張學(xué)亮, 羅云敬*, 姜 潔, 路 勇, 馮 楠
(1.北京工業(yè)大學(xué)生命科學(xué)與生物工程學(xué)院,北京100124;2.北京市食品安全監(jiān)控和風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估中心,北京100041)
β2-受體激動(dòng)劑(β2-agonists)是一類(lèi)人工合成的苯乙醇胺類(lèi)藥物,主要包含克倫特羅、沙丁胺醇、萊克多巴胺等,這類(lèi)物質(zhì)的作用包括顯著提高動(dòng)物胴體的瘦肉率、增重和提高飼料轉(zhuǎn)化率[1,2],但對(duì)人體有毒害作用。因而,我國(guó)農(nóng)業(yè)部等公告[3-6]規(guī)定嚴(yán)禁在動(dòng)物飼料和飲用水等中使用此類(lèi)藥物,在動(dòng)物源食品中不得檢出此類(lèi)藥物,同時(shí)給出了部分藥物的檢測(cè)方法。歐盟等西方國(guó)家也對(duì)食品中部分β2-受體激動(dòng)劑殘留限量做出了規(guī)定[7]。
食品中β2-受體激動(dòng)劑殘留的常用檢測(cè)方法有高效液相色譜法[8,9]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[10]、高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[11]、超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[12-16]等。分子印跡聚合物(molecularly imprinted polymer,MIP)是人工合成的聚合物,是根據(jù)印跡分子定做的,具有特殊的分子結(jié)構(gòu)和官能團(tuán),能選擇性地識(shí)別印跡分子。所以以分子印跡聚合物為固相萃取吸附劑可提高萃取選擇性。分子印跡固相萃取也逐漸得到很好的應(yīng)用[15,16],但是目前國(guó)內(nèi)外尚未見(jiàn)采用分子印跡固相萃取結(jié)合液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測(cè)β2-受體激動(dòng)劑殘留的報(bào)道。本研究以豬肉為樣品基質(zhì),在55℃酶解2 h后進(jìn)行分子印跡固相萃取凈化,內(nèi)標(biāo)法定量,建立了超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜同時(shí)檢測(cè)5種β2-受體激動(dòng)劑殘留的方法。本方法通過(guò)減少酶解時(shí)間提高了實(shí)驗(yàn)效率,而且采用內(nèi)標(biāo)法定量和分子印跡固相萃取柱進(jìn)行凈化,進(jìn)一步提高了方法的準(zhǔn)確性。
UPLC-TQ-S超高效液相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜聯(lián)用儀(美國(guó)Waters公司);Milli-Q純水儀(美國(guó)Millipore公司);高速冷凍離心機(jī)(美國(guó)Sigma公司);電子分析天平(北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司)。
苯乙醇胺 A(phenethylamine A)、沙丁胺醇(salbutamol)、沙美特羅(salmeterol)、克倫特羅(clenbuterol)、萊克多巴胺(ractopamine)、d6-沙丁胺醇(d6-salbutamol)、d5-萊克多巴胺(d5-ractopamine)、d6-克倫特羅(d6-clenbuterol)、d3-沙美特羅(d3-salmeterol)、d3-苯乙醇胺 A(d3-phenethylamine A)均購(gòu)自 Dr.Ehrenstorfer GmbH;純度均高于98.0%。β-鹽酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶(30 ku/60 ku)購(gòu)自默克公司;MIP Beta-Receptors固相萃取柱(25 mg/10 mL)購(gòu)自美國(guó) SUPELCO
標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液的配制:準(zhǔn)確稱(chēng)取25 mg的上述標(biāo)準(zhǔn)品,用甲醇溶解在25 mL容量瓶中,配制成1 000 μg/kg的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,于-18℃保存。
乙酸-乙酸鈉緩沖液的配制:稱(chēng)取43.0 g乙酸鈉,加入22 mL乙酸,用水溶解并定容到1 000 mL,用乙酸調(diào)節(jié)pH到5.2。
樣品的酶解:準(zhǔn)確量取動(dòng)物性食品樣品2 g,置于離心管內(nèi),加入1 mg/L的同位素標(biāo)準(zhǔn)溶液20 μL,渦旋混勻,加入 10 mL 0.2 mol/L 乙酸銨緩沖液(pH 5.2)和 100 μL β-葡萄糖醛酸酶/芳基硫酸酯酶,于55℃酶解2 h。酶解液放至室溫后,用0.1 mol/L的NaOH溶液調(diào)pH至7.0左右,渦旋后于0℃、10 000 r/min下離心10 min,將上清液轉(zhuǎn)入50 mL離心管中,待凈化。
樣品的凈化:MIP柱依次用6 mL乙腈、1 mL水活化,然后提取液上MIP柱,棄去流出液;用3 mL水淋洗,抽真空使柱中的溶液全部流出;再用1 mL乙腈、3 mL 60% (v/v)乙腈水溶液淋洗,抽真空使柱中的溶液全部流出;用2 mL 1%(v/v)甲酸乙腈溶液洗脫,收集洗脫液,濃縮至近干,以流動(dòng)相復(fù)溶后過(guò)0.22 μm的有機(jī)濾膜,待LC-MS測(cè)定。
色譜柱:Waters ACQUITY UPLC HSS C18(100 mm ×2.1 mm,1.7 μm);流動(dòng)相:0.1% (v/v)甲酸水溶液(B)/甲醇(A)。梯度洗脫:0~7.0 min,15%A~50%A;7.0~10 min,50%A~99%A;10~13 min,99%A;13.1~16 min,15%A。恒定流速:0.30 mL/min;柱溫:40 ℃;進(jìn)樣量:10 μL。
電噴霧離子源正離子(ESI+)模式;毛細(xì)管電壓:2.59 kV;離子源溫度:150℃;去溶劑氣溫度:350℃;去溶劑氣流量:800 L/h;錐孔氣流量:150 L/h;多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式。10種β2-受體激動(dòng)劑的質(zhì)譜分析參數(shù)見(jiàn)表1。
采用超高效液相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜分別對(duì)5種β2-受體激動(dòng)劑進(jìn)行多反應(yīng)監(jiān)測(cè)掃描,以?xún)蓪?duì)母離子-子離子、保留時(shí)間等對(duì)這些化合物進(jìn)行定性、定量。
由于電噴霧質(zhì)譜的電離是在溶液狀態(tài)下的電保留時(shí)間和峰形外,還會(huì)影響分析物的離子化效率,從而影響目標(biāo)化合物的檢測(cè)靈敏度。本實(shí)驗(yàn)分別采用甲醇、乙腈、甲醇-0.1% (v/v)甲酸水溶液、乙腈-0.1%(v/v)甲酸水溶液作為流動(dòng)相,考察了流動(dòng)相組成對(duì)各化合物響應(yīng)值的影響,結(jié)果表明甲醇-0.1%(v/v)甲酸水溶液作為流動(dòng)相時(shí)的峰形明顯改善,因此以甲醇-0.1%(v/v)甲酸水溶液為流動(dòng)相。最終得到的5種β2-受體激動(dòng)劑的總離子流圖(total ion chromatogram,TIC)(見(jiàn)圖1)。
表1 10種化合物的質(zhì)譜參數(shù)Table 1 MS parameters for the ten compounds
圖1 5種化合物的總離子流色譜圖Fig.1 Total ion chromatograms(TIC)of the five compounds
食品中β2-受體激動(dòng)劑檢測(cè)中前處理方法的關(guān)鍵是選擇提取效率好的提取溶劑,以及合理的凈化方案,減少目標(biāo)化合物在樣品前處理過(guò)程中的損失。王培龍等[10]、胡艷云等[16]已經(jīng)對(duì)提取溶液進(jìn)行了很好的研究,本文就酶解條件、凈化方式等條件進(jìn)行了優(yōu)化。
2.2.1 酶解條件的選擇
β2-受體激動(dòng)劑在動(dòng)物體內(nèi)代謝過(guò)程中,多數(shù)會(huì)與硫酸酯蛋白和葡萄糖醛酸作用,最終以硫酸軛合物和葡萄糖醛酸軛合物等結(jié)合態(tài)形式存在,需要將其轉(zhuǎn)化為游離態(tài)進(jìn)行檢測(cè),因此采用β-葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶對(duì)樣品進(jìn)行酶解。參考Damasceno 等[17]、楊光等[18]對(duì) β-葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶的活性研究,本文比較了55℃下酶解2 h和37℃下酶解16 h的效果。結(jié)果如圖2所示,因此選擇55℃下酶解2 h。在保證效率和回收率的前提下,本方法與王培龍等[10]、胡艷云等[16]方法以及國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)[6]等酶解方法相比,提高了工作效率。
圖2 酶解條件對(duì)5種β2-受體激動(dòng)劑回收率的影響Fig.2 Effect of enzyme conditions on the recoveries of the five β2 -agonists
2.2.2 凈化條件的優(yōu)化
實(shí)驗(yàn)過(guò)程中發(fā)現(xiàn),直接用提取劑提取而不凈化時(shí),提取溶液中樣品基質(zhì)干擾物質(zhì)多,基質(zhì)效應(yīng)比較強(qiáng),同時(shí)對(duì)色譜柱和儀器的損壞較大。樣品基質(zhì)中主要是大分子蛋白質(zhì)和脂肪,另外也有小分子的碳水化合物等。實(shí)驗(yàn)比較了HLB柱(Waters,6 mL/150 mg,30 μm)、MCX 柱(Waters,6 mL/150 mg,30 μm)、MIP 柱和 DisQuE 凈化管 (Waters,15 mL,150 mg PSA、150 mg C18、900 mg MgSO4),以回收率評(píng)價(jià)提取效果。如圖3所示,對(duì)于DisQuE凈化管、MCX柱、C18柱,由于目標(biāo)化合物的種類(lèi)多,極性差異比較大,化合物的保留效果差,損失較大,凈化效果不理想;MIP柱作為相對(duì)比較專(zhuān)一的交換柱,能夠特異性地保留目標(biāo)化合物,采用低溫環(huán)境凈化(-4℃)和強(qiáng)酸條件也能起到沉淀蛋白質(zhì)和脂肪的凈化作用。所以選擇MIP固相萃取柱。
圖3 不同凈化條件下5種β2-受體激動(dòng)劑的平均回收率Fig.3 Average recoveries under different purification conditions for the five β2-agonists
2.3.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線和檢出限
用陰性樣品基質(zhì)配制 0、0.05、0.1、0.5、1、2、5、10 μg/kg等不同含量的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,同時(shí)加入10 μL 1 mg/L的內(nèi)標(biāo)物混合液,進(jìn)行樣品前處理和測(cè)定。以5種β2-受體激動(dòng)劑和內(nèi)標(biāo)物的響應(yīng)比值為縱坐標(biāo),化合物的含量(單位為μg/kg)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。以信噪比為3確定方法檢出限(LOD),信噪比為10確定定量限(LOQ)。5種β2-受體激動(dòng)劑的線性方程、線性范圍、相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限見(jiàn)表2。
表2 5種β2-受體激動(dòng)劑的回歸方程、線性范圍、相關(guān)系數(shù)(r2)、檢出限和定量限Table 2 Regression equations,linear ranges,correlation coefficients (r2),LODs and LOQs of the five β2-agonists
2.3.2 回收率和精密度
如表3所示,在陰性豬肉空白樣品中添加低、中、高3 個(gè)水平(0.25、1.0、5 μg/kg)的5 種 β2-受體激動(dòng)劑混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,樣品前處理后測(cè)定目標(biāo)化合物,每個(gè)加標(biāo)水平進(jìn)行6次試驗(yàn)。
表3 豬肉加標(biāo)樣品中5種β2-受體激動(dòng)劑的平均回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差Table 3 Average recoveries and relative standard deviations ofthe five β2-agonists in spiked pork sample
按照實(shí)驗(yàn)室質(zhì)量控制規(guī)范,當(dāng)空白樣品中加標(biāo)水平低于0.1 mg/kg時(shí),回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差的要求分別為60%~120%和0~20%。從表3的結(jié)果中可以看出,5種β2-受體激動(dòng)劑的平均回收率為80.4% ~92.9%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.2% ~6.3%,完全符合要求,方法的重現(xiàn)性和準(zhǔn)確度良好,較為可靠。
利用上述方法對(duì)不同地區(qū)大型超市和市場(chǎng)購(gòu)買(mǎi)的50份豬肉進(jìn)行分析,只檢出一份豬肉樣品中含有0.13 μg/kg 克倫特羅(見(jiàn)圖4)。
圖4 陽(yáng)性樣品的色譜圖Fig.4 Chromatogram of a positive sample
本研究采用分子印跡固相萃取-超高效液相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜技術(shù)建立了豬肉中5種β2-受體激動(dòng)劑殘留的同時(shí)定量方法。該方法檢出限低、回收率高,快速、靈敏、準(zhǔn)確,提高了實(shí)驗(yàn)效率和準(zhǔn)確性,適合同時(shí)進(jìn)行多種β2-受體激動(dòng)劑殘留的測(cè)定。
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