摘要:目的 本研究采用重組色素上皮源性因子腺病毒(Ad-PEDF)轉(zhuǎn)染小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)后,評估MSCs作為攜帶PEDF基因載體的可行性。方法 Ad-PEDF在HEK293細(xì)胞中擴(kuò)增,并純化后。將其轉(zhuǎn)染入MSCs(MSCs-PEDF),用Western Blot和ELISA檢測培養(yǎng)上清液中PEDF的表達(dá)。結(jié)果 用Western Blot檢測細(xì)胞培養(yǎng)上清中的PEDF為陽性表達(dá)。ELISA檢測培養(yǎng)上清中PEDF濃度為78.8±4.8 ng/ml。結(jié)論 MSCs可以作為使用PEDF基因治療腫瘤的載體。
關(guān)鍵詞:骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞;色素上皮衍生因子;基因治療;抗血管生成
血管生成是腫瘤生長和轉(zhuǎn)移的必要條件[1],因此,抗血管生成治療是腫瘤治療的一個重要部分。色素上皮衍生因子(PEDF)是已知最強(qiáng)的內(nèi)源性血管生成抑制因子,可通過抑制血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖、遷移及誘導(dǎo)其凋亡來發(fā)揮其抗血管生成作用[2]。重組PEDF蛋白以及病毒載體介導(dǎo)的PEDF基因治療已應(yīng)用于多個實(shí)驗研究,并顯示出治療前景[4]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)作為一種新穎、有效的靶向腫瘤細(xì)胞的載體可能為提高PEDF的治療效果提供一種新的策略[3]。本研究擬通過重組色素上皮源性因子腺病毒(Ad-PEDF)轉(zhuǎn)染小鼠MSCs后,從而評估MSCs作為腫瘤基因治療的載體的可行性。
1 資料與方法
1.1細(xì)胞培養(yǎng)
1.1.1 293細(xì)胞的培養(yǎng) 將293細(xì)胞置于含有10%FBS及100U/ml阿米卡星的DMEM培養(yǎng)基中,在37℃、5%CO2, 95%濕度條件下的孵箱中培養(yǎng),以 0.25% 的胰蛋白酶消化,一般2~3d傳代一次。
1.1.2人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVECs)的分離及培養(yǎng) 取產(chǎn)后新鮮臍帶15~20cm,用血管鉗夾緊臍帶一端,從另一端注入0.1%的膠原酶消化。將收集的消化液體離心(1500轉(zhuǎn)/min)3min。接種于培養(yǎng)瓶中,置于孵箱中培養(yǎng)。
1.1.3小鼠MSCs的分離、培養(yǎng)及鑒定取。6~8周齡C57BL/6雌性小鼠,處死后在無菌條件下取股骨和脛骨,離心后用含有10% FBS的DMEM培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,并接種于方瓶中,置于孵箱中培養(yǎng)。
1.2 PEDF重組腺病毒載體(Ad-PEDF)的擴(kuò)增與純化
1.2.1 Ad-PEDF的擴(kuò)增 將293細(xì)胞傳代培養(yǎng),當(dāng)其密度達(dá)到90%時,加入適量病毒上清感染細(xì)胞。約2~3d后出現(xiàn)細(xì)胞病變,待細(xì)胞幾乎變圓,且有一半細(xì)胞漂浮時,收集細(xì)胞上清液至離心管中,3000轉(zhuǎn)/min,4℃,離心10min,將上清液用0.45μm濾器過濾,保存于-80℃。
1.2.2病毒純化 使用Vira TrapTM Adenovirus Purification Maxiprep Kit 純化病毒(具體步驟見說明書)。
1.2.3病毒滴度測定(TCID50法) 將293細(xì)胞以1×104個/孔接種于96孔板中,將病毒液按對數(shù)級稀釋(10-5~10-10),每個濃度設(shè)置10個復(fù)孔,連續(xù)觀察10d后記錄每個稀釋度出現(xiàn)CPE(致細(xì)胞病變效應(yīng))的孔數(shù),計算細(xì)胞病變率。如果某一濃度各孔細(xì)胞全部病變,比率為1,如無細(xì)胞病變,則比率為0。
1.3重組腺病毒體外感染MSCs 加入含有適量 Ad-PEDF 重組腺病毒低糖DMEM,感染復(fù)數(shù)(MOI)=1500,搖勻,置于孵育箱中培養(yǎng)4h后換液,48h后收集感染后MSCs。
1.4檢測 MSCs-PEDF 中 PEDF蛋白的體外表達(dá)
1.4.1樣品制備 加入Ad-PEDF的MSCs作為對照。收集各組的培養(yǎng)液上清,采用Western blot 體外表達(dá)的PEDF蛋白進(jìn)行鑒定分析,采用ELISA測定培養(yǎng)上清中PEDF濃度,分別測定三組培養(yǎng)上清中的PEDF濃度。
1.5統(tǒng)計學(xué)分析 應(yīng)用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,實(shí)驗所得數(shù)據(jù)采用(x±s)表示,多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析(ANOVA);P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1小鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)的分離培養(yǎng)和鑒定 MSCs的原代培養(yǎng):原代細(xì)胞生長較慢,2w左右可長滿瓶底,傳代后細(xì)胞生長速度則明顯加快,可得到較高純度的MSCs。傳代3次后,細(xì)胞形態(tài)較為一致,呈長梭形,多為平行排列生長或漩渦狀生長。
2.2重組腺病毒驗證及滴度測定 DNA電泳顯示Ad-PEDF泳道在1200~1500bp之間出現(xiàn)一單一條帶。說明擴(kuò)增的腺病毒含有PEDF基因。
2.3 Ad-PEDF轉(zhuǎn)染MSCs后重組PEDF的體外表達(dá)檢測 轉(zhuǎn)染了Ad-PEDF的MSCs(MSCs-PEDF)細(xì)胞裂解液及培養(yǎng)液上清在50KD處均出現(xiàn)一明顯條帶,說明MSCs-PEDF可表達(dá)重組PEDF并分泌至細(xì)胞外。ELISA檢測結(jié)果表明,MSCs-PEDF培養(yǎng)上清中的PEDF濃度可78.8ng/ml,而MSCs-LacZ及MSCs則僅微量表達(dá)。
3 討論
在本研究中,我們通過體外實(shí)驗證明了攜帶有PEDF基因的MSCs在細(xì)胞裂解液及培養(yǎng)液中陽性表達(dá)PEDF。腫瘤進(jìn)展依賴于新的血管網(wǎng)的生成以供給其營養(yǎng)[7]。血管生成在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及轉(zhuǎn)移過程中都發(fā)揮著重要作用。如果能有效地阻止腫瘤的血管生成,就有望控制手術(shù)或放、化療治療后腫瘤的復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移。
PEDF最初是從胎兒視網(wǎng)膜色素上皮細(xì)胞中分離得到,而近年來,人們發(fā)現(xiàn)它有著強(qiáng)有力的抗血管生成活性[4]。PEDF可通過以下機(jī)制來實(shí)現(xiàn)其對血管生成的抑制作用:①抑制內(nèi)皮細(xì)胞增殖和遷移以及形成小管;②通過Fas/FasL通路誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞凋亡;③下調(diào)促血管生成因子特別是VEGF的表達(dá),從而打破促血管生成因子和抗血管生成因子之間的平衡[5]。以上的生理特性,奠定了PEDF應(yīng)用于腫瘤治療的基礎(chǔ)。目前,已有大量的實(shí)驗研究顯示,PEDF可顯著抑制腫瘤的生長和轉(zhuǎn)移。純化的重組蛋白在體內(nèi)易于降解,純化困難,價格較昂貴。而以病毒或非病毒為載體的基因治療難以在腫瘤組織內(nèi)達(dá)到較高的治療濃度。這些缺點(diǎn)大大降低了它們潛在的治療效果和應(yīng)用價值。因此,如何將PEDF基因有效地運(yùn)送到腫瘤部位,并使其在局部持續(xù)表達(dá)是本實(shí)驗今后的研究重點(diǎn)。
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編輯/蔡睿琳