柳光芬
(重慶市消防總隊(duì)醫(yī)院 401120)
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·論 著·
二甲雙胍對(duì)人絨毛膜癌細(xì)胞凋亡的影響
柳光芬
(重慶市消防總隊(duì)醫(yī)院 401120)
目的 觀察二甲雙胍對(duì)人絨毛膜癌細(xì)胞凋亡的影響和可能的作用機(jī)制。方法 選用人絨毛膜癌細(xì)胞系JEG-3,分為對(duì)照組和二甲雙胍組(終濃度為5、10、20、40 mmol/L)處理48 h后,使用流式細(xì)胞術(shù)和免疫熒光檢測細(xì)胞凋亡情況,分別采用實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)和免疫蛋白印跡檢測凋亡相關(guān)基因半胱天冬酶-3(Caspase-3)、Bcl-2和凋亡調(diào)節(jié)蛋白(Bax)的mRNA及蛋白變化趨勢(shì)。結(jié)果 和對(duì)照組相比,二甲雙胍組的JEG-3細(xì)胞早晚期凋亡率顯著上升,同時(shí)Caspase-3和Bax的mRNA及蛋白表達(dá)水平顯著增加,但Bcl-2的mRNA和蛋白表達(dá)顯著降低。結(jié)論 二甲雙胍可以通過Caspase-3及Bcl-2/Bax通路誘導(dǎo)JEG-3細(xì)胞發(fā)生凋亡。
人絨毛膜癌細(xì)胞; 二甲雙胍; 細(xì)胞凋亡
絨毛膜癌是一種較為罕見的婦產(chǎn)科腫瘤,其來源于滋養(yǎng)層細(xì)胞具有高度的增殖力和侵襲性。絨癌通常繼發(fā)于葡萄胎、流產(chǎn)或分娩后的育齡期婦女,偶發(fā)于兒童或男性。目前的治療手段主要采取5-氟尿嘧啶等化療為主的方法,盡量保留患者的子宮和卵巢。二甲雙胍是常用的糖尿病降糖藥,也可以用于妊娠期糖尿?。唤谟醒芯堪l(fā)現(xiàn),二甲雙胍可以抑制宮頸癌、食管癌、肝癌、乳腺癌等多種腫瘤細(xì)胞的生長和發(fā)展,是潛在治療腫瘤的新型藥物[1-5]。目前,二甲雙胍對(duì)絨癌細(xì)胞的抑制能力和機(jī)制尚不清楚,因此本研究擬以人絨癌細(xì)胞系JEG-3為模型,初步探討二甲雙胍處理對(duì)JEG-3細(xì)胞凋亡的影響和可能的作用機(jī)制,為其臨床應(yīng)用奠定理論基礎(chǔ)。
1.1 材料來源 人絨毛膜癌細(xì)胞株JEG-3購于上海細(xì)胞所;胎牛血清(杭州四季清公司);DMEM培養(yǎng)基(美國Gibco公司);二甲雙胍(美國Sigma公司);流式細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(北京凱基公司),細(xì)胞增殖和活性檢測試劑盒(CCK-8)和末端脫氧核苷?;D(zhuǎn)移酶介導(dǎo)性dUTP切口末端標(biāo)記試劑盒(TUNEL)(碧云天公司),半胱天冬酶-3(Caspase-3)、β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)、Bcl-2和凋亡調(diào)節(jié)蛋白(Bax)抗體(美國Abcam公司)。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng) JEG-3細(xì)胞株使用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),培養(yǎng)基中分別加入100 U/mL的青鏈霉素。置于37 ℃、5%的CO2濃度濕度飽和的CO2培養(yǎng)箱中,當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到80%~90%時(shí)進(jìn)行傳代。
1.3 細(xì)胞分組及藥物濃度篩選 取對(duì)數(shù)生長期的JEG-3細(xì)胞消化重懸后接種于96孔板中,接種密度為3 000細(xì)胞/孔。培養(yǎng)過夜后,分別用終濃度為5、10、20、40 mmol/L的二甲雙胍處理(二甲雙胍組),每組設(shè)6個(gè)復(fù)孔并以未處理組為對(duì)照組。處理48 h后吸去孔中培養(yǎng)基,加入預(yù)混有CCK-8溶液的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)2 h,酶標(biāo)儀490 nm波長下測定各孔的吸光度值(OD490),并減去空白孔的讀數(shù)以消除本底,計(jì)算藥物對(duì)細(xì)胞增殖的抑制率。抑制率=(對(duì)照組OD490-二甲雙胍組OD490)/對(duì)照組OD490×100%。選取接近50%抑制率的藥物濃度進(jìn)行下面的干預(yù)實(shí)驗(yàn)。
1.4 TUNEL 取對(duì)數(shù)生長期的JEG-3細(xì)胞,以每孔2×104接種于預(yù)先放置有1 cm×1 cm玻璃片的24孔板中,按照二甲雙胍組干預(yù)培養(yǎng)48 h。4%的多聚甲醛固定15 min,PBS洗滌后使用0.1%的Triton X-100冰上孵育2 min,加入50 μL的TUNEL檢測液37 ℃避光孵育60 min,DAPI染色30 min,PBS洗滌后抗淬滅封片劑封片后使用激光共聚焦顯微鏡照相,每組隨機(jī)取8個(gè)視野統(tǒng)計(jì)平均陽性細(xì)胞數(shù)。
1.5 流式細(xì)胞檢測凋亡 收集處理完成的二甲雙胍組和對(duì)照組細(xì)胞,按照膜聯(lián)蛋白(Annexin V/PI)凋亡檢測試劑盒說明書進(jìn)行染色。離心去上清液后加入500 μL的固定液重懸細(xì)胞,隨后加入Annexin V和PI染液各5 μL,混勻后避光反應(yīng)10 min后上機(jī)進(jìn)行流式檢測。
1.6 實(shí)時(shí)定量熒光聚合酶鏈反應(yīng)(PCR) 取處理完成的二甲雙胍組和對(duì)照組細(xì)胞,胰酶消化后去上清液加入500 μL裂解液,采用離心柱法提取細(xì)胞總RNA。隨后根據(jù)反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明合成cDNA,采用Syber-green法檢測Caspase-3、Bcl-2和Bax的mRNA表達(dá)水平,并用β-actin為內(nèi)參。實(shí)時(shí)熒光定量PCR的引物見表1。
表1 實(shí)時(shí)熒光PCR各基因的引物序列
1.7 免疫印跡試驗(yàn) 二甲雙胍處理細(xì)胞48 h后,胰酶消化離心棄上清液,加入適量的細(xì)胞裂解液裂解細(xì)胞,冰上振蕩7 min再用超聲破碎儀低檔處理5 min,4 ℃,15 000 r/min離心10 min獲取上清液中的總蛋白。BCA試劑盒對(duì)總蛋白定量,蛋白上樣量為40 μg,SDS電泳后轉(zhuǎn)膜,一抗4 ℃過夜二抗室溫1 h后化學(xué)發(fā)光法顯色,并使用Quantity One軟件分析各條帶的灰度值。
2.1 二甲雙胍抑制JEG-3細(xì)胞的最佳藥物濃度 CCK-8結(jié)果顯示,5、10、20、40 mmol/L濃度的二甲雙胍處理均對(duì)ABC細(xì)胞的增殖有抑制作用。并且在5、10、20、40 mmol/L濃度時(shí)表現(xiàn)為劑量依耐性,抑制率隨著藥物濃度的增加而依次遞增,見圖1。20 mmol/L二甲雙胍對(duì)JEG-3的抑制率為46.10%,而40 mmol/L的抑制率為58.98%超過50%,表明20 mmol/L的二甲雙胍是JEG-3細(xì)胞的最佳藥物濃度。
圖1 不同濃度二甲雙胍對(duì)JEG-3細(xì)胞的抑制率
2.2 二甲雙胍促進(jìn)JEG-3細(xì)胞凋亡 二甲雙胍作用48 h后,流式細(xì)胞檢測細(xì)胞早期凋亡的比率為25.86%,而對(duì)照組僅為4.32%,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。TUNEL實(shí)驗(yàn)顯示,二甲雙胍組中平均每視野陽性細(xì)胞數(shù)(19.00±4.86)高于對(duì)照組(3.83±2.82),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)果表明,二甲雙胍可以同時(shí)促進(jìn)JEG-3細(xì)胞的早/晚期凋亡發(fā)生。
2.3 二甲雙胍對(duì)細(xì)胞凋亡相關(guān)基因的影響 二甲雙胍作用48 h后,使用熒光定量PCR檢測細(xì)胞凋亡相關(guān)基因的mRNA變化水平發(fā)現(xiàn),二甲雙胍處理后促凋亡基因Caspase-3和Bax表達(dá)增加,同時(shí)下調(diào)抗凋亡基因Bcl-2,和對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖2。
注:A為正常JEG-3細(xì)胞;B為二甲雙胍處理后的JEG-3細(xì)胞;C為兩組細(xì)胞凋亡數(shù)統(tǒng)計(jì)結(jié)果。
圖2 TUNEL法檢測二甲雙胍對(duì)JEG-3細(xì)胞凋亡的影響
圖3 二甲雙胍對(duì)凋亡相關(guān)基因mRNA表達(dá)水平的影響
注:A為Western bolt圖;B為Caspase-3,Bcl-2和Bax蛋白相對(duì)表達(dá)量分析;C為Bcl-2和Bax蛋白相對(duì)表達(dá)量比。
圖4 二甲雙胍對(duì)凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)水平的影響
2.4 二甲雙胍對(duì)細(xì)胞凋亡相關(guān)蛋白的影響 二甲雙胍處理JEG-3細(xì)胞后通過檢測細(xì)胞凋亡相關(guān)基因的蛋白表達(dá)水平發(fā)現(xiàn)其和mRNA變化程度類似,二甲雙胍可以降低抗凋亡因子Bcl-2的蛋白表達(dá)同時(shí)上調(diào)Bax和Caspase-3,并且導(dǎo)致Bcl-2/Bax比值上調(diào),和對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖3、4。
二甲雙胍療效確切,不良反應(yīng)小,是臨床上常用的降糖藥。有流行病學(xué)研究發(fā)現(xiàn)長期使用二甲雙胍控制血糖的腫瘤患者的生存率要高于未服用患者,提示其對(duì)腫瘤可能有一定的治療作用。有研究者對(duì)10 309例2型糖尿病患者隨訪調(diào)查發(fā)現(xiàn),合并腫瘤的患者中使用二甲雙胍的病死率要明顯低于使用胰島素和磺脲類藥物的患者[6]。近年來,越來越多的實(shí)驗(yàn)證實(shí)其對(duì)腫瘤細(xì)胞的周期、代謝、增殖都有抑制作用,可能是潛在的腫瘤治療藥物[7]。
細(xì)胞凋亡受到促凋亡蛋白和抗凋亡蛋白兩大類蛋白的共同調(diào)節(jié),是一個(gè)動(dòng)態(tài)平衡的過程。Bcl-2家族在線粒體介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡中起關(guān)鍵作用,該家族包括Bcl-2、Bcl-xl和Bcl-w等抗凋亡蛋白以及Bax、Bak和Bid等促凋亡蛋白[8-10]。Bcl-2/Bax是衡量細(xì)胞凋亡程度的重要指標(biāo),通常在惡性腫瘤細(xì)胞中Bcl-2高表達(dá)而Bax低表達(dá),兩者的比值較高[11-13]。本研究發(fā)現(xiàn)二甲雙胍處理絨癌細(xì)胞JEG-3后,具有抗凋亡功能的Bcl-2受到抑制而能夠促進(jìn)細(xì)胞凋亡的Bax則表達(dá)增加,Bcl-2/Bax比值下降和未處理組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。有報(bào)道指出二甲雙胍可以通過AMPK和mTOR等信號(hào)通路,動(dòng)態(tài)調(diào)節(jié)Bcl-2和Bax的表達(dá)水平從而參與調(diào)控腫瘤細(xì)胞的凋亡[14],這將在本實(shí)驗(yàn)的后續(xù)研究中展開。
經(jīng)過二甲雙胍處理的JEG-3細(xì)胞早晚期凋亡率上升,并且凋亡相關(guān)蛋白Caspase-3升高。當(dāng)細(xì)胞啟動(dòng)凋亡進(jìn)程后,激活Caspase-3參與多種凋亡發(fā)生途徑促使細(xì)胞凋亡發(fā)生。Caspase-3可以抑制Bcl-2的功能,而Bcl-2/Bax比率下調(diào),結(jié)合細(xì)胞水平上早/晚期凋亡率的增加,提示二甲雙胍是通過抑制抗凋亡基因Bcl-2、上調(diào)促凋亡基因Bax及Caspase-3,從而激活線粒體凋亡途徑,促使JEG-3細(xì)胞發(fā)生凋亡[15-18]。
本研究采用人絨毛膜癌細(xì)胞系JEG-3為對(duì)象,探討了二甲雙胍對(duì)JEG-3細(xì)胞凋亡的影響及作用機(jī)制。通過藥物抑制率實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)二甲雙胍的最佳作用濃度,并且使用流式細(xì)胞術(shù)和TUNEL實(shí)驗(yàn)從兩方面證實(shí),二甲雙胍處理48 h可以顯著提高絨癌細(xì)胞的早/晚期凋亡率,其可能是上調(diào)Caspase-3和Bax同時(shí)抑制Bcl-2以促進(jìn)腫瘤細(xì)胞凋亡的發(fā)生。
但是,本實(shí)驗(yàn)所采用的二甲雙胍濃度顯著高于其作為降糖藥時(shí)的血藥濃度,其作為腫瘤治療藥物的應(yīng)用還需要大量嚴(yán)謹(jǐn)?shù)呐R床前研究來加以證明。
[1]Schmedt N,Azoulay L,Hense S.Reduced risk of lung cancer with metformin therapy in diabetic patients:a systematic review and meta- analysis[J].Am J Epidemiol,2014,180(12):1216-1217.
[2]Agrawal S,Patel P,Agrawal A,et al.Metformin use and the risk of esophageal cancer in Barrett esophagus[J].South Med J,2014,107(12):774-779.
[3]Davide S,Lorenza S,Antonella Z,et al.Cancer risk associated with use of metformin and sulfonylurea in type 2 diabetes:a meta- analysis[J].Oncologist,2012,17(6):813-822.
[4]Miyoshi H,Kato K,Iwama H,et al.Effect of the anti-diabetic drug metformin in hepatocellular carcinoma in vitro and in vivo[J].Int J Oncol,2014,45(1):322-332.
[5]Du Y,Zheng H,Wang J,et al.Metformin inhibits histone H2B monoubiquitination and downstream gene transcription in human breast cancer cells[J].Oncol Lett,2014,8(2):809-812.
[6]Bowker SL,Majumdar SR,Veugelers P,et al.Increased cancer-related mortality for patients with type 2 diabetes who use sulfonylureas or insulin[J].Diabetes Care,2006,29(2):254-258.
[7]盧清軍,熊宇,嚴(yán)威,等.二甲雙胍對(duì)肝癌細(xì)胞增殖及凋亡相關(guān)基因表達(dá)的影響[J].中華實(shí)驗(yàn)外科雜志,2011,28(7):1107-1110.
[8]Hennessy EJ.Selective inhibitors of Bcl-2 and Bcl-xL:balancing antitumor activity with on-target toxicity[J].Bioorg Med Chem Lett,2016,26(9):2105-2114.
[9]Delbridge AR,Grabow S,Strasser A,et al.Thirty years of BCL-2:translating cell death discoveries into novel cancer therapies[J].Nat Rev Cancer,2016,16(2):99-109.
[10]Hassan M,Watari H,AbuAlmaaty A,et al.Apoptosis and molecular targeting therapy in cancer[J].Biomed Res Int,2014,2014(2):150845.
[11]Yue W,Zheng X,Lin Y,et al.Metformin combined with aspirin significantly inhibit pancreatic cancer cell growth in vitro and in vivo by suppressing anti-apoptotic proteins Mcl-1 and Bcl-2[J].Oncotarget,2015,6(25):21208-21224.
[12]Zhang T,Saghatelian A.Emerging roles of lipids in BCL-2 family-regulated apoptosis[J].Biochim Biophys Acta,2013,1831(10):1542-1554.
[13]Besbes S,Mirshahi M,Pocard M,et al.New dimension in therapeutic targeting of BCL-2 family proteins[J].Oncotarget,2015,6(15):12862-12871.
[14]Han G,Gong H,Wang Y,et al.AMPK/mTOR-mediated inhibition of survivin partly contributes to metformin-induced apoptosis in human gastric cancer cell[J].Cancer Biol Ther,2015,16(1):77-87.
[15]Galluzzi L,Kepp O,Kroemer G.Caspase-3 and prostaglandins signal for tumor regrowth in cancer therapy[J].Oncogene,2012,31(23):2805-2808.
[16]Queiroz EA,Puukila S,Eichler R,et al.Metformin induces apoptosis and cell cycle arrest mediated by oxidative stress,AMPK and FOXO3a in MCF-7 breast cancer cells[J].PLoS One,2014,9(5):e98207.
[17]馬華姝,喬宗旭,趙貴芬,等.二甲雙胍對(duì)子宮內(nèi)膜異位癥在位內(nèi)膜細(xì)胞增殖與凋亡的影響[J/CD].中華婦幼臨床醫(yī)學(xué)雜志(電子版),2014,10(5):652-657.
[18]黃文君,陳健,田晶.二甲雙胍抑制Foxp3的表達(dá)誘導(dǎo)乳腺癌細(xì)胞凋亡[J].重慶醫(yī)學(xué),2014,43(28):3749-3752.
Effect of metformin on human choriocarcinoma cell apoptosis
LIUGuangfen
(ChongqingMunicipalFireCorpsHospital,Chonqing401120,China)
Objective To investigate the effects of metformin on apoptosis of human choriocarcinoma cell and its possible action mechanism.Methods The human choriocarcinoma cell line JEG-3 was selected and divided into the control group and metformin groups(final concentrations of 5,10,20,40 mmol/L).Flow cytometry and immunofluorescence assay were adopted to detect cell apoptosis at 48 h after treatment.The mRNA and protein change trend of Caspase-3,Bcl-2 and Bax were measured by Real-time PCR and Western Bolt.Results Compared with the control group,the early and late apoptosis rate of JEG-3 cells in the metefomin groups were remarkably increased,meanwhile mRNA and protein expression levels of Caspase-3 and Bax were significantly increased,but Bcl-2 mRNA and protein expression were significantly decreased.Conclusion Metformin induces the JEG-3 cells to generate apoptosis by the Caspase-3 and Bcl-2/Bax pathways.
human choriocarcinoma; metformin; cell apoptosis
柳光芬,女,主任技師,主要從事臨床檢驗(yàn)研究。
10.3969/j.issn.1673-4130.2016.23.015
A
1673-4130(2016)23-3280-03
2016-02-28
2016-05-18)
國際檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志2016年23期