張建英,賈龍,張大治,喜巧紅(.寧夏大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,寧夏銀川7500;.寧夏大學(xué)農(nóng)學(xué)院,寧夏銀川7500)
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從尖尾東鱉甲中提取甲殼素的研究
張建英1,賈龍2,張大治1,喜巧紅1
(1.寧夏大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,寧夏銀川750021;2.寧夏大學(xué)農(nóng)學(xué)院,寧夏銀川750021)
摘要:通過(guò)單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)探討從尖尾東鱉甲(Anatolica mucronata Reitter,1889)中提取甲殼素的最佳條件,并對(duì)甲殼素樣品進(jìn)行定性和定量分析。試驗(yàn)結(jié)果表明:利用酸浸堿煮法提取甲殼素的最佳試驗(yàn)條件為:氫氧化鈉濃度7%、溫度87℃、時(shí)間5h、固液比1∶13(g/mL),檸檬酸濃度1.6g/L、室溫、時(shí)間28h、固液比1∶9(g/mL);對(duì)在最佳試驗(yàn)條件下提取得到的甲殼素樣品進(jìn)行紅外光譜檢測(cè),并計(jì)算其得率為21.45%。用紫外吸收法和干法灰化法分別測(cè)定提取物中殘余蛋白質(zhì)和無(wú)機(jī)鹽含量。
關(guān)鍵詞:甲殼素;尖尾東鱉甲;最佳試驗(yàn)條件;提??;昆蟲(chóng)資源
尖尾東鱉甲(Anatolica mucronata Reitter,1889)隸屬于鞘翅目擬步甲科,是蒙古高原的特有種,是我國(guó)北方的優(yōu)勢(shì)土壤昆蟲(chóng),國(guó)內(nèi)已知分布于內(nèi)蒙古中西部、陜西北部、甘肅中北部和寧夏中北部,分布地區(qū)偏向蒙新區(qū)中部[1-2]。尖尾東鱉甲棲息于荒漠半荒漠草原,體色光亮,食性較雜,取食葉片、草根等。成蟲(chóng)通常喜氣溫大于15℃,地面溫度大于18℃外出活動(dòng),且單獨(dú)活動(dòng)于沙面等較開(kāi)闊地帶,爬行速度快,活動(dòng)范圍大,活動(dòng)高峰期集中于10:00-17:00,正午高溫時(shí),表現(xiàn)出短時(shí)背光現(xiàn)象[1-3]。蟲(chóng)體富含營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)并具一定藥用價(jià)值,特別是其防御腺分泌物有較強(qiáng)的化學(xué)毒性,具有重要醫(yī)學(xué)價(jià)值。
甲殼素又名甲殼質(zhì)、幾丁質(zhì)、蟹殼素等,廣泛存在于低等動(dòng)物,特別是節(jié)肢動(dòng)物體內(nèi)[4-6],如:昆蟲(chóng)、甲殼動(dòng)物等體內(nèi),它是一種天然的高分子多糖。由于甲殼素的化學(xué)結(jié)構(gòu)和植物纖維素非常相似,且是自然界中唯一帶正電荷的天然高分子聚合物,因此具備特殊的理化性質(zhì)且天然無(wú)毒,被廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、農(nóng)業(yè)、食品、化工、廢水處理和生物工程等諸多領(lǐng)域中[5,7-8]?,F(xiàn)今已引起了許多國(guó)家的重視,已成為最熱門(mén)的研究領(lǐng)域之一[9]。目前,歐美學(xué)術(shù)界已稱(chēng)其為六大生命元素之一(蛋白質(zhì)、脂質(zhì)、糖類(lèi)、維生素、礦質(zhì)元素、甲殼素)[10-11],現(xiàn)階段工業(yè)上用來(lái)制備甲殼素的主要原料是水產(chǎn)加工場(chǎng)廢棄的蝦殼和蟹殼,但存在生產(chǎn)成本高,重金屬難以脫除等限制問(wèn)題。通過(guò)前人從蠅、蠶等一些蟲(chóng)種中提取甲殼素的研究發(fā)現(xiàn),昆蟲(chóng)中甲殼素含量比較高,而且鈣和重金屬含量低,雜質(zhì)少,純度高,質(zhì)量好,提取過(guò)程中對(duì)水、酸、堿消耗少,生產(chǎn)成本低??梢?jiàn),昆蟲(chóng)甲殼素要優(yōu)于蝦、蟹甲殼素。因此,開(kāi)發(fā)新的甲殼素資源具有重要的意義,而資源量大、種類(lèi)多的昆蟲(chóng)正是潛在的甲殼素來(lái)源[5,8]。目前國(guó)內(nèi)已有蠶蛹、蜣螂、蟋蟀等昆蟲(chóng)中甲殼素的提取報(bào)道[6,12],但未有從尖尾東鱉甲中提取甲殼素的有關(guān)報(bào)道[1-2,13]。
1.1材料、儀器與試劑
1.1.1材料
尖尾東鱉甲成蟲(chóng):采自寧夏靈武。
1.1.2儀器
電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(DHG-9140A型):上海一恒科技有限公司;電熱恒溫水浴鍋(二列六孔):北京長(zhǎng)源實(shí)驗(yàn)設(shè)備廠;紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)(T6):北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;電子分析天平(AL204):梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;馬弗爐(sx4-10):深圳市中達(dá)電爐廠;紅外光譜儀(TENSOR27):德國(guó)布魯克;低速臺(tái)式離心機(jī)(KA-1000):上海安亭科學(xué)儀器廠;pH計(jì)(320A):梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司。
1.1.3化學(xué)試劑
氫氧化鈉(分析純):天津市北聯(lián)精細(xì)化學(xué)品開(kāi)發(fā)有限公司;檸檬酸(分析純):天津市凱通化學(xué)試劑有限公司;標(biāo)準(zhǔn)甲殼素樣品(C9752-250MG):Sigma Aldrich;過(guò)氧化氫(30%):北京化工廠;溴化鉀(分析純):天津市風(fēng)船化學(xué)試劑科技有限公司。
1.2方法
1.2.1工藝流程
新鮮甲蟲(chóng)→預(yù)處理(除雜,烘干,粉碎)→脫除無(wú)機(jī)鹽→水洗至中性→脫除蛋白質(zhì)→水洗至中性→干燥→脫色[14]→甲殼素樣品
1.2.2指標(biāo)測(cè)定
測(cè)定脫除無(wú)機(jī)鹽后樣品的灰分,以確定脫除無(wú)機(jī)鹽最佳試驗(yàn)條件;通過(guò)測(cè)定脫除蛋白質(zhì)后樣品的剩余蛋白質(zhì)含量,以確定脫除蛋白質(zhì)的最佳試驗(yàn)條件??偦曳?%=(恒重后坩堝和灰分重量-恒重后坩堝重量)/樣品重量×100[15];蛋白質(zhì)含量/(μg/mL)=(1.45A280-0.74A260)×稀釋倍數(shù)[16],式中:A280、A260分別為蛋白質(zhì)溶液在280、260 nm處測(cè)得的吸光度。
1.3單因素試驗(yàn)
1.3.1檸檬酸酸浸濃度的確定
稱(chēng)取5份尖尾東鱉甲干粉1.000 g,分別置于三角瓶中,在固液比1∶11(g/mL)、反應(yīng)時(shí)間30 h、室溫條件下,分別加入濃度為0.6、1.0、1.4、1.8、2.2 g/L檸檬酸溶液,離心并將固體產(chǎn)物水洗至中性,干燥后得脫無(wú)機(jī)鹽尖尾東鱉甲粉,測(cè)定產(chǎn)物灰分含量確定檸檬酸的最適濃度,重復(fù)3次。
1.3.2檸檬酸酸浸時(shí)間的確定
稱(chēng)取5份尖尾東鱉甲粉1.000 g,分別置于三角瓶中,在固液比1∶11(g/mL)、檸檬酸濃度1.4 g/L、室溫條件下,恒溫20、25、30、35、40 h,離心并將固體產(chǎn)物水洗至中性,干燥后得脫無(wú)機(jī)鹽尖尾東鱉甲粉,測(cè)定產(chǎn)物灰分含量確定檸檬酸的酸浸的最適時(shí)間,重復(fù)3次。
1.3.3檸檬酸酸浸固液比的確定
稱(chēng)取5份尖尾東鱉甲粉1.000 g,分別置于三角瓶中,在檸檬酸濃度1.4 g/L、反應(yīng)時(shí)間30 h、室溫條件下,分別以固液比1∶7、1∶9、1∶11、1∶13、1∶15(g/mL)加入檸檬酸溶液,離心并將固體產(chǎn)物水洗至中性,干燥后得脫無(wú)機(jī)鹽尖尾東鱉甲粉,測(cè)定產(chǎn)物灰分含量確定檸檬酸的最適固液比,重復(fù)3次。
1.3.4氫氧化鈉堿浸濃度的確定
稱(chēng)取5份尖尾東鱉甲粉1.000g,分別置于三角瓶中,在固液比1∶12(g/mL)、90℃水浴、恒溫5 h條件下,分別加入4%、6%、8%、10%、12%氫氧化鈉溶液,離心并將固體產(chǎn)物水洗至中性,得脫蛋白尖尾東鱉甲粉,測(cè)定產(chǎn)物蛋白質(zhì)含量確定氫氧化鈉的最適濃度,重復(fù)3次。
1.3.5氫氧化鈉堿浸時(shí)間的確定
稱(chēng)取5份尖尾東鱉甲粉1.000 g,分別置于三角瓶中,在固液比1∶12(g/mL)、90℃水浴、濃度8%條件下,分別恒溫1、3、5、7、9 h,離心并將固體產(chǎn)物水洗至中性,得脫蛋白尖尾東鱉甲粉,測(cè)定產(chǎn)物蛋白質(zhì)含量確定氫氧化鈉堿浸的最適時(shí)間,重復(fù)3次。
1.3.6氫氧化鈉堿浸溫度的確定
稱(chēng)取5份尖尾東鱉甲粉1.000 g,分別置于三角中,在固液比1∶12(g/mL)、恒溫5 h、濃度8%條件下,分別置于80、85、90、95、100℃水浴鍋中,離心并將固體產(chǎn)物水洗至中性,得脫蛋白尖尾東鱉甲粉,測(cè)定產(chǎn)物蛋白質(zhì)含量確定氫氧化鈉堿浸的最適溫度,重復(fù)3次。
1.3.7氫氧化鈉堿浸固液比的確定
稱(chēng)取5份尖尾東鱉甲粉1.000 g,分別置于三角瓶中,在90℃水浴、恒溫5 h、濃度8%條件下,分別以固液比1∶8、1∶10、1∶12、1∶14、1∶16(g/mL)加入氫氧化鈉溶液,離心并將固體產(chǎn)物水洗至中性,得脫蛋白尖尾東鱉甲粉,測(cè)定產(chǎn)物蛋白質(zhì)含量確定氫氧化鈉的最適固液比,重復(fù)3次。
1.4正交試驗(yàn)
1.4.1檸檬酸脫除無(wú)機(jī)鹽的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)
在單因素試驗(yàn)得到的最適檸檬酸濃度、酸浸時(shí)間、固液比的基礎(chǔ)上,在室溫條件下,選擇檸檬酸濃度、酸浸時(shí)間、固液比3個(gè)因素為考察對(duì)象,設(shè)計(jì)三因素三水平正交試驗(yàn)對(duì)工藝條件進(jìn)行優(yōu)化。正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)見(jiàn)表1。
表1 脫除無(wú)機(jī)鹽的正交試驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and levels of demineralization orthogonal experiment
1.4.2氫氧化鈉脫除蛋白質(zhì)的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)
在單因素試驗(yàn)得到的最適氫氧化鈉濃度、堿浸時(shí)間、堿浸溫度、固液比的基礎(chǔ)上,選擇氫氧化鈉濃度、堿浸時(shí)間、堿浸溫度、固液比4個(gè)因素為考察對(duì)象,設(shè)計(jì)四因素三水平正交試驗(yàn)對(duì)工藝條件進(jìn)行優(yōu)化。正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)見(jiàn)表2。
表2 脫除蛋白質(zhì)的正交試驗(yàn)因素水平表Table 2 Factors and levels of deproteinization orthogonal experiment
1.5甲殼素樣品定性和定量分析
甲殼素定性檢測(cè)采用紅外光譜對(duì)比法:分別將標(biāo)準(zhǔn)甲殼素和所制備的甲殼素烘干,2 mg待測(cè)樣品與100 mg KBr混合,通過(guò)壓片法制成薄片,用紅外光譜儀掃描范圍400 cm-1~4 000 cm-1[17],通過(guò)對(duì)比兩者的紅外光譜圖,確定本研究制備的樣品是否為甲殼素。
甲殼素得率計(jì)算方法:甲殼素含量/%=(所提甲殼素重量干重W1/所用該種昆蟲(chóng)干重W2)×100[6,18]。
2.1單因素試驗(yàn)
2.1.1檸檬酸酸浸濃度試驗(yàn)結(jié)果的分析
檸檬酸酸浸濃度試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖1。
圖1 檸檬酸濃度對(duì)脫除無(wú)機(jī)鹽的影響Fig.1 Effect of citric acid concentration on demineralization
由圖1可知,隨著檸檬酸濃度的增加,灰分含量逐漸下降,脫除無(wú)機(jī)鹽的效果較明顯;當(dāng)檸檬酸濃度達(dá)到1.8 g/L以后其灰分含量總體雖也在下降,但下降趨勢(shì)不明顯,當(dāng)濃度由1.8 g/L變?yōu)?.2 g/L時(shí),灰分含量減少量不大,且隨著檸檬酸濃度的增加甲殼素容易水解。同時(shí)也考慮在實(shí)際操作中,檸檬酸濃度過(guò)高會(huì)使反應(yīng)速率過(guò)快而不容易控制,因此,選擇檸檬酸濃度為1.8 g/L較為合適。
2.1.2檸檬酸酸浸時(shí)間試驗(yàn)結(jié)果的分析
檸檬酸酸浸時(shí)間試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 反應(yīng)時(shí)間對(duì)除去無(wú)機(jī)鹽的影響Fig.2 Effect of reaction time on demineralization
在反應(yīng)的初始階段,隨著酸浸時(shí)間的延長(zhǎng),灰分含量下降較為明顯,脫除無(wú)機(jī)鹽效果較明顯;當(dāng)反應(yīng)時(shí)間達(dá)到30 h以后其灰分含量總體雖也在下降,但下降趨勢(shì)明顯減緩。由于甲殼中碳酸鈣是與甲殼素和蛋白質(zhì)結(jié)合在一起的,在檸檬酸與碳酸鈣的反應(yīng)中,部分碳酸鈣被甲殼素緊密的膠狀分子團(tuán)結(jié)構(gòu)所包圍,檸檬酸很難完全滲透到里面,導(dǎo)致其不能徹底與其反應(yīng)完全。當(dāng)達(dá)到30 h以后,檸檬酸和碳酸鈣的反應(yīng)基本達(dá)到了平衡,再延長(zhǎng)時(shí)間對(duì)脫除無(wú)機(jī)鹽效果的影響不大。因此,選擇酸浸時(shí)間為30 h即可。
2.1.3檸檬酸酸浸固液比試驗(yàn)結(jié)果分析
檸檬酸酸浸固液比試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖3。
當(dāng)固液比由1∶7(g/mL)變至1∶9(g/mL)時(shí),灰分含量下降趨勢(shì)較為明顯,而當(dāng)固液比由1∶9(g/mL)變至1∶11(g/mL)時(shí)灰分含量有所減少,但很緩慢。故以固液比1∶9(g/mL)浸泡脫除無(wú)機(jī)鹽為宜。
2.1.4氫氧化鈉堿浸濃度試驗(yàn)結(jié)果分析
氫氧化鈉堿浸濃度試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖4。
圖3 固液比對(duì)除去無(wú)機(jī)鹽的影響Fig.3 Effect of solid-liquid ratio on demineralization
圖4 氫氧化鈉濃度對(duì)除去蛋白質(zhì)的影響Fig.4 Effect of NaOH concentration on deproteinization
結(jié)果表明,氫氧化鈉的質(zhì)量分?jǐn)?shù)濃度越高,脫除蛋白質(zhì)的效果越好,當(dāng)氫氧化鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)>6%時(shí),對(duì)脫除蛋白質(zhì)的影響效果不是很大,而且隨著氫氧化鈉濃度的增加容易使甲殼素脫乙?;蓺ぞ厶牵C合考慮各種因素以質(zhì)量分?jǐn)?shù)為6%的氫氧化鈉溶液浸泡為宜。
2.1.5氫氧化鈉堿浸時(shí)間試驗(yàn)結(jié)果分析
氫氧化鈉堿浸時(shí)間試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖5。
圖5 堿浸時(shí)間對(duì)除去蛋白質(zhì)的影響Fig.5 Effect of NaOH reaction time on deproteinization
從圖5可以看出,在反應(yīng)的初始階段,隨著堿煮時(shí)間的延長(zhǎng),殘余蛋白質(zhì)的含量急劇下降,脫除蛋白效果明顯;在5 h以后其蛋白質(zhì)含量總體雖在下降,但下降的趨勢(shì)減緩。一般來(lái)說(shuō),脫蛋白時(shí)間越長(zhǎng),蛋白質(zhì)水解的越徹底,但水解速度逐漸減慢;當(dāng)延長(zhǎng)到某一時(shí)刻以后,蛋白質(zhì)的水解反應(yīng)進(jìn)行得非常緩慢,其對(duì)脫除蛋白效果的影響便不再明顯。同時(shí)也考慮到長(zhǎng)時(shí)間高溫反應(yīng)會(huì)帶來(lái)生產(chǎn)成本上的增加,因此,選擇堿煮時(shí)間為5 h較為合適。
2.1.6氫氧化鈉堿浸溫度試驗(yàn)結(jié)果的分析
氫氧化鈉堿浸溫度試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖6。
圖6 堿浸溫度對(duì)除去蛋白質(zhì)反應(yīng)的影Fig.6 Effect of NaOH reaction temperature on deproteinization
結(jié)果表明,隨著堿煮溫度的升高,殘余蛋白質(zhì)含量急劇下降,脫蛋白效果明顯;當(dāng)達(dá)到85℃以后,殘余蛋白質(zhì)含量下降的趨勢(shì)減緩。溫度對(duì)氫氧化鈉水解蛋白質(zhì)有很大的影響,在其它條件固定的情況下,反應(yīng)溫度越高,蛋白質(zhì)堿水解的速度越快;但溫度達(dá)到一定值時(shí),蛋白質(zhì)堿水解速度逐漸變慢,蛋白質(zhì)的堿水解反應(yīng)慢慢趨于平衡,繼續(xù)升溫對(duì)脫蛋白效果影響不大。同時(shí)也考慮到高溫反應(yīng)會(huì)增加生產(chǎn)成本,因此,堿煮溫度取85℃比較合適。
2.1.7氫氧化鈉堿浸固液比試驗(yàn)結(jié)果的分析
氫氧化鈉堿浸固液比試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖7。
圖7 堿浸固液比對(duì)除蛋白質(zhì)反應(yīng)的影響Fig.7 Effect of NaOH solid-liquid ratio on deproteinization
結(jié)果表明,固液比越大,脫除蛋白質(zhì)的效果也越好,固液比大于1∶12(g/mL)時(shí),對(duì)除蛋白的影響效果不是很大,因此以1∶12(g/mL)的固液比浸泡為宜。
2.2正交試驗(yàn)
2.2.1脫除無(wú)機(jī)鹽的正交試驗(yàn)結(jié)果
脫除無(wú)機(jī)鹽的正交試驗(yàn)結(jié)果分析見(jiàn)表3。
結(jié)果表明,以檸檬酸處理過(guò)的樣品中的灰分含量為指標(biāo),篩選出脫除無(wú)機(jī)鹽的最佳條件,灰分含量越低,說(shuō)明無(wú)機(jī)鹽脫除的越徹底,從表3可得最佳條件為A1B1C2,即檸檬酸濃度1.6 g/L、固液比1∶9(g/mL)、在室溫條件下反應(yīng)28 h即可;由正交試驗(yàn)灰分含量的極差結(jié)果可以看出,C>B>A,即在室溫條件下,固液比>檸檬酸濃度>反應(yīng)時(shí)間,固液比的極差最大,檸檬酸濃度次之,這兩個(gè)因素是影響脫除無(wú)機(jī)鹽的關(guān)鍵性因素,而反應(yīng)時(shí)間的極差最小,說(shuō)明它對(duì)脫除無(wú)機(jī)鹽的影響較小。
表3 脫除無(wú)機(jī)鹽的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 3 Orthogonal test results of demineralization
按最佳條件進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),測(cè)得殘余灰分為1.54%,說(shuō)明該條件脫除無(wú)機(jī)鹽最徹底。
2.2.2脫除蛋白質(zhì)的正交試驗(yàn)結(jié)果
脫除蛋白質(zhì)的正交試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表4。
表4 脫除蛋白質(zhì)的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 4 Orthogonal test results of deproteinization
續(xù)表4 脫除蛋白質(zhì)的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Continue table 4 Orthogonal test results of deproteinization
結(jié)果表明,以氫氧化鈉處理過(guò)的樣品中蛋白質(zhì)含量為指標(biāo),篩選出脫除蛋白質(zhì)的最佳試驗(yàn)條件,剩余蛋白質(zhì)含量越低,說(shuō)明蛋白質(zhì)脫除的越徹底,從表4正交試驗(yàn)結(jié)果可得最佳條件為A3B2C3D3,即氫氧化鈉濃度7%、固液比1∶13(g/mL)、在87℃下反應(yīng)5 h即可;由正交試驗(yàn)剩余蛋白質(zhì)含量的極差結(jié)果可以得出,D>B>C>A,即氫氧化鈉溶液濃度對(duì)蛋白質(zhì)脫除影響最大,反應(yīng)時(shí)間次之,固液比再次之,溫度對(duì)蛋白質(zhì)脫除影響最小。
按照最佳條件進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),測(cè)得殘余蛋白質(zhì)含量為0.015 μg/mL,說(shuō)明該條件脫除蛋白質(zhì)最徹底。
2.3定性和定量分析
2.3.1定性分析
甲殼素的紅外吸收光譜分析:對(duì)在最佳條件下制備的甲殼素產(chǎn)品進(jìn)行質(zhì)量分析與結(jié)構(gòu)表征。甲殼素產(chǎn)品紅外光譜如圖8所示。
圖8 兩種甲殼素樣品的紅外光譜Fig.8 IR spectrum of two samples
紅外光譜圖中3 400cm-1是O-H伸縮振動(dòng)吸收峰;3 270 cm-1是N-H伸縮振動(dòng)吸收峰;2 960 cm-1~2 879 cm-13個(gè)吸收峰是C-H伸縮振動(dòng)吸收峰;分別在1 657、1 557、1 315 cm-1的吸收峰,分別是酰胺Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ譜帶,這3個(gè)吸收峰是甲殼素的特征吸收峰;1 030 cm-1~1 157 cm-1之間的4個(gè)吸收峰,是C-O伸縮振動(dòng)吸收峰;897 cm-1是環(huán)伸縮振動(dòng)吸收峰[11]。由圖8可見(jiàn),通過(guò)比對(duì)在最佳條件下制備的甲殼素樣品與標(biāo)準(zhǔn)甲殼素樣品紅外光譜圖可知,本工藝制備的尖尾東鱉甲甲殼素樣品與標(biāo)準(zhǔn)甲殼素樣品化學(xué)結(jié)構(gòu)一致。
2.3.2定量分析
在最佳試驗(yàn)條件下,得到的甲殼素樣品的得率為21.45%。
1)本試驗(yàn)以尖尾東鱉甲為試驗(yàn)材料,先通過(guò)單因素試驗(yàn)得到各因素的最佳試驗(yàn)條件,然后根據(jù)單因素試驗(yàn)得到的結(jié)果再進(jìn)行正交試驗(yàn),從而對(duì)單因素試驗(yàn)得到的各因素的最佳試驗(yàn)條件進(jìn)一步優(yōu)化,最終得到提取甲殼素的最佳條件。
2)通過(guò)紫外吸收法測(cè)定提取物中的殘余蛋白質(zhì)含量,根據(jù)國(guó)標(biāo)測(cè)定提取物中殘余灰分含量。初步確定了甲殼素提取的最佳工藝條件:檸檬酸濃度1.6 g/L,浸泡固液比1∶9(g/mL),浸泡時(shí)間28 h;脫除蛋白質(zhì)的條件:氫氧化鈉溶液濃度7%,浸泡溫度87℃,固液比1∶13(g/mL),浸泡時(shí)間5h。在此工藝條件下制備的甲殼素產(chǎn)品為白色蓬松狀固體,甲殼素得率21.45%。
3)本研究首次以尖尾東鱉甲成蟲(chóng)為試驗(yàn)材料制備甲殼素,結(jié)果顯示,該蟲(chóng)甲殼素得率達(dá)20%以上,高于蝦蟹殼的得率,產(chǎn)品顏色呈白色片狀固體;對(duì)其產(chǎn)品進(jìn)行紅外光譜分析并比對(duì)標(biāo)準(zhǔn)圖譜,證實(shí)了本試驗(yàn)所提取的甲殼素樣品與標(biāo)準(zhǔn)甲殼素樣品化學(xué)結(jié)構(gòu)一致,確為甲殼素。昆蟲(chóng)作為甲殼素含量豐富的資源,其自身優(yōu)勢(shì)十分明顯。目前由單位昆蟲(chóng)獲得的甲殼素產(chǎn)量、質(zhì)量和提取流程上,具有比蝦蟹殼單位產(chǎn)量高、提取流程簡(jiǎn)單、產(chǎn)品質(zhì)量高、蛋白含量相對(duì)較少等明顯優(yōu)勢(shì),具有廣泛利用的前景,能夠用于解決多種人類(lèi)“文明病”。目前對(duì)昆蟲(chóng)類(lèi)甲殼素涉及其免疫調(diào)節(jié)和抑制真菌的功效僅有少量報(bào)道。對(duì)于昆蟲(chóng)類(lèi)甲殼素制備方面的研究開(kāi)展相對(duì)比較滯后,研究也局限在個(gè)別昆蟲(chóng)種類(lèi)。對(duì)甲殼素制備方面和利用的研究的欠缺明顯制約了昆蟲(chóng)類(lèi)甲殼素的廣泛應(yīng)用。昆蟲(chóng)豐富的物種資源以及其巨大的天然合成能力沒(méi)有得到相應(yīng)的利用,相信隨著對(duì)大量不同種類(lèi)昆蟲(chóng)的深入研究,必定能夠利用好這一豐富的天然資源。
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Study on the Extracting Chitin from Anatolica mucronata Reitter
ZHANG Jian-ying1,JIA Long2,ZHANG Da-zhi1,XI Qiao-hong1
(1. College of Life Science,Ningxia University,Yinchuan 750021,Ningxia,China;2. College of Agriculture,Ningxia University,Yinchuan 750021,Ningxia,China)
Abstract:This article discussed the optimum conditions of extracting chitin from Anatolica mucronata Reitter by single-factor and orthogonal test. The chitin sample was carried on the qualitative and quantitative analysis. Test results showed that the optimum conditions by using acid-alkali method to extract chitin were as follows:the NaOH concentration 7%,the temperature 87℃,the time 5 h,the solid- liquid ratio 1∶13(g/mL),the citric acid concentration 1.6 g/L,the time 28 h,the solid- liquid ratio 1∶9(g/mL),at room temperature. Using infrared spectrum to analysis chitin sample extracted under optimum conditions and the extraction rate of chitin was 21.45%. Then residual protein and inorganic salt content in the extract were measured by UV absorption and dry ashing method.
Key words:chitin;Anatolica mucronata Reitter;oputimum conditions;extraction;insect resource
DOI:10.3969/j.issn.1005-6521.2016.09.015
基金項(xiàng)目:2015年度寧夏自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(NZ15052)
作者簡(jiǎn)介:張建英(1978—),女(漢),副教授,碩士,從事動(dòng)物資源開(kāi)發(fā)與利用研究。
收稿日期:2015-03-23