徐 丹, 金 鳳 燮, 魚 紅 閃
(大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院, 遼寧 大連 116034 )
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異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶的分離純化及其酶性質(zhì)
徐 丹,金 鳳 燮,魚 紅 閃
(大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院, 遼寧 大連116034 )
采用分子篩及離子交換法對(duì)微生物Absidiasp.R42g所產(chǎn)異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶進(jìn)行分離純化,并研究其酶學(xué)性質(zhì)。結(jié)果表明,異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶的分子質(zhì)量為62 ku,最適溫度為40 ℃,最適pH為5.0。在50 ℃以下,pH 4.0~6.0,相對(duì)酶活力較穩(wěn)定,Na+、K+、Ca2+3種金屬離子對(duì)相對(duì)酶活力無影響;而在Fe3+、Cu2+兩種金屬離子存在的情況下,相對(duì)酶活力為零;酶反應(yīng)結(jié)果顯示該酶的最大反應(yīng)速度和米氏常數(shù)分別為6.711 mmol/(L·h) 和18.89 mmol/L。
異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶;分離純化;酶性質(zhì)
異槲皮苷(Isoquercitrin)為黃酮類化合物,具有抗炎、抗氧化、降壓等生物活性[1]。異槲皮苷的3-C位水解掉葡萄糖基,成為槲皮素(quercetin),該類化合物及其衍生物同屬于類黃酮化合物,在果蔬及中草藥中大量存在。槲皮素具有廣泛的生物活性,不僅對(duì)癌癥有化學(xué)預(yù)防作用,還具有抗癌和抗突變等多種生理功能。近期研究還發(fā)現(xiàn)它是強(qiáng)有力的腫瘤多藥耐藥的逆轉(zhuǎn)劑。人體對(duì)槲皮素的不良反應(yīng)表現(xiàn)不明顯,所以具有良好的開發(fā)前景和藥用價(jià)值[2]。本實(shí)驗(yàn)研究了利用酶水解法由異槲皮苷制備槲皮素所需的酶,并對(duì)其酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了探討。
1.1材料
液體培養(yǎng)基:12%的槐花浸出液中加入48%的麥芽汁,糖度為5°;菌種:Absidiasp.R42g,實(shí)驗(yàn)室保藏。
1.2方法
1.2.1酶蛋白的分離純化
1.2.1.1粗酶液的分離
將菌種接種于經(jīng)過高溫滅菌的液體培養(yǎng)基中,在最佳發(fā)酵條件下發(fā)酵3~5 d。
將發(fā)酵液離心,取上清,加入硫酸銨至飽和度75%,4 ℃靜止過夜。離心去除上清,收集沉淀。用pH 5.0醋酸-醋酸鈉緩沖液溶解,并在該緩沖體系中透析2 d,離心收集上清即為所需粗酶液。
1.2.1.2層析分離
葡聚糖凝膠層析法對(duì)酶進(jìn)行初步分離,用緩沖液作洗脫劑,洗脫液體積流量0.5 mL/min,每10 min收集一管。采用TLC法進(jìn)行酶活檢測(cè),確定酶活較高的收集管,合并酶液進(jìn)行離子交換層析。離子交換層析法對(duì)酶進(jìn)行再次分離,將8 mL 收集的酶液上柱后,先用緩沖液洗脫,再分別以0.02 mol/L pH 5.0醋酸-醋酸鈉緩沖液配制的60、120、150、180、210、240、300 mmol/L KCl溶液為流動(dòng)相進(jìn)行梯度洗脫,流動(dòng)相體積流量為1 mL/min,分離提純蛋白質(zhì)。洗脫液在280 nm下測(cè)定OD,并通過蛋白質(zhì)色譜儀繪出吸收?qǐng)D譜。
1.2.2酶活力的測(cè)定
薄層層析法測(cè)定酶活力,展開劑為體積比10∶7∶1∶1的乙酸乙酯-丁酮-甲醇-水混合液,標(biāo)準(zhǔn)品為用0.02 mol/L pH 5.0醋酸-醋酸鈉緩沖液配制的2.0 mg/mL異槲皮苷溶液。取0.1 mL標(biāo)準(zhǔn)品底物溶液,加入等體積的酶液,在40 ℃下恒溫反應(yīng)14 h,加入反應(yīng)液等體積的水飽和正丁醇終止酶反應(yīng),取上層液作TLC檢測(cè),計(jì)算酶活力。
1.2.3酶的純度及分子質(zhì)量測(cè)定
采用SDS-PAGE測(cè)定酶蛋白的分子質(zhì)量,根據(jù)異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶的相對(duì)遷移率計(jì)算分子質(zhì)量。
1.2.4蛋白含量測(cè)定
用Folin-酚法測(cè)定溶液中蛋白質(zhì)含量。
1.2.5酶學(xué)性質(zhì)的測(cè)定
采用“1.2.2”中酶活力的測(cè)定方法測(cè)定提純酶的最適pH、最適溫度、pH穩(wěn)定性、溫度穩(wěn)定性、金屬離子對(duì)酶活力的影響[5-7]。
2.1酶的分離純化
各純化步驟的結(jié)果如表1所示。由表1可知,粗酶液經(jīng)過分離純化后比活達(dá)到2.8 U/mg,提純倍數(shù)達(dá)到12.17,收率為1.15%。分離純化所得異槲皮苷葡萄糖苷酶經(jīng)SDS-PAGE鑒定,提純酶電泳結(jié)果為單帶,結(jié)果如圖1所示。
根據(jù)圖1中的標(biāo)準(zhǔn)蛋白的相對(duì)遷移率與分子量的對(duì)數(shù)關(guān)系繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到回歸方程:y=2.073-1.023x,R2=0.993。將異槲皮苷葡萄糖苷酶的相對(duì)遷移率帶入方程,得出其分子質(zhì)量約為62 ku。
表1 異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶分離純化的結(jié)果
圖1異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳圖
Fig.1Isoquercitrin-β-glycosidase in SDS-PAGE
2.2酶學(xué)性質(zhì)
2.2.1溫度對(duì)相對(duì)酶活力的影響
將提純后的酶在20~70 ℃下進(jìn)行反應(yīng),檢測(cè)最適反應(yīng)溫度,將酶在各溫度條件下靜置1 h,在最適溫度下的進(jìn)行酶反應(yīng)檢測(cè)其溫度穩(wěn)定性。根據(jù)TLC結(jié)果得出該溫度下的相對(duì)酶活力,結(jié)果見圖2。
圖2 溫度對(duì)相對(duì)酶活力的影響
由圖2可知,最適酶反應(yīng)溫度為40 ℃。溫度在45 ℃以上時(shí),隨著溫度的升高,相對(duì)酶活力呈下降趨勢(shì),在50 ℃以下時(shí),相對(duì)酶活力變化較為緩慢,都大于60%。而當(dāng)溫度高于60 ℃時(shí),相對(duì)酶活力急劇下降。
2.2.2pH對(duì)相對(duì)酶活力的影響
將提純后的酶在pH 2.0~10.0的緩沖體系內(nèi)進(jìn)行反應(yīng),將酶在各緩沖體系中靜置1 h后,在最適pH條件下檢測(cè)其穩(wěn)定性。并計(jì)算不同pH條件下的相對(duì)酶活力,結(jié)果見圖3。
圖3 pH對(duì)相對(duì)酶活力的影響
由圖3可看出,該酶在pH 為5.0 時(shí)相對(duì)酶活力最大;pH在4.0~6.0,相對(duì)酶活力變化很小,其相對(duì)酶活力可以保持大于80%,超出該范圍酶活性急劇下降,因此確定該酶在pH 4.0~6.0 較穩(wěn)定。
2.2.3金屬離子對(duì)相對(duì)酶活力的影響
由表2可知,Na+、K+、Mg2+、Ca2+的存在不影響酶活力大小,反應(yīng)液中的Zn2+對(duì)異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶的相對(duì)酶活力的抑制作用隨著其濃度的增加而增大,而在Cu2+、Fe3+存在的情況下異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶沒有相對(duì)酶活力,因此Cu2+和 Fe3+可以完全抑制該酶的相對(duì)酶活力。
表2 金屬離子對(duì)相對(duì)酶活力的影響
2.2.4酶反應(yīng)動(dòng)力學(xué)
配制底物質(zhì)量濃度為1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mg/mL 的異槲皮苷溶液。在pH 5.0、40 ℃條件下進(jìn)行酶促反應(yīng),反應(yīng)時(shí)間3 h,結(jié)果見表3。
采用Lineweaver-Burk作圖,由圖得到米氏方程為1/[V]=2.814/[S]+0.149,R2=0.998 9,從而計(jì)算得到最大反應(yīng)速度和米氏常數(shù)分別為6.711 mmol/(L·h) 及18.89 mmol/L。
表3底物濃度對(duì)酶反應(yīng)速度的影響
Tab.3Theeffectsofsubstrateconcentrationonenzymereactionspeed
動(dòng)力學(xué)參數(shù)c/(mmol·L-1)2.1534.3076.4608.61410.767[S]-1/(L·mmol-1)0.4640.2320.1550.1160.093[V]-1/(L·h·mmol-1)1.4660.7730.5730.4840.429
從Absidiasp. R42g中提取的異槲皮苷葡萄糖苷酶,分子質(zhì)量大約為62 ku,最適反應(yīng)溫度為40 ℃,pH 5.0,具有較好的 pH耐受性和熱穩(wěn)定性,金屬離子 Na+、K+、Mg2+、Ca2+存在時(shí)對(duì)相對(duì)酶活力無影響,Zn2+對(duì)該酶的相對(duì)酶活力的抑制作用隨濃度的增大而增強(qiáng),Cu2+、Fe3+存在時(shí)可以完全抑制該酶的酶活力。由動(dòng)力學(xué)方程可得Vmax=6.711 mmol/(L·h),Km=18.89 mmol/L。
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Purification and characterization of isoquercitrin-β-glucosidase
XUDan,JINFengxie,YUHongshan
(School of Biological Engineering, Dalian Polytechnic University, Dalian 116034, China )
Isoquercitrin-β-glucosidasewaspurifiedfromAbsidiasp.R42gusingmolecularsieveandtheionexchangeseparationandpurification,anditsenzymaticpropertieswerestudied.Resultsshowedthatitsmolecularmasswasabout62ku,theoptimumtemperaturewas40 ℃,theoptimumpHwas5.0.Enzymewasstablebelow50 ℃atpH4.0-6.0.TheionsofNa+,K+,Ca2+showednoinfluenceonisoquercitrin-β-glucosidaseactivitybutionsFe3+andCu2+inhibitedisoquercitrin-β-glucosidase.Theenzymekineticsofisoquercitrin-β-glucosidasewereVmax=6.711mmol/(L·h)andKm=18.89mmol/L.
isoquercitrin-β-glucosidase; purification; enzymatic characterization
徐丹,金鳳燮,魚紅閃.異槲皮苷-β-葡萄糖苷酶的分離純化及其酶性質(zhì)[J]. 大連工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2016,35(4):243-245.
XU Dan, JIN Fengxie, YU Hongshan. Purification and characterization of isoquercitrin-β-glucosidase[J]. Journal of Dalian Polytechnic University, 2016, 35(4): 243-245.
2015-03-01.
“重大新藥創(chuàng)制”科技重大專項(xiàng)(2012ZX09503001-003).
徐 丹(1989-),女,碩士研究生;通信作者:魚紅閃(1968-),男,教授.
TS201.3
A
1674-1404(2016)04-0243-03