吳敏,方慶,師忠芳,徐立新,董麗萍,閆旭,楊少華,2,袁芳
?
亞甲基藍對大鼠局灶性腦缺血再灌注后血腦屏障的保護作用①
吳敏1,方慶1,師忠芳1,徐立新1,董麗萍1,閆旭1,楊少華1,2,袁芳1
[摘要]目的探討亞甲基藍對大鼠局灶性腦缺血再灌注引起血腦屏障破壞的保護作用。方法雄性Sprague-Dawley大鼠18只隨機分為假手術(shù)組(n=6)、模型組(n=6)和亞甲基藍組(n=6)。用線栓法制備大鼠左側(cè)大腦中動脈栓塞1 h再灌注模型。亞甲基藍組于再灌注即刻及再灌注2 h分別靜脈給予亞甲基藍3 mg/kg、1.5 mg/kg;模型組給予相同體積的生理鹽水;假手術(shù)組手術(shù)操作與模型組相同,不插入線栓,不靜脈注射藥物。再灌注47 h后HE染色觀察大鼠腦缺血周邊皮層組織學(xué)結(jié)構(gòu),白蛋白免疫組化染色法檢測血腦屏障通透性的變化,免疫組化染色法和免疫熒光雙標(biāo)染色法檢測膠質(zhì)原纖維酸性蛋白(GFAP)和水通道蛋白-4(AQP-4)的表達。結(jié)果HE染色顯示,模型組缺血周邊大腦皮層的細胞和血管形態(tài)不完整,而亞甲基藍組病理變化減輕;模型組白蛋白、GFAP和AQP-4表達均明顯高于假手術(shù)組(P<0.01),亞甲基藍組白蛋白、GFAP、AQP-4表達均低于模型組(P<0.05)。免疫熒光雙標(biāo)染色顯示,AQP-4與GFAP在星形膠質(zhì)細胞上共定位。結(jié)論亞甲基藍可能是通過減輕膠質(zhì)細胞增生及下調(diào)AQP-4表達來改善局灶性腦缺血再灌注損傷引起的血腦屏障破壞。
[關(guān)鍵詞]腦缺血再灌注;亞甲基藍;血腦屏障;膠質(zhì)原纖維酸性蛋白;水通道蛋白-4;大鼠
[本文著錄格式]吳敏,方慶,師忠芳,等.亞甲基藍對大鼠局灶性腦缺血再灌注后血腦屏障的保護作用[J].中國康復(fù)理論與實踐, 2016, 22(2): 125-131.
CITED AS: Wu M, Fang Q, Shi ZF, et al. Effect of methylene blue on blood-brain barrier after focal cerebral ischemia-reperfusion in rats [J]. Zhongguo Kangfu Lilun Yu Shijian, 2016, 22(2): 125-131.
作者單位:1.首都醫(yī)科大學(xué)北京市神經(jīng)外科研究所病理生理室,首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京天壇醫(yī)院,北京市100050;2.北德克薩斯大學(xué)醫(yī)學(xué)中心神經(jīng)與藥理系,美國德克薩斯州沃思堡76107。作者簡介:吳敏(1986-),女,漢族,河北曲陽縣人,碩士研究生,主要研究方向:腦水腫的發(fā)病機制研究。通訊作者:袁芳,女,博士,研究員。E-mail: florayuan@vip.sina.com。
缺血性腦卒中是人類致殘、致死的主要疾病,腦缺血再灌注引起的血腦屏障(blood-brain barrier)破壞加重腦損傷[1],因此改善血腦屏障功能是缺血性腦卒中治療的關(guān)注重點。亞甲基藍是1876年合成的藍色紡織染料,臨床上主要用于高鐵血紅蛋白血癥的治療[2]。近年來一些研究表明亞甲基藍對缺血性腦卒中有保護作用,包括改善神經(jīng)功能,減少腦梗死體積和腦水腫[3-7]。然而,到目前為止,僅有一項研究指出亞甲基藍對腦缺血再灌注損傷引起的血腦屏障破壞有保護作用,但其應(yīng)用的是豬心臟驟停12 min再灌注模型,且觀察的再灌注最長時間僅為自主循環(huán)恢復(fù)后6 h[8]。
本實驗利用大鼠局灶性腦缺血1 h再灌注47 h模型,分別從血腦屏障通透性及星形膠質(zhì)細胞(astrocytes, AST)變化兩個方面來評價亞甲基藍對局部腦缺血再灌注引起血腦屏障損傷的保護作用,并初步探討其保護機制。
1.1實驗動物及分組
18只健康成年雄性SPF級Sprague-Dawley大鼠,體質(zhì)量280~320 g,由北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供,許可證號SCXK(京)2012-0001。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,用隨機數(shù)字表法將大鼠分為假手術(shù)組、模型組和亞甲基藍組,每組6只,大鼠術(shù)前禁食12 h。
1.2主要實驗試劑及儀器
亞甲基藍(M9140):美國SIGMA-ALDRICH公司。伊紅(ZLI-9613)、蘇木素(ZLI-9610)、羅丹明標(biāo)記山羊抗兔熒光二抗(ZF-0316)、Alexa Fluor 488標(biāo)記山羊抗小鼠熒光二抗(ZF-0512)、抗熒光淬滅封片劑(ZLI-9556):北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。膠質(zhì)原纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein, GFAP)抗體(Z0334)、EnVision檢測試劑盒(A-K5007):丹麥DAKO公司。水通道蛋白-4(aquaporin-4, AQP-4)抗體(ab128906, ab9512)、白蛋白抗體(ab106582)及山羊抗雞二抗(ab97135):美國ABCAM公司。正置熒光顯微鏡(Axio Imager A2):德國ZEISS公司。
1.3模型制備
大鼠以10%水合氯醛3.5 ml/kg腹腔注射麻醉,參照徐立新等[9]報道的線栓法制備左側(cè)大腦中動脈阻塞再灌注模型,以大鼠手術(shù)麻醉清醒后出現(xiàn)右側(cè)肢體癱瘓、站立不穩(wěn)、提尾時向一側(cè)轉(zhuǎn)圈為模型成功的判斷標(biāo)準(zhǔn)。
亞甲基藍組大鼠腦缺血1 h再灌注即刻尾靜脈注射亞甲基藍3 mg/kg(30 min),大鼠腦缺血再灌注2 h后再次尾靜脈注射亞甲基藍1.5 mg/kg(15 min)。
模型組用生理鹽水代替亞甲基藍等體積注射。
假手術(shù)組手術(shù)操作與模型組相同,不插入線栓,不靜脈注射藥物。
1.4組織學(xué)檢測
大鼠腦缺血1 h再灌注47 h,經(jīng)心臟灌流4%多聚甲醛,取出大腦。腦組織常規(guī)石蠟包埋、切片(片厚5 μm),行HE染色。
1.5血腦屏障通透性檢查
用白蛋白免疫組化染色法檢查血腦屏障通透性的變化[10]。石蠟切片脫蠟至水,0.01 mol/L檸檬酸鹽緩沖液(pH=6.0)微波熱修復(fù),自然冷卻至室溫后磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline, PBS)充分漂洗。3% H2O2溶液中室溫避光孵育10 min,山羊血清室溫封閉1 h,滴加白蛋白一抗(1∶400),4℃過夜。山羊抗雞二抗(1∶400)室溫孵育1 h,DAB顯色,蘇木素復(fù)染,脫水、透明、封片。正置熒光顯微鏡下觀察并拍照。陰性對照用PBS代替一抗,其余步驟相同。
1.6 GFAP及AQP-4免疫組化染色
免疫組化染色為二步法,應(yīng)用DAKO公司的Envision系統(tǒng)進行。GFAP及AQP-4抗體1∶2000稀釋,4℃孵育過夜,然后按Envision系統(tǒng)的A-K5007試劑盒進行顯色。陰性對照用PBS代替一抗,其余步驟相同。陽性細胞的染色為淺至棕褐色。
1.7 GFAP及AQP-4免疫熒光雙標(biāo)
0.01 mol/L檸檬酸鹽緩沖液(pH=6.0)微波熱修復(fù),山羊血清封閉,分別滴加一抗(GFAP抗體1∶400稀釋、AQP-4抗體1∶100稀釋),4℃孵育過夜。滴加熒光二抗(羅丹明標(biāo)記的山羊抗兔1∶200,Alexa Fluor 488標(biāo)記的山羊抗小鼠1∶200),室溫孵育1 h,4', 6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole, DAPI)室溫孵育5 min,PBS洗滌,抗熒光淬滅封片劑封片。正置熒光顯微鏡觀察、拍照。陰性對照用PBS代替一抗,其余步驟相同。
1.8圖像分析
應(yīng)用Image-Pro Plus 6.0圖像分析軟件對免疫組化結(jié)果進行圖像分析。1個標(biāo)本取1張切片,每張切片在鏡下(400×)隨機選取缺血周邊大腦皮層相鄰的5個非重疊視野,計算5個視野中免疫反應(yīng)陽性細胞積分光密度值(integrated option density, IOD)的平均值。
1.9統(tǒng)計學(xué)分析
采用SPSS 17.0軟件進行單因素方差分析。實驗數(shù)據(jù)以(±s)表示,組間比較用最小顯著性差異法(least-significant difference, LSD)。顯著性水平α=0.05。
2.1光鏡檢查
假手術(shù)組可見大腦皮層神經(jīng)元、膠質(zhì)細胞形態(tài)正常,結(jié)構(gòu)完整;神經(jīng)元胞漿豐富、均勻,胞核呈圓形或橢圓形,核仁清晰;血管形態(tài)光滑,彎曲自然,無間質(zhì)水腫。模型組缺血周邊大腦皮層神經(jīng)元、膠質(zhì)細胞的細胞間隙增寬,神經(jīng)纖維網(wǎng)呈空泡樣變;神經(jīng)元胞漿及胞膜形態(tài)不規(guī)則,邊界不清,胞核濃縮,部分細胞呈固縮狀;血管周圍間隙增寬。亞甲基藍組神經(jīng)元、膠質(zhì)細胞形態(tài)相對正常,結(jié)構(gòu)相對完整,病理變化輕;血管較光滑,血管周圍間隙增寬現(xiàn)象有明顯改善。見圖1。
圖1 腦缺血周邊皮層組織HE染色(400×)
2.2免疫組化染色
2.2.1白蛋白
假手術(shù)組腦組織無白蛋白漏出,胞漿內(nèi)可見輕微白蛋白陽性染色,呈淺褐色。模型組可見缺血周邊大腦皮層的神經(jīng)纖維網(wǎng)及胞漿內(nèi)均有白蛋白陽性染色,染色增強,神經(jīng)纖維網(wǎng)腫脹,呈海綿狀。經(jīng)亞甲基藍治療后,神經(jīng)纖維網(wǎng)及胞漿內(nèi)白蛋白陽性染色減少,神經(jīng)纖維網(wǎng)腫脹程度減輕,海綿狀不明顯。見圖2。
模型組白蛋白IOD明顯高于假手術(shù)組,亞甲基藍組白蛋白IOD明顯低于模型組(P<0.01)。見表1。
2.2.2 GFAP
GFAP為AST的特異性標(biāo)志物[11]。假手術(shù)組GFAP陽性細胞數(shù)較少,形態(tài)正常,著色為淺褐色;細胞突起細長,顯示出蜘蛛狀分支輪廓,細胞足突包繞血管。模型組缺血周邊大腦皮層的GFAP陽性細胞體積增大,著色深染;細胞突起增粗增厚,分支增多,細胞足突縮短,血管周圍間隙增寬。而亞甲基藍組缺血周邊大腦皮層的GFAP陽性細胞體積增大減輕;細胞突起分支減少,足突縮短情況有所改善,血管周圍間隙較模型組減小。見圖3。
模型組GFAP的IOD明顯高于假手術(shù)組(P< 0.01),亞甲基藍組GFAP的IOD低于模型組(P< 0.05),但仍高于假手術(shù)組(P<0.05)。見表1。
2.2.3 AQP-4
假手術(shù)組在血管周圍的AST足突可見淺棕褐色染色,呈微弱陽性表達,在胞膜及胞漿上也有少量表達。模型組可見在缺血周邊大腦皮層的血管周圍AST足突上AQP-4免疫組化染色增強,呈深棕褐色,在胞膜及胞漿內(nèi)的表達增多。亞甲基藍組AQP-4在血管周圍AST足突、胞膜及胞漿內(nèi)均有表達,著色較模型組淺。見圖4。
模型組AQP-4的IOD明顯高于假手術(shù)組(P< 0.01),亞甲基藍組AQP-4的IOD明顯低于模型組(P< 0.01)。見表1。
2.2.4免疫熒光雙標(biāo)染色
其中GFAP陽性染色呈紅色,AQP-4陽性染色呈綠色,DAPI陽性為呈藍色的細胞核,染色結(jié)果顯示GFAP與AQP-4在AST突起上共表達,假手術(shù)組AQP-4主要表達在血管周圍的AST足突,模型組及亞甲基藍組AQP-4除在血管周圍的AST足突表達外,在AST胞體及突起也表達較多。見圖5。
圖2 腦缺血周邊皮層組織白蛋白免疫組化染色(400×)
圖3 腦缺血周邊皮層組織GFAP免疫組化染色(400×)
圖4 腦缺血周邊皮層組織AQP-4免疫組化染色(400×)
圖5 腦缺血周邊皮層組織GFAP與AQP-4免疫熒光雙標(biāo)染色(400×)
表1 腦缺血周邊皮層組織白蛋白、GFAP和AQP-4表達(IOD)
在腦缺血再灌注損傷過程中,血腦屏障作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)“守門人”及調(diào)節(jié)器,其結(jié)構(gòu)及功能均會遭到破壞,是導(dǎo)致腦損傷的關(guān)鍵環(huán)節(jié)[12],因此改善血腦屏障的結(jié)構(gòu)及功能是腦缺血治療的重點。本實驗利用大鼠局灶性腦缺血1 h再灌注47 h模型,首先通過HE染色證明亞甲基藍對大鼠腦缺血再灌注損傷有保護作用,其次通過檢測缺血周邊大腦皮層血腦屏障通透性以及GFAP、AQP-4等蛋白的表達變化,發(fā)現(xiàn)亞甲基藍對腦缺血再灌注引起的血腦屏障損傷有保護作用。
血腦屏障功能障礙表現(xiàn)為血腦屏障通透性增加。血清白蛋白是血液中分子量為65 kDa的內(nèi)源性蛋白質(zhì),正常生理情況下由于血腦屏障的存在難以漏出到腦實質(zhì)內(nèi)。血腦屏障遭到破壞,會導(dǎo)致血清白蛋白從血管漏出到腦實質(zhì)內(nèi)[13-14],因此檢測白蛋白漏出成為經(jīng)典的評價血腦屏障通透性的指標(biāo)[10]。
近些年的研究發(fā)現(xiàn)AQP-4是腦內(nèi)最豐富的水通道蛋白,主要表達在AST足突上,對維持血腦屏障完整性起重要作用[15]。我們在大鼠自由落體腦損傷模型中也觀察到,腦外傷引起血腦屏障通透性增加時,AQP-4表達增強[16]。因此AQP-4也被認為是反映血腦屏障血管通透性的特異性標(biāo)志物[17]。
本實驗分別利用白蛋白及AQP-4免疫組化染色法評估血腦屏障通透性的改變,發(fā)現(xiàn)腦缺血再灌注損傷引起血腦屏障通透性增加,亞甲基藍治療可以顯著減少白蛋白漏出及AQP-4表達增強,提示亞甲基藍能夠改善腦缺血再灌注損傷引起的血腦屏障破壞,與Miclescu等在豬的心臟驟停再灌注模型中觀察到的亞甲基藍對血腦屏障的保護作用一致[8]。
血腦屏障由毛細血管內(nèi)皮細胞、細胞外基質(zhì)、AST足突和周細胞組成,阻止有毒物質(zhì)擴散進入腦組織,從而保護腦內(nèi)微環(huán)境穩(wěn)定?,F(xiàn)有的研究表明AST足突為血腦屏障提供結(jié)構(gòu)和功能支持[18],與血腦屏障的形成及通透性密切相關(guān)[19]。Miclescu等的研究表明亞甲基藍對血腦屏障的改善作用可能是通過減少腦組織內(nèi)的一氧化氮代謝產(chǎn)物實現(xiàn)的[8],本研究從AST角度探討亞甲基藍對血腦屏障的保護機制。
近年來的研究發(fā)現(xiàn)AST反應(yīng)性增生與血腦屏障通透性增加有關(guān)[20]。本實驗中我們用GFAP免疫組化染色法檢測AST,觀察到大鼠局灶性腦缺血再灌注引起GFAP表達增加,AST形態(tài)發(fā)生改變,表現(xiàn)為增生、肥大,說明腦缺血再灌注引起AST反應(yīng)性增生。金媛媛等[21]、李德潔等[22]在大鼠腦缺血再灌注損傷模型中對GFAP表達變化的描述與我們的研究結(jié)果一致。Argaw等的研究表明,反應(yīng)性增生的AST分泌血管內(nèi)皮生長因子A(vascular endothelial growth factor- A, VEGF-A)增多,VEGF-A能夠增加血腦屏障的通透性從而導(dǎo)致血腦屏障破壞[23]。本實驗中我們同時觀察到正常情況下AST突起細長,足突包繞毛細血管,而腦缺血再灌注引起的AST反應(yīng)性增生,導(dǎo)致AST突起增粗增厚,足突縮短,血管周圍間隙增寬。Mani等利用VEGF誘導(dǎo)AST反應(yīng)性增生也觀察到AST足突從血管處縮回的現(xiàn)象[24]。有研究表明毛細血管內(nèi)皮細胞之間的緊密連接由AST足突與血管接觸誘導(dǎo)產(chǎn)生[25-26],因此我們推測反應(yīng)性增生的AST足突從血管處縮回也可能是大鼠局灶性腦缺血再灌注引起血腦屏障通透性增加的原因之一。
值得注意的是,近些年的研究發(fā)現(xiàn)AQP-4表達增加與AST反應(yīng)性增生有直接關(guān)系[17],本實驗也觀察到相同的現(xiàn)象。我們應(yīng)用GFAP與AQP-4免疫熒光雙標(biāo)染色發(fā)現(xiàn)正常情況下AQP-4主要表達在血管周圍的AST足突,大鼠局灶性腦缺血再灌注引起AQP-4在AST足突及胞體表達增多,與GFAP表達增加一致。
因此,腦缺血再灌注引起AST增生(包括AST足突縮回)以及AQP-4表達增加可能導(dǎo)致血腦屏障功能破壞,亞甲基藍干預(yù)減輕了大鼠局灶性腦缺血再灌注引起的AST過度增生及AQP-4表達增加,可能與亞甲基藍對血腦屏障的保護作用有關(guān)。
我們已有的研究結(jié)果表明,亞甲基藍是一種線粒體電子載體的替代物[27],能夠改善局灶性腦缺血1 h再灌注47 h引起的腦水腫[4]。本實驗進一步發(fā)現(xiàn)亞甲基藍對腦缺血再灌注引起的血腦屏障障礙有改善作用,推測亞甲基藍對血腦屏障的保護作用可能是通過減輕AST反應(yīng)性增生及下調(diào)AQP-4表達實現(xiàn)的,但其分子機制還有待深入研究。本研究結(jié)果為缺血性腦卒中的治療提供了新的思路。
[參考文獻]
[1] Fang W, Sha L, Kodithuwakku ND, et al. Attenuated blood-brain barrier dysfunction by XQ-1H following ischemic stroke in hyperlipidemic rats [J]. Mol Neurobiol, 2015, 52(1): 162-175.
[2] Oz M, Lorke DE, Hasan M, et al. Cellular and molecular actions of methylene blue in the nervous system [J]. Med Res Rev, 2011, 31(1): 93-117.
[3] Ryou MG, Choudhury GR, Li W, et al. Methylene blue- induced neuronal protective mechanism against hypoxia-reoxygenation stress [J]. Neuroscience, 2015, 301: 193-203.
[4] Fang Q, Yan X, Li S, et al. Methylene blue ameliorates ischemia/reperfusion-induced cerebral edema: An MRI and transmission electron microscope study [J]. Acta Neurochir Suppl, 2016, 121: 227-236.
[5] Shen Q, Du F, Huang S, et al. Neuroprotective efficacy of methylene blue in ischemic stroke: an MRI study [J]. PLoS One, 2013, 8(11): e79833.
[6] Di Y, He YL, Zhao T, et al. Methylene blue reduces acute cerebral ischemic injury via the induction of mitophagy [J]. Mol Med, 2015, 21: 420-429.
[7] Jiang Z, Watts LT, Huang S, et al. The effects of methylene blue on autophagy and apoptosis in MRI-defined normal tissue, ischemic penumbra and ischemic core [J]. PLoS One, 2015, 10(6): e0131929.
[8] Miclescu A, Sharma HS, Martijn C, et al. Methylene blue protects the cortical blood-brain barrier against ischemia/reperfusion- induced disruptions [J]. Crit Care Med, 2010, 38(11): 2199-2206.
[9]徐立新,袁芳.改良的大鼠腦局部缺血模型[J].中國康復(fù)理論與實踐, 2005, 11(1): 23-24.
[10] Fritze K, Sommer C, Schmitz B, et al. Effect of global system for mobile communication (GSM) microwave exposure on blood-brain barrier permeability in rat [J]. Acta Neuropathol, 1997, 94(5): 465-470.
[11] Simard M, Nedergaard M. The neurobiology of glia in the context of water and ion homeostasis [J]. Neuroscience, 2004, 129 (4): 877-896.
[12] Sandoval KE, Witt KA. Blood-brain barrier tight junction permeability and ischemic stroke [J]. Neurobiol Dis, 2008, 32(2): 200-219.
[13] Stam R. Electromagnetic fields and the blood- brain barrier [J]. Brain Res Rev, 2010, 65(1): 80-97.
[14] Takata F, Tominaga K, Koga M, et al. Elevated permeability of the blood-brain barrier in mice intratracheally administered porcine pancreatic elastase [J]. J Pharmacol Sci, 2015, 129(1): 78-81.
[15] Chu H, Ding H, Tang Y, et al. Erythropoietin protects against hemorrhagic blood-brain barrier disruption through the effects of aquaporin-4 [J]. Lab Invest, 2014, 94(9): 1042-1053.
[16]張琳,袁芳.大鼠腦外傷誘導(dǎo)水通道蛋白4表達增強加重腦水腫[J].首都醫(yī)科大學(xué)學(xué)報, 2008, 29(6): 732-736.
[17] Ceccariglia S, D'altocolle A, Del Fa A, et al. Increased expression of aquaporin 4 in the rat hippocampus and cortex during trimethyltin- induced neurodegeneration [J]. Neuroscience, 2014, 274: 273-288.
[18] Obermeier B, Daneman R, Ransohoff RM. Development, maintenance and disruption of the blood-brain barrier [J]. Nat Med, 2013, 19(12): 1584-1596.
[19] Daneman R, Prat A. The blood-brain barrier [J]. Cold Spring Harb Perspect Biol, 2015, 7(1): a020412.
[20] Cheslow L, Alvarez JI. Glial-endothelial crosstalk regulates blood-brain barrier function [J]. Curr Opin Pharmacol, 2015, 26: 39-46.
[21]金媛媛,胡靜,馮璐,等.局灶性腦缺血再灌注大鼠神經(jīng)血管單元的空間構(gòu)筑[J].中國康復(fù)理論與實踐, 2015, 21(1): 31-34.
[22]李德潔,范建中,吳紅瑛,等.低聲壓級次聲對大鼠腦缺血再灌注后膠質(zhì)纖維酸性蛋白表達的影響[J].中國康復(fù)理論與實踐, 2013, 19(2): 124-128.
[23] Argaw AT, Gurfein BT, Zhang Y, et al. VEGF-mediated disruption of endothelial CLN- 5 promotes blood- brain barrier breakdown [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2009, 106(6): 1977-1982.
[24] Mani N, Khaibullina A, Krum JM, et al. Astrocyte growth effects of vascular endothelial growth factor (VEGF) application to perinatal neocortical explants: receptor mediation and signal transduction pathways [J]. Exp Neurol, 2005, 192(2): 394-406.
[25] Abbott NJ, Ronnback L, Hansson E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood- brain barrier [J]. Nat Rev Neurosci, 2006, 7(1): 41-53.
[26] Miner JJ, Diamond MS. Mechanisms of restriction of viral neuroinvasion at the blood-brain barrier [J]. Curr Opin Immunol, 2015, 38: 18-23.
[27] Wen Y, Li W, Poteet EC, et al. Alternative mitochondrial electron transfer as a novel strategy for neuroprotection [J]. J Biol Chem, 2011, 286(18): 16504-16515.
Effect of Methylene Blue on Blood-brain Barrier after Focal Cerebral Ischemia-reperfusion in Rats
WU Min1, FANG Qing1, SHI Zhong-fang1, XU Li-xin1, DONG Li-ping1, YAN Xu1, YANG Shao-hua1,2, YUAN Fang1
1. Department of Pathophysiology, Beijing Neurosurgical Institute, Beijing Tiantan Hospital, Capital Medical University, Beijing 100050, China; 2. Department of Pharmacology and Neuroscience, University of North Texas Health Science Center, Fort Worth, Texas 76107, USA
Correspondence to YUAN Fang. E-mail: florayuan@vip.sina.com
Abstract:Objective To investigate the protective effect of methylene blue (MB) on blood-brain barrier (BBB) injury after focal cerebral ischemia-reperfusion in rats. Methods 18 male Sprague-Dawley rats were randomly divided into sham-operated group (n=6), model group (n=6) and MB treatment group (n=6). The left middle cerebral arteries were occluded for 1 hour and reperfused. MB was infused intravenously immediately after reperfusion (3 mg/kg) and again 2 hours post-reperfusion (1.5 mg/kg), while normal saline was administered in the model group. The sham-operated group was treated as same as the model group without occlusion and infusion. HE staining was used to observe the histological injury in the cortex around the infarcted region 47 hours after reperfusion, while albumin immunohistochemistry was used to evaluate the permeability of the BBB, and immunohistochemistry and double immunofluorescence staining were used to examine the expressions of glial fibrillary acidic protein (GFAP) and aquaporin-4 (AQP-4). Results HE staining showed that cells and blood vessels were not intact in the cortex around the infarcted region in the model group and they were better in the MB treatment group. The expressions of the albumin, GFAP and AQP-4 were higher in the model group than in the sham-operated group (P<0.01), and were lower in MB treatment group than in the model group (P<0.05). The double immunofluorescence staining showed the colocalization of GFAP and AQP-4 in the astrocytes. Conclusion MB may ameliorate the BBB disruption induced by focal cerebral ischemia-reperfusion through reducing gliocyte proliferation and down-regulation of AQP-4 expression in rats.
Key words:cerebral ischemia-reperfusion; methylene blue; blood-brain barrier; glial fibrillary acidic protein; aquaporin-4; rats
(收稿日期:2015-12-01修回日期:2015-12-11)
基金項目:國家自然科學(xué)基金項目(No. 81271286; No. 81228009)。
DOI:10.3969/j.issn.1006-9771.2016.02.001
[中圖分類號]R743.3
[文獻標(biāo)識碼]A
[文章編號]1006-9771(2016)02-0125-07