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    脂肪來源干細(xì)胞在勃起功能障礙治療中的研究進(jìn)展

    2017-01-14 09:19:26周哲綜述盧慕峻審校
    中國男科學(xué)雜志 2017年2期
    關(guān)鍵詞:海綿體陰莖平滑肌

    周哲 綜述 盧慕峻 審校

    上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬仁濟醫(yī)院泌尿外科(上海 200001)

    脂肪來源干細(xì)胞在勃起功能障礙治療中的研究進(jìn)展

    周哲 綜述 盧慕峻 審校

    上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬仁濟醫(yī)院泌尿外科(上海 200001)

    陰莖不能獲得和(或)維持充分的勃起以完成滿意性交的病理狀態(tài)稱之為勃起功能障礙(erectile dysfunction,ED)。ED是一個廣泛存在的健康問題,世界范圍內(nèi)的發(fā)病率約為10%~20%,其對病人及其伴侶的生活質(zhì)量都帶來了極大的困擾。

    1998年,磷酸二酯酶5抑制劑(phosphodiesterase type-5 inhibitors, PDE5-i)第一個代表藥物西地那非的問世,使ED的治療取得了突破性的進(jìn)展。該類藥物一度成為ED治療的一線用藥[1],但是它與硝酸鹽制劑具有協(xié)同降壓作用,因此PDE5-i禁用于同時服用硝酸鹽制劑的患者。同時,該類藥物會產(chǎn)生頭痛、臉紅、鼻塞、視物模糊和消化不良等副作用[1],有效率只有60%~70%,而且30%~50%的病人會因為花費高且達(dá)不到預(yù)期效果等原因中斷服藥。由于PDE5-i的治療效應(yīng)依賴于NO信號通路的完整性,某些ED(如嚴(yán)重糖尿病ED、前列腺癌根治術(shù)后ED、動脈粥樣硬化ED、高齡性ED、性腺功能低下ED)患者體內(nèi)可用性NO明顯減少,因此PDE5-i治療上述ED患者收效甚微。其他的傳統(tǒng)替代治療ED方法,如:海綿體內(nèi)藥物注射、真空負(fù)壓吸引裝置、陰莖假體植入等因其耐受性等問題不能廣泛應(yīng)用,而且這些治療旨在緩解ED癥狀,并不是病因?qū)W治療。

    近年來,基于干細(xì)胞的治療逐漸成為研究熱點。脂肪來源干細(xì)胞(adipose-derived stem cells, ADSCs)是從脂肪組織的基質(zhì)血管成分中分離的多能祖細(xì)胞,具有自我更新及多向分化潛能,并且可以分泌多種參與組織修復(fù)的生長因子。與其他組織來源相比,脂肪組織來源豐富,取材方便,對患者損傷小。另外,ADSCs易于培養(yǎng)和擴增,具有表面抗原和相關(guān)標(biāo)志物,逐漸成為治療ED的理想干細(xì)胞來源。

    一、ADSCss治療ED的評估方法

    在ADSCs治療ED的臨床前研究中,大鼠是最常用的實驗動物。為結(jié)合臨床應(yīng)用,最常用的ED模型為海綿體神經(jīng)損傷性勃起功能障礙(cavernous nerve injury erectile dysfunction, CNIED)模型[2,3]和糖尿病ED模型[4-6],另外高脂相關(guān)性ED模型[7]、煙草相關(guān)性ED模型[8]也被用于研究。干細(xì)胞移植的方式主要為海綿體內(nèi)注射(intracavernous injecte ICI),同時有研究表明,前列腺周圍注射同樣可以改善CNI-ED的勃起功能[9]。勃起功能的檢測主要是通過電刺激海綿體神經(jīng),然后記錄海綿體內(nèi)壓(intracavernous pressure,ICP) 變化或者海綿體內(nèi)壓/平均動脈壓(intracavernosal pressure/mean arterial pressure,ICP/ MAP)的變化。此外,內(nèi)皮細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞、神經(jīng)性一氧化氮合酶(neuronal nitric oxide synthase,nNOS)、內(nèi)皮性一氧化氮合酶(endothelial nitric oxide synthase, eNOS)、平滑肌膠原比率及凋亡相關(guān)指標(biāo)的組織學(xué)和分子水平的變化,也被用來作為治療有效性的評價標(biāo)準(zhǔn)[5,6]。

    二、ADSCss在ED治療中的應(yīng)用

    2010年,Garcia首次將自體ADSCs進(jìn)行ICI治療糖尿病性ED,3周后實驗組陰莖背神經(jīng)中nNOS的含量明顯多于對照組,且實驗組具有更高的ICP/ MAP,上述結(jié)果表明,ADSCs海綿體內(nèi)注射可以明顯改善糖尿病大鼠的勃起功能,并引起了其海綿體內(nèi)微結(jié)構(gòu)的改變[10]。隨后,Albersen等用同樣的方法檢測了ADSCs及ADSCs裂解產(chǎn)物對CNI-ED的治療效應(yīng),他們發(fā)現(xiàn)ADSCs及ADSCs裂解產(chǎn)物均改善了大鼠的勃起功能,且兩組的平滑肌和nNOS含量均高于對照組[11]。接下來,更多的實驗研究證實了自體ADSCs在治療糖尿病性ED和CNI-ED中的有效性[4,12]。另外,大量研究表明同種異體ADSCs[4,5]和異種ADSCs[2]同樣可以改善上述兩種ED大鼠的勃起功能,而無明顯排斥免疫反應(yīng)發(fā)生,進(jìn)一步拓寬了治療ED的ADSCs的來源。研究表明ADSCs還能促進(jìn)高脂相關(guān)性ED[7]及煙草相關(guān)性ED[8]的勃起功能恢復(fù)。另外,接種自體靜脈支架[13]、偶聯(lián)生長因子[2,4]、低氧預(yù)處理[5]和磁化處理[14]后的ADSCs均較單純ADSCs更好地促進(jìn)了勃起功能的恢復(fù)。

    上述大量臨床前的研究均表明ADSCs對ED治療的有效性。2016年Haahr等[15]首次進(jìn)行了自體原代ADSCs 治療前列腺癌根治術(shù)后ED的一期臨床實驗,邁出了ADSCs治療ED從基礎(chǔ)研究到臨床轉(zhuǎn)化的第一步。共有17例藥物治療無效的前列腺癌根治術(shù)后ED患者納入研究,其中11例患者可以自行控尿,6例患者同時存在尿失禁,術(shù)后5~18個月開始應(yīng)用ADSCs海綿體內(nèi)注射進(jìn)行治療,治療后6個月,8例患者恢復(fù)了勃起功能并可以完成性交,且該8例患者從術(shù)后3個月開始國際勃起功能指數(shù)5(international index of erectile function-5, IIEF-5)評分明顯提高,但勃起硬度評分(erection hardness score,EHS)的明顯提高出現(xiàn)在術(shù)后6個月。另外,該8例患者全部來自可控尿組,尿失禁組患者的勃起功能無明顯改善。在治療1個月內(nèi),只有5例患者出現(xiàn)與抽脂和細(xì)胞注射部位相關(guān)的輕度并發(fā)癥,如局部紅腫、腹痛,經(jīng)簡單對癥處理后好轉(zhuǎn)。該研究表明自體原代ADSCs 對治療前列腺癌根治術(shù)后ED有潛在療效,且該方法是安全的。但隨后評論者們[16]提出該研究中不同患者ADSCs注射的數(shù)量從840萬到3720萬不等,差異較大,會對結(jié)果造成直接影響,且在安全性評估中,未對全身進(jìn)行系統(tǒng)性的評估,僅僅評估了抽脂和細(xì)胞注射部位,存在一定缺陷。另外該研究中,未提供治療有效的8例患者是否采用了保留性神經(jīng)手術(shù)的信息,所以不能判定勃起功能的恢復(fù)是ADSCs治療的效果還是保留性神經(jīng)的手術(shù)后的自行恢復(fù),因為保留性神經(jīng)的手術(shù)術(shù)后24個月仍然存在勃起功能的自行恢復(fù),而該研究中ADSCs的平均治療時間點為術(shù)后10.1個月。另外,該研究缺少有效的對照,所以正如作者提到的,需要大樣本的隨機安慰劑對照實驗進(jìn)一步驗證這種治療的有效性和安全性。然而毫無疑問,該開拓性的研究為難治性ED帶來了新的希望,有廣泛的應(yīng)用前景。

    三、ADSCss治療ED的作用機制

    ADSCs治療ED的作用機制主要包括ADSCs的分化作用和旁分泌作用,且越來越多的研究認(rèn)為,旁分泌作用在ADSCs治療ED的過程中起到了主要作用。

    ADSCs同其他干細(xì)胞一樣,具有多項分化功能,且在體外可以分化成神經(jīng)樣細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞,而上述3種細(xì)胞是陰莖勃起的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ),這是研究者認(rèn)為ADSCs通過分化作用治療ED的基礎(chǔ)。Bella等報道ADSCs可以改善CNI大鼠的勃起功能,部分BrdU標(biāo)記的ADSCs在勃起組織內(nèi)轉(zhuǎn)化成了內(nèi)皮細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞[17]。Kim等在CNI大鼠的CN內(nèi)檢測到了ADSCs向神經(jīng)細(xì)胞轉(zhuǎn)化,同時發(fā)現(xiàn)NGF-水凝膠的聯(lián)合應(yīng)用可以極大的促進(jìn)這種轉(zhuǎn)化作用[18]。

    然而,很多研究表明ICI的ADSCs經(jīng)過1個月左右已所剩無幾[19],且植入的ADSCs會隨著時間推移逐漸減少[7],但是大鼠的勃起功能卻明顯改善,所以旁分泌機制可能起了主要作用。Albersen等報道ADSCs裂解產(chǎn)物ICI同ADSCs一樣改善了CNI大鼠的勃起功能,同時這兩組大鼠陰莖背神經(jīng)和平滑肌的含量均高于對照組,而發(fā)生凋亡的平滑肌和內(nèi)皮細(xì)胞少于對照組,說明ADSCs對ED的治療可能是通過其細(xì)胞內(nèi)釋放的物質(zhì)對神經(jīng)的保護(hù)及細(xì)胞凋亡的抑制實現(xiàn)的[11]。

    Yang等[19]報道,ADSCs通過促進(jìn)NGF、VEGF及神經(jīng)生長因子抗體3種營養(yǎng)因子的含量恢復(fù),促進(jìn)了神經(jīng)再生,抑制了細(xì)胞凋亡,最終實現(xiàn)了勃起功能的恢復(fù)。Chen等[20]報道ADSCs在治療CNI-ED的過程中,色素上皮來源因子(pigment epithelium-derived factor, PEDF),p-Akt, and p-eNOS的表達(dá)均明顯增加,表明ADSCs分泌PEDF的神經(jīng)營養(yǎng)作用及其下游PI3K/Akt通路的激活可能是其潛在的機制。Fandel等[12]報道,在CN損毀所致的ED中,CN受損上調(diào)了盆腔主要神經(jīng)節(jié)(major pelvic ganglia,MPG)中基質(zhì)細(xì)胞衍生因子-1(stromal cell-derived factor-1,SDF-1)的表達(dá),從而吸引海綿竇內(nèi)注射的ADSCs向MPG歸巢,在MPG中ADSCs產(chǎn)生了修復(fù)CN的作用,進(jìn)而改善勃起功能。而且隨著ADSCs向MPG的遷移增加,陰莖nNOS含量也逐漸增加,表明ADSCs向MPG的遷移是神經(jīng)再生不可缺少的條件。

    Yiou等[21]對大鼠尿道括約肌和前列腺及尿道伴行神經(jīng)進(jìn)行了不可逆損傷,隨后將人ADSCs注射到大鼠的陰莖海綿體,術(shù)后3個月大鼠的排尿功能和勃起功能均明顯改善,他們發(fā)現(xiàn)這種改善極少通過ADSCs的轉(zhuǎn)化作用實現(xiàn),但是在大鼠陰莖內(nèi)人來源的VEGF、HGF、 胰島素樣生長因子-1(insulin-like growth factor-1, IGF-1)、 IGF-2、 SDF-1a、趨化因子配體1[chemokine (C-X-C motif) ligand, 1 CXCL1]、白介素-6 、e-NOS、BDNF及NGF均明顯增加,同時大鼠陰莖中自身分泌的SDF-1, IGF-1, eNOS也明顯增加,說明ADSCs不但通過自身的旁分泌作用發(fā)揮作用,還激活了大鼠自身組織的分泌作用,兩者聯(lián)合促進(jìn)了勃起功能的改善。

    綜上所述,大量臨床前研究表明ADSCs在治療ED方面呈現(xiàn)出明顯的有效性和獨特的優(yōu)勢,部分研究已進(jìn)入臨床實驗階段,其治療效應(yīng)主要是通過旁分泌作用實現(xiàn)的。ADSCs有望進(jìn)一步用于臨床ED的治療,實施更多的隨機安慰劑對照臨床實驗及進(jìn)一步明確其中的相關(guān)修復(fù)機制,可能是今后研究者們進(jìn)一步深入探索的方向。

    干細(xì)胞; 勃起功能障礙

    1朱朝輝, 許文平. 中國男科學(xué)雜志 2016; 30(3): 70-72

    2Lee SH, Kim IG, Jung AR, et al. Tissue Eng Part A 2014; 20(17-18): 2446-2454

    3Shan H, Chen F, Zhang T, et al. PLoS ONE 2015; 10(4): e0121428

    4Liu T, Peng Y, Jia C, et al. Growth factors 2015; 33(4): 282-289

    5Wang X, Liu C, Li S, et al. PLoS ONE 2015; 10(3): e0118951

    6Li M, Li H, Ruan Y, et al. PLoS ONE 2016; 11(4): e0154341

    7Huang YC, Ning H, Shindel AW, et al. J Sex Med 2010; 7(4 Pt 1): 1391-1400

    8Huang YC, Kuo YH, Huang YH, et al. PLoS ONE 2016; 11(6): e0156725

    9You D, Jang MJ, Lee J, et al. Prostate 2013; 73(3): 278-286

    10Garcia MM, Fandel TM, Lin G, et al. J Sex Med 2010; 7(1 Pt 1): 89-98

    11Albersen M, Fandel TM, Lin G, et al. J Sex Med 2010; 7(10): 3331-3340

    12Fandel TM, Albersen M, Lin G, et al. Eur Urol 2012; 61(1): 201-210

    13Ying C, Hu W, Cheng B, et al. Cell Mol Neurobiol 2014; 34(3): 393-402

    14Lin H, Dhanani N, Tseng H, et al. J Urol 2016; 195(3): 788-795

    15Haahr MK, Jensen CH, Toyserkani NM, et al. EbioMedicine 2016; 5: 204-210

    16Albersen M, Bivalacqua TJ. EBioMedicine 2016; 5: 28-29

    17Bella AJ, Lin G, Phonsombat S, et al. Sexual Medicine Society of North America Meeting 2008: 68

    18Kim IG, Piao S, Lee JY, et al. Tissue Eng Part A 2013; 19:14-23

    19Yang R, Fang F, Wang J, et al. Andrology 2015; 3(4): 694-701

    20Chen X, Yang Q, Zheng T, et al. Stem Cells Int 2016; 2016: 5161248

    21Yiou R, Mahrouf-Yorgov M, Trébeau C, et al. Stem Cells 2016; 34(2): 392-404

    (2017-01-08收稿)

    :10.3969/j.issn.1008-0848.2017.02.016

    R 698.1

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