進(jìn)入目標(biāo)洞口的動(dòng)機(jī)。實(shí)驗(yàn)時(shí),大鼠置于圓形平臺(tái)的中央起始盒內(nèi),電子跟蹤設(shè)備記錄其在300 s內(nèi)找到正確洞口所用的時(shí)間(逃避潛伏期)和進(jìn)入錯(cuò)誤洞口的次數(shù),共5 d。每次測(cè)試完畢后旋轉(zhuǎn)圓形平臺(tái),并用70%酒精紗布擦拭清洗,以防通過(guò)嗅覺(jué)找到目標(biāo)洞口。洞口位置保持不變。
1.5.3 免疫熒光檢測(cè)
干預(yù)7 d后,各組取6只大鼠經(jīng)腹腔靜脈放血,前正中線剪開(kāi),心尖部及右心耳各剪開(kāi)一個(gè)小口,用磨鈍針頭從心尖部插入心臟,進(jìn)入頸動(dòng)脈并固定,同時(shí)夾緊腹主動(dòng)脈防止灌注液體進(jìn)入下腔循環(huán)。用生理鹽水300 ml快速?zèng)_洗,待流出血液呈較淡的粉紅色停止。4%多聚甲醛緩慢灌注約400 ml,至大鼠前肢僵硬且輕微抽搐,頭部堅(jiān)硬停止。斷頭取腦,完整取出置4%多聚甲醛中常溫固定,石蠟包埋,切片。
微波修復(fù)后,5%胎牛血清封閉,37℃孵育90 min。滴加P2X7受體一抗(1∶50),4℃冰箱孵育過(guò)夜;次日用PBS沖洗3次,每次5 min。滴加熒光二抗,37℃避光孵育90 min,PBS清洗3次,每次5 min??篃晒獯銣缣幚砑胺馄?含DAPI),風(fēng)干后,立即用熒光倒置顯微鏡100倍下觀察,Motic Med 6.0數(shù)碼醫(yī)學(xué)圖像分析系統(tǒng)分析,記錄平均光密度(optical density,OD)。
1.5.4 ELISA
干預(yù)7 d后,各組另6只大鼠腹主動(dòng)脈放血,只灌注生理鹽水,其他過(guò)程同上。冰上迅速取出大腦組織并用生理鹽水沖洗干凈,分離出左側(cè)大腦海馬CA1區(qū),置于EP管內(nèi),迅速投入液氮罐中;保存于-80℃冰箱。
將海馬CA1區(qū)組織稱質(zhì)量,加入10μl/mg蛋白酶抑制劑,充分研磨,4℃下3000 r/min離心20 min,取上清。按試劑盒說(shuō)明書操作,酶標(biāo)儀計(jì)算IL-1β、TNF-α含量。
采用SPSS 20.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。數(shù)據(jù)用(xˉ±s)表示。神經(jīng)功能缺損評(píng)分不符合正態(tài)分布,采用非參數(shù)檢驗(yàn)獨(dú)立樣本成對(duì)比較。逃避潛伏期、進(jìn)入錯(cuò)誤洞口次數(shù)、嘌呤受體P2X7平均OD值、IL-1β和TNF-α的含量均符合正態(tài)分布,采用單因素方差分析,兩兩比較,方差齊者用LSD法,方差不齊用Games Howell法。顯著性水平α=0.05。
假手術(shù)組無(wú)神經(jīng)功能缺損;干預(yù)前,模型組和電針組間神經(jīng)行為學(xué)評(píng)分無(wú)顯著性差異(P>0.05);模型組和電針組Longa評(píng)分逐漸下降;干預(yù)后7 d,電針組較模型組降低(P<0.05)。見(jiàn)表1。
表1 各組Longa評(píng)分比較
干預(yù)7 d后,與假手術(shù)組相比,模型組逃避潛伏期顯著延長(zhǎng)(P<0.001),進(jìn)入錯(cuò)誤洞口次數(shù)顯著增多(P<0.001);與模型組相比,電針組逃避潛伏期顯著縮短(P<0.001),進(jìn)入錯(cuò)誤洞口次數(shù)顯著減少(P<0.001)。見(jiàn)表2。與假手術(shù)組相比,模型組大鼠軌跡分散于四周,雜亂;與模型組相比,電針組大鼠軌跡較集中,能較迅速找到目標(biāo)洞口。見(jiàn)圖1。
與假手術(shù)組相比,模型組大鼠IL-1β、TNF-α水平明顯升高(P<0.01);與模型組相比,電針組IL-1β、TNF-α降低(P<0.05)。見(jiàn)表3。
表2 各組Barnes迷宮測(cè)試結(jié)果比較
假手術(shù)組P2X7受體平均光密度值顯著低于模型組(P<0.001);與模型組相比,電針組P2X7受體表達(dá)明顯減少(P<0.01)。見(jiàn)表3。模型組P2X7受體表達(dá)散亂,電針組表達(dá)較規(guī)整。見(jiàn)圖2。
表3 各組大鼠海馬CA1區(qū)P2X7受體、IL-1β和TNF-α表達(dá)
圖1 干預(yù)7 d各組尋找目標(biāo)洞口軌跡圖
圖2 干預(yù)7 d各組海馬CA1區(qū)嘌呤受體P2X7表達(dá)(免疫熒光染色,100×)
腦卒中后認(rèn)知功能障礙主要表現(xiàn)為記憶力減退、執(zhí)行功能障礙、注意力障礙、判斷力和抽象思維損害。督脈聯(lián)絡(luò)腦及臟腑,總督一身陽(yáng)脈之氣,與神志密切相關(guān)。督脈調(diào)暢,腦髓得以濡養(yǎng),神機(jī)靈透,肢體活動(dòng)自如;若督脈虧虛,髓海失充,則神明失用。百會(huì)為“三陽(yáng)五會(huì)”,位居巔頂;頭為諸陽(yáng)之會(huì),百脈之宗,百會(huì)穴則為各經(jīng)脈氣會(huì)聚之處。神庭是督脈、陽(yáng)明經(jīng)、足太陽(yáng)交匯之穴,為神志所在,其功在神。針刺督脈穴位百會(huì)、神庭有醒腦開(kāi)竅、安神定志、增強(qiáng)記憶之功。
針刺可以改善腦缺血再灌注大鼠的神經(jīng)功能缺損癥狀。李夢(mèng)瑤等[23]發(fā)現(xiàn),電針能讓局灶性腦缺血再灌注大鼠血中內(nèi)源性內(nèi)皮祖細(xì)胞含量增加,并能促進(jìn)神經(jīng)功能恢復(fù)。皮敏等[24]研究表明,電針督脈穴位能改善腦缺血再灌注大鼠的神經(jīng)功能。梁超等[25]發(fā)現(xiàn),不同變頻組合電針頭穴預(yù)處理能減輕腦缺血后大鼠神經(jīng)功能損傷。本研究顯示,電針百會(huì)、神庭穴能夠有效緩解腦缺血再灌注大鼠的神經(jīng)功能缺損癥狀。
針刺也能改善大鼠的認(rèn)知功能障礙。蔡麗等[26]針刺百會(huì)、四神聰?shù)妊?,針刺組記憶功能顯著提高。陳彬等[27]發(fā)現(xiàn),針刺能改善大鼠學(xué)習(xí)記憶功能。
Barnes迷宮對(duì)動(dòng)物應(yīng)激性刺激較小,不需要食物剝奪和足底電擊,既不需要像放射臂迷宮那樣禁食,也不需要像水迷宮那樣強(qiáng)應(yīng)激,且能排除Morris水迷宮等測(cè)試中大鼠肢體運(yùn)動(dòng)功能障礙對(duì)實(shí)驗(yàn)的影響,有較高認(rèn)可度。本研究顯示,電針可以降低腦缺血再灌注大鼠逃避潛伏期,減少其進(jìn)入錯(cuò)誤洞口次數(shù),改善大鼠學(xué)習(xí)記憶能力。
細(xì)胞外ATP激活P2X7受體促進(jìn)IL-1β產(chǎn)生和釋放,是一條公認(rèn)的炎癥相關(guān)通路。有研究表明[28],針刺對(duì)嘌呤受體有一定調(diào)控作用。電針治療可下調(diào)脊髓嘌呤受體表達(dá),減輕結(jié)腸免疫反應(yīng),減輕內(nèi)臟痛覺(jué)敏感性[29-30]。Burnstock[28]發(fā)現(xiàn),在中腦水管周圍灰質(zhì)區(qū),電針對(duì)脊椎的鎮(zhèn)痛效應(yīng)與嘌呤受體活化密切相關(guān);在脊髓背根神經(jīng)元中,電針通過(guò)調(diào)控嘌呤受體,提高慢性神經(jīng)性疼痛大鼠的痛閾。本研究表明,電針百會(huì)、神庭穴可有效抑制腦缺血再灌注大鼠P2X7受體表達(dá)。
本課題組前期研究表明,電針可能通過(guò)調(diào)控Toll樣受體-4、核轉(zhuǎn)錄因子-κB信號(hào)通路,抑制缺血周圍皮質(zhì)區(qū)小膠質(zhì)細(xì)胞的活化及炎性因子TNF-α、IL-1β、IL-6釋放[5,31-32]。有研究顯示[33-34],針刺百會(huì)、大椎7 d,也能有效抑制治療腦缺血再灌注大鼠缺血皮質(zhì)半暗帶TNF-α表達(dá),改善神經(jīng)功能障礙。本研究發(fā)現(xiàn),電針百會(huì)、神庭穴可有效抑制腦缺血再灌注大鼠炎性因子IL-1β、TNF-α表達(dá)。
綜上所述,電針百會(huì)、神庭穴能夠改善腦缺血再灌注大鼠的空間學(xué)習(xí)記憶能力,其機(jī)制可能與抑制嘌呤受體P2X7表達(dá),降低炎性因子IL-1β、TNF-α水平,改善海馬CA1區(qū)神經(jīng)炎癥反應(yīng)有關(guān)。
[1]Mozaffarian D,Benjamin EJ,Go AS,et al.Executive Summary:Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update:a report from the American Heart Association[J].Circulation,2016,133(4):447-454.
[2]Murphy SL,Xu J,Kochanek KD,et al.Deaths:Final Data for 2013[J].Natl Vital Stat Rep,2016,64(2):1-119.
[3]Agnès J,Christine B,Olivier R,et al.Post-stroke cognitive im
pairment:high prevalence and determining factors in a cohort of mild stroke[J].JAlzheimers Dis,2014,40(4):1029-1038.
[4]Taylor RA,Sansing LH.Microglial responses after ischemic stroke and intracerebral hemorrhage[J].Clin Dev Immunol,2013,2013:746068.
[5]Feng X,Yang S,Liu J,et al.Electro-acupuncture ameliorates cognitive impairment through inhibition of NF-κB-mediated neuronal cell apoptosis in cerebral ischemia-reperfusion injured rats[J].Mol Med Rep,2013,7(5):1516-1522.
[6]宋長(zhǎng)明,黃佳,林冰冰,等.電針百會(huì)、神庭穴對(duì)腦缺血再灌注大鼠學(xué)習(xí)記憶能力及海馬CA1區(qū)突觸超微結(jié)構(gòu)的影響[J].中國(guó)康復(fù)理論與實(shí)踐,2017,23(7):750-755.
[7]林志誠(chéng),楊珊莉,薛偕華,等.針刺百會(huì)穴改善腦卒中患者記憶力的中樞機(jī)制[J].中國(guó)康復(fù)理論與實(shí)踐,2015,20(2):184-188.
[8]Jiang C,Yang S,Tao J,et al.Clinical Efficacy of acupuncture treatment in combination with RehaCom Cognitive Training for improving cognitive function in stroke:a 2×2 factorial design randomized controlled trial[J].J Am Med Dir Assoc,2016,17(12):1114-1122.
[9]Tort ABL,Komorowski RW,Manns JR,et al.Theta-gamma coupling increases during the learning of item-context associations [J].Proc Natl Acad Sci USA,2009,106(49):20942-20947.
[10]Nikonenko AG,Radenovic L,Andjus PR,et al.Structural features of ischemic damage in the hippocampus[J].Anat Rec,2009,292(12):1914-1921.
[11]Kerchner GA,Hess CP,Hammondrosenbluth KE,et al.Hippocampal CA1 apical neuropil atrophy in mild Alzheimer disease visualized with 7-T MRI(Podcast)[J].Neurology,2010,75(15):1381-1387.
[12]Kerchner GA,Deutsch GK,Zeineh M,et al.Hippocampal CA1 apical neuropil atrophy and memory performance in Alzheimer'sdisease[J].Neuroimage,2012,63(1):194-202.
[13]Pankratov YV,Lalo UV,Krishtal OA.Role for P2X receptors in long-term potentiation[J].J Neurosci,2002,22(19):8363-8369.
[14]Chin Y,Kishi M,Sekino M,et al.Involvement of glial P2Y1 receptors in cognitive deficit after focal cerebral stroke in a rodent model[J].JNeuroinflammation,2013,10(1):95.
[15]Illes P,Verkhratsky A.Purinergic neurone-glia signalling in cognitive-related pathologies[J].Neuropharmacology,2016,104:62-75.
[16]Amantea D,Micieli G,Tassorelli C,et al.Rational modulation of the innate immune system for neuroprotection in ischemic stroke[J].Front Neurosci,2015,9(12):2366-2378.
[17]Burnstock G.P2X ion channel receptors and inflammation[J].Purinergic Signal,2016,12(1):59-67.
[18]Deng Y,Guo XL,Yuan X,et al.P2X7 receptor antagonism attenuates the intermittent hypoxia-induced spatial deficits in a murine model of sleep apnea via inhibiting neuroinflammation and oxidative stress[J].Chin Med J(Engl),2015,128(16):2168-2175.
[19]Chu K,Yin B,Wang J,et al.Inhibition of P2X7 receptor ameliorates transient global cerebral ischemia/reperfusion injury via modulating inflammatory responses in the rat hippocampus[J].JNeuroinflammation,2012,9(1):150-159.
[20]Joana A,Alberto PS,Miroslav G,et al.P2X7 receptor blockade prevents ATP excitotoxicity in neurons and reduces brain damage after ischemia[J].Neurobiol Dis,2012,45(3):954-961.
[21]Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al.Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J].Stroke,1989,20(1):84-91.
[22]李忠仁.實(shí)驗(yàn)針灸學(xué)[M].北京:中國(guó)中醫(yī)藥出版社,2003.
[23]李夢(mèng)瑤,李向榮,高瓊玨,等.電針對(duì)局灶性腦缺血再灌注大鼠血中EPCs含量及其神經(jīng)功能缺損程度的影響[J].中醫(yī)藥通報(bào),2017,16(3):39-42.
[24]皮敏,陳鵬典,楊卓欣,等.電針督脈聯(lián)合人臍血間充質(zhì)干細(xì)胞移植對(duì)腦缺血大鼠神經(jīng)功能缺損及細(xì)胞凋亡的影響[J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2014,25(2):492-495.
[25]梁超,姜濤,王靜芝,等.不同變頻組合電針預(yù)處理對(duì)急性腦缺血大鼠神經(jīng)功能和腦皮質(zhì)促紅細(xì)胞生成素的影響[J].中國(guó)中醫(yī)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)雜志,2017,23(5):686-688.
[26]蔡麗,劉毅,陸小青.針刺對(duì)卒中后抑郁大鼠空間學(xué)習(xí)記憶功能及海馬CA3區(qū)腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子的影響[J].上海針灸雜志,2016,35(4):462-465.
[27]陳彬,張志濤,駱健明,等.針刺治療對(duì)缺血缺氧性腦病模型鼠學(xué)習(xí)與記憶能力的影響[J].中國(guó)醫(yī)藥,2014,9(8):1159-1163.
[28]Burnstock G.Purinergic signaling in acupuncture[J].Science,2014,346(6216):S23-S25.
[29]Weng ZJ,Wu LY,Zhou CL,et al.Effect of electro-acupuncture on P2X3 receptor regulation in the peripheral and central nervous systems of rats with visceral pain caused by irritable bowel syndrome[J].Purinergic Signal,2015,11(3):321-329.
[30]Guo X,Chen J,Yuan L,et al.Electro-acupuncture at He-Mu points reduces P2X4 receptor expression in visceral hypersensitivity[J].Neural Regen Res,2013,8(22):2069-2077.
[31]Liu W,Wang X,Zheng Y,et al.Electro-acupuncture inhibits inflammatory injury by targeting the miR-9-mediated NF-κB signaling pathway following ischemic stroke[J].Mol Med Rep,2016,13(2):1618-1626.
[32]Lan L,Tao J,Chen A,et al.Electro-acupunctureexerts anti-inflammatory effects in cerebral ischemia-reperfusion injured rats via suppression of the TLR4/NF-κB pathway[J].Int JMol Med,2013,31(1):75-80.
[33]Chen SH,Sun H,Xu H,et al.[Effects of acupuncture of"Baihui"(GV 20)and"Zusanli"(ST 36)on expression of cerebral IL-1beta and TNF-alpha proteins in cerebral ischemia reperfusion injury rats][J].[in Chinese].Zhen Ci Yan Jiu,2012,37(6):470-475.
[34]Cheng CY,Lin JG,Tang NY,et al.Electro-acupuncture-like stimulation at the Baihui(GV20)and Dazhui(GV14)acupoints protects rats against subacute-phase cerebral ischemia-reperfusion injuries by reducing S100B-mediated neurotoxicity[J].PLoSOne,2014,9(3):e91426.