傅春江 ,毛廷森,曾泉,陳琳,周軍年,賈雅麗,岳文
1.房山區(qū)中醫(yī)院,北京 102400;2.軍事醫(yī)學科學院 野戰(zhàn)輸血研究所,全軍干細胞與再生醫(yī)學重點研究室,北京 100850
小干擾RNA(miRNA)在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中扮演的角色近年來成為腫瘤研究領域的熱點,并取得一系列突破性進展。miRNA 被證明在機體的正常發(fā)育過程中,以及包括腫瘤在內的疾病發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用[1-2]。研究表明,miRNA 參與干細胞的干性維持以及向成熟細胞的定向分化過程,對上皮間質轉化過程具有調控作用,并通過不同的信號通路調控腫瘤細胞的增殖、凋亡、侵襲及轉移,與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及預后密切相關[3-5]。值得關注的是,多種miRNA 被發(fā)現(xiàn)在肝癌中異常表達,并對肝癌細胞的生物學行為產生影響,從而在肝癌的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用。對這些miRNA 的深入研究,將有望為發(fā)現(xiàn)新的肝腫瘤標志物及新的診療靶標提供理論基礎[6-7]。
原發(fā)性肝細胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是我國最常見的惡性腫瘤之一,居我國癌癥死亡原因第2 位,在全世界范圍內為發(fā)病率最高的第五大惡性腫瘤,其死亡率在惡性腫瘤死亡順位中居第3 位。肝細胞癌的發(fā)生發(fā)展是一個多步驟、多因素的復雜過程,涉及眾多生長因子、癌基因和抑癌基因的異常表達或激活,乙肝病毒和丙肝病毒所導致的癌變,酒精所致的肝損傷等[8-10]。除此之外,近年越來越多的研究表明,腫瘤微環(huán)境在肝癌的演進過程中有不容忽視的重要作用[11-12]。肝癌微環(huán)境由多種基質細胞組成,包括間充質干細胞、肝星狀細胞、內皮細胞、成纖維細胞、肌成纖維細胞、脂肪細胞、巨噬細胞、炎癥細胞等,它們能夠分泌大量的生長因子、細胞因子、基質金屬降解酶等,參與腫瘤細胞的增殖、侵襲、轉移及耐藥[13-14]。我們的前期工作發(fā)現(xiàn),腫瘤微環(huán)境中間質細胞呈激活狀態(tài)并高表達EPM、S-100A4 等因子,繼而引起腫瘤細胞系列基因表達的改變及生物學行為的改變[15]。我們系統(tǒng)地對間質細胞引起的MHCC-97H 等肝癌細胞中miRNA 表達的改變進行篩選與分析,發(fā)現(xiàn)腫瘤細胞的miR-155在間質細胞的刺激下明顯表達上調。本實驗中,我們通過在肝癌細胞系SK-HEP-1 及MHCC-97H 中過表達miR-155,研究其對肝腫瘤細胞增殖與浸潤等生物學行為的影響。
人肝癌細胞系SK-HEP-1 及MHCC-97H 由本室保存;pcDNA3.0-miR-155真核表達載體由軍事醫(yī)學科學院放射與輻射醫(yī)學研究所鄭曉飛教授饋贈;限制性內切酶、核酸分子量標記等購自寶生物公司;引物合成由上海英駿公司完成;反轉錄試劑盒及實時定量用SYBR Green 染料購自QIAGEN 公司;CCK8購自日本同仁株式會社;高糖培養(yǎng)基購自Gibco 公司;胎牛血清購自Hyclone 公司;TRIzol 及LipofectAMINE 2000試劑購自Invitrogen公司。
將SK-HEP-1 及MHCC-97H 細胞接種于6 孔板中,用含10%胎牛血清的高糖培養(yǎng)基,于37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。采用LipofectAMINE 2000 轉染細胞,每孔加入溶解于opti-MEM 的10 μL LipofectAMINE 2000 和4 μg pcDNA3.0-miR-155 質粒DNA,對照組加入與實驗組等量的LipofectAMINE 2000和pcDNA3.0質粒DNA。轉染第2 d換液,72 h后收獲轉染細胞用于miRNA的實時定量PCR檢測。
用QIAGEN 公司的miScriptⅡRT 試劑盒進行RNA 反轉錄得到cDNA 后,采用SYBR Green 法實時定量PCR 檢測,上游引物為5'-TTAATGCCTAATC GTGATAGGGGTC-3',下游引物為5'-GATTGAATC GAGCACCAGTTAC-3'。PCR 條件:95℃ 15 min;95℃15 s,55℃30 s,72℃30 s,40 個循環(huán)。以U6基因為內參,上游引物為5'-CGCTTCGGCAGCACA TATACTA-3',下游引物為5'-GATTGAATCGAGCA CCAGTTAC-3',PCR 條件同上。各組PCR 均進行3復孔重復。
將轉染24 h 的細胞以每孔2×103/100 μL 的密度接種于96 孔板,培養(yǎng)24、72 和120 h 后分別進行CCK8 檢測。加入10 μL CCK8,繼續(xù)在37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)4 h,檢測D450nm值,每組均進行6 復孔重復。增殖倍數(shù)計算公式:每一次測定的吸光度值/第一次測定的吸光度值。
轉染后將細胞以2×103/孔的密度接種于6孔板,37℃、5% CO2條件下培養(yǎng),每3 d 換液,2 周后棄去培養(yǎng)液,PBS 洗3 次,加入0.1%結晶紫溶液(含10%福爾馬林)固定20 min,棄去結晶紫溶液后用自來水柔和沖洗,自然干燥后照相保存。
-20℃保存的Matrigel于4℃過夜融化,用無血清培養(yǎng)基以1∶6 稀釋Matrigel,充分混勻;取400 μL 稀釋的Matrigel 加入Tanswell 板上室,37℃30 min 后Matrigel聚合成膠;細胞用PBS漂洗3次,用無血清培養(yǎng)基制備單細胞懸液,每個小室加入5×105細胞,置于6孔板中,48 h后觀察照相并計數(shù)。
用限制性內切酶HindⅢ/XhoⅠ對pcDNA3.0-miR-155 質粒進行雙酶切,酶切產物經瓊脂糖凝膠電泳,在350 bp 及5.4 kb 左右出現(xiàn)條帶,符合預期結果(圖1);測序后與GenBank(NR_030784)序列比對一致。
將SK-HEP-1 及MHCC-97H 肝癌細胞培養(yǎng)至密度為70%~80%(圖2),細胞狀態(tài)良好,呈長梭形(SK-HEP-1)或多邊形(MHCC-97H)上皮樣細胞狀態(tài)。轉染pcDNA3.0-miR-155 質粒72 h 后,對SKHEP-1 及MHCC-97H 細胞進行實時定量PCR,以檢測miR-155的表達情況,以轉染pcDNA3.0質粒為對照,結果顯示陽性組比對照組表達水平高約424.8±48.5倍(SK-HEP-1,P<0.01)與63.69±7.8倍(MHCC-97H,P<0.01)(圖3),這說明pcDNA3.0-miR-155 質粒能有效地高表達成熟的miR-155。
CCK8 法檢測結果表明,pcDNA3.0-miR-155 質粒轉染SK-HEP-1 及MHCC-97H 細胞24、72、120 h后,與轉染pcDNA3.0 對照載體組相比,在72 h 后細胞增殖受到明顯的促進,miR-155 質粒轉染組SKHEP-1 與對照組在72 h 的增殖倍數(shù)分別為4.59±0.14 與3.04±0.15(P<0.01),miR-155 質粒轉染組MHCC-97H 與對照組在72 h 的增值倍數(shù)分別為3.78±0.12 與3.35±0.38(P<0.01)(圖4)??寺⌒纬蓪嶒炇菍渭毎麘乙阂暂^低的細胞密度接種于培養(yǎng)孔板中,經過相對較長時間的培養(yǎng)來考察單個細胞的增殖能力,miR-155 質粒轉染組SK-HEP-1 與對照組在72 h 的克隆形成數(shù)目分別為410.00±11.36 與189.33 ± 12.66(P<0.01),miR-155 質粒轉染組MHCC-97H 與對照組在72 h 的克隆形成數(shù)目分別為226.00±6.08與144.33±14.98(P<0.01)(圖5),說明miR-155促進了肝癌細胞的增殖。
圖1 pcDNA3.0-miR-155質粒的HindⅢ/XhoⅠ雙酶切鑒定
Transwell檢測結果表明,pcDNA3.0-miR-155質粒轉染組SK-HEP-1 與對照組浸潤數(shù)目分別為143.00±9.36與76.00.33±10.67(P<0.01),二者差異具有顯著意義(P<0.01)(圖6)。
圖2 SK-hep1(A)及MHCC-97H(B)肝癌細胞(×200)
圖3 實時定量PCR檢測轉染pcDNA3.0-miR-155后SK-hep1及MHCC-97H肝癌細胞中miR-155的表達
圖4 miR-155促進SK-hep1及MHCC-97H肝癌細胞增殖
圖5 克隆形成實驗證明miR-155促進SK-HEP-1(A)及MHCC-97H(B)肝癌細胞增殖
圖6 侵襲實驗證明miR-155促進SK-HEP-1細胞的浸潤
越來越多的研究表明,除了腫瘤細胞本身發(fā)生的遺傳學或表觀遺傳學的改變之外,腫瘤細胞所處的微環(huán)境也在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中扮演至關重要的角色[10-11]。腫瘤微環(huán)境包括內皮細胞、間充質干細胞、成纖維細胞、炎癥細胞及脂肪細胞等。我們課題組曾經系統(tǒng)研究肝腫瘤微環(huán)境對肝癌發(fā)生與發(fā)展的影響并取得一定的進展,發(fā)現(xiàn)了肝癌微環(huán)境中的肝星狀細胞及間充質干細胞等在腫瘤細胞的影響下呈現(xiàn)明顯激活狀態(tài),高表達EPM 及S100-A4 等因子,進而對腫瘤細胞的生物學行為產生明顯影響:促進腫瘤的增殖,明顯增加了腫瘤細胞的浸潤能力,在腫瘤微環(huán)境激活細胞的刺激下,腫瘤細胞肝內轉移甚至肺轉移的能力增加[15]。進一步弄清腫瘤微環(huán)境中的這些因子的分子調控機制,將有望為明確腫瘤發(fā)生發(fā)展的病理機制,以及發(fā)現(xiàn)新的腫瘤診療靶標提供線索。
在前期工作中,我們發(fā)現(xiàn)在肝腫瘤微環(huán)境的刺激下,肝腫瘤細胞的生物學行為發(fā)生了改變,包括細胞的增殖、浸潤與轉移能力的提高等。此外,我們的研究也發(fā)現(xiàn)腫瘤細胞內的miRNA 表達譜發(fā)生了變化,包括miR-155、miR-301、miR-222、miR-107 等在內的miRNA 的表達明顯上調,其中miR-155 表達的改變最為顯著。miR-155 是一個典型的多功能基因,目前已被報道參與多種生理與病理過程,如炎癥反應、腫瘤的發(fā)生發(fā)展等。在急性髓細胞樣白血病中,miR-155 的表達明顯升高;此外,在多種實體瘤中,包括甲狀腺癌、乳腺癌、結腸癌及宮頸癌等,miR-155 的表達顯著上升,并可能與患者的病理分級及預后有一定的相關性,但其對腫瘤細胞的生物學作用及分子調控機制仍須進一步明確[16-17]。
為了進一步揭示肝腫瘤微環(huán)境是否通過miR-155 發(fā)揮其對腫瘤細胞生物學行為的影響,我們通過pcDNA3.0-miR-155載體在SK-HEP-1及MHCC-97H 肝癌細胞中高表達miR-155,并研究miR-155對腫瘤細胞增殖及浸潤能力的影響。研究結果證實,miR-155 發(fā)揮了與腫瘤微環(huán)境中的間質細胞類似的生物學作用,可以促進腫瘤細胞的增殖與浸潤能力,提示miR-155參與了腫瘤微環(huán)境,有促進腫瘤的發(fā)生與發(fā)展的過程。這有助于我們進一步明確肝腫瘤微環(huán)境作用的病理機制,而miR-155 在肝癌細胞中的高表達并對腫瘤細胞生物學行為造成影響,為臨床上肝癌的分子診斷及治療提供了新思路與新靶點。
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