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    香稻不育系ISSR正交體系優(yōu)化及驗證

    2015-06-15 21:01:19徐君劉鳳軍張國芹徐瑤謝裕林陳培
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2015年4期
    關(guān)鍵詞:香稻

    徐君+劉鳳軍+張國芹+徐瑤+謝裕林+陳培峰+王建平+喬中英+黃萌+朱勇良

    摘要:利用正交試驗設(shè)計,從Taq酶、Mg2+、模板DNA、dNTP、引物5種因素的4個水平對香稻不育系的ISSR-PCR反應(yīng)體系進行優(yōu)化,確立適合香稻的ISSR-PCR反應(yīng)體系:1.0 U Taq酶、2.5 mmol/L Mg2+、40 ng模板DNA、0.25 mmol/L dNTP、0.1 μmol/L引物濃度。進一步驗證試驗表明,在該體系下將篩選的13個ISSR引物對15個香稻不育系進行PCR擴增,均可獲得穩(wěn)定、清晰的條帶。

    關(guān)鍵詞:香稻;ISSR-PCR;正交優(yōu)化

    中圖分類號: S511.03 文獻標志碼: A

    文章編號:1002-1302(2015)04-0021-03

    收稿日期:2014-05-28

    基金項目:江蘇省自然科學(xué)基金(編號:BK2010207);江蘇省蘇州市應(yīng)用基礎(chǔ)項目(編號:YJG0902)。

    作者簡介:徐 君(1982—),男,江蘇蘇州人,碩士,助理研究員,研究方向為植物細胞工程。Tel:(0512)65386213;E-mail:flyforever007@163.com。

    通信作者:朱勇良,副研究員,研究方向為水稻遺傳育種和生態(tài)安全標準化栽培。Tel:(0512)65386213;E-mail:thszyl@126.com。

    ISSR(inter-simple sequence repeats)標記技術(shù),是基于PCR(polymerase chain reaction)技術(shù)的DNA分子標記技術(shù),采用17~22堿基的重復(fù)錨定引物擴增重復(fù)序列之間的片段,具有重復(fù)性較好、穩(wěn)定程度高、多態(tài)性豐富等優(yōu)點,已被廣泛應(yīng)用于品種鑒定、遺傳多樣性分析、遺傳作圖等研究[1]。利用ISSR標記對水稻進行遺傳分析及分類研究已有不少報道,如研究栽培稻與野生稻的親緣關(guān)系[2]、分析中國疣粒野生稻的遺傳多樣性[3]、對水稻光溫敏核不育系進行分子鑒定和遺傳分析[4]等。

    江蘇太湖地區(qū)農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所從事水稻育種和相關(guān)工作已有多年,在太湖地區(qū)稻資源的收集、保存、種質(zhì)鑒定及品質(zhì)改良方面進行了較多的研究和摸索工作,目前收集有各類水稻資源超過2 000份。對資源的鑒定是資源利用的基礎(chǔ),對所收集水稻資源的遺傳多樣性進行客觀評價,可以為遺傳多樣性的保護、品種鑒定及提高育種效率提供科學(xué)依據(jù)[5]。水稻的分子標記,現(xiàn)階段以SSR(simple sequence repeats)標記為主[6-7],但是關(guān)于更為經(jīng)濟、簡便的ISSR報道相對較少。穩(wěn)定的擴增體系是ISSR結(jié)果應(yīng)用于遺傳分析的前提[8],由于ISSR-PCR反應(yīng)條件易受多種因素干擾,簡單的單因素不能滿足體系建立要求。本研究采用正交試驗設(shè)計,從Taq酶、Mg2+、模板DNA、dNTP、引物5種因素的4個水平出發(fā),對香稻不育系ISSR反應(yīng)體系進行優(yōu)化分析,以期為今后進一步將該技術(shù)應(yīng)用于水稻育種輔助工作奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    試驗材料是選自江蘇太湖地區(qū)農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所近期選育和引進的有代表性的15個香稻不育系材料:蘇香粳1號A、太湖粳6號A、吳江3號A、9703A、軟玉A、蘇04-799A、95122A、06A、運糯6028A、揚粳9538A、皖稻68A、蘇香粳1號A(紅蓮型)、吳江3號A(紅蓮型)、太湖粳6號A(紅蓮型)、9703A(紅蓮型)。

    試驗所采購的所有試劑包括:DNA Marker、PCR試劑盒、電泳相關(guān)試劑,全部購自生工生物工程(上海)股份有限公司。

    本試驗所用ISSR引物是參照加拿大哥倫比亞大學(xué)(UBC)所設(shè)計的引物序列,并由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 水稻基因組DNA提取 取0.1 g左右水稻的葉片,直接放入離心管中,置于-70 ℃?zhèn)溆谩?/p>

    基因組DNA的提取采用改良的CTAB法[9],用1%瓊脂糖凝膠電泳初步檢測DNA質(zhì)量,并通過紫外-可見分光光度計測定D260 nm、D280 nm,檢測DNA的質(zhì)量和濃度。將提取原液放置于-20 ℃保存。用于PCR反應(yīng)的DNA工作液進一步稀釋至100n g/μL,備用。

    1.2.2 正交優(yōu)化ISSR-PCR反應(yīng) 采用L16(45)正交設(shè)計表,由Taq酶、Mg2+、模板DNA、dNTP、引物5種因素各4個水平組成,共計16個處理,正交試驗設(shè)計見表1。以水稻不育系吳江3號A(紅蓮型)DNA為模板,用ISSR引物UBC835[5′-(AC)8YT-3′]進行試驗。各處理總體積為25 μL,每個處理中均加入2.5 μL無Mg2+的10×Taq buffer,不足的體積用超純水補足,詳見表2。

    PCR擴增的程序:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,52 ℃退火45 s,72 ℃延伸1.5 min,35個循環(huán);72 ℃延伸 5 min;4 ℃終止反應(yīng)。

    將PCR擴增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳分離,EB染色后于UV凝膠成像系統(tǒng)中觀察結(jié)果。

    1.2.3 ISSR引物及優(yōu)化體系驗證 根據(jù)錢韋等的報道[3-4],篩選13個ISSR引物,對15個香稻不育系進行擴增,驗證所篩選引物對不育系的通用性及ISSR-PCR擴增體系的穩(wěn)定性。

    表1 ISSR-PCR正交試驗設(shè)計表L16(45)

    處理編號 Taq酶

    (U) Mg2+

    (mmol/L) 模板DNA

    (ng) dNTPs

    (mmol/L) 引物

    (μmol/L)

    1 0.75(1) 1.5(1) 20(1) 0.10(1) 1.0(1)

    2 0.75(1) 2.0(2) 40(2) 0.15(2) 1.5(2)

    3 0.75(1) 2.5(3) 60(3) 0.20(3) 2.0(3)

    4 0.75(1) 3.0(4) 80(4) 0.25(4) 2.5(4)

    5 1.00(2) 1.5(1) 40(2) 0.20(3) 2.5(4)

    6 1.00(2) 2.0(2) 20(1) 0.25(4) 2.0(3)

    7 1.00(2) 2.5(3) 80(4) 0.10(1) 1.5(2)

    8 1.00(2) 3.0(4) 60(3) 0.15(2) 1.0(1)

    9 1.50(3) 1.5(1) 60(3) 0.25(4) 1.5(2)

    10 1.50(3) 2.0(2) 80(4) 0.20(3) 1.0(1)

    11 1.50(3) 2.5(3) 20(1) 0.15(2) 2.5(4)

    12 1.50(3) 3.0(4) 40(2) 0.10(1) 2.0(3)

    13 2.00(4) 1.5(1) 80(4) 0.15(2) 2.0(3)

    14 2.00(4) 2.0(2) 60(3) 0.10(1) 2.5(4)

    15 2.00(4) 2.5(3) 40(2) 0.25(4) 1.0(1)

    16 2.00(4) 3.0(4) 20(1) 0.20(3) 1.5(2)

    注:括號中數(shù)字表示水平。

    表2 25 μL ISSR-PCR優(yōu)化體系

    試劑成分 25 μL體系

    終濃度/用量 加入量

    (μL)

    10×Taq buffer 1× 2.5

    25 mmol/L Mg2+ 2.5 mmol/L 2.5

    2.5 mmol/L dNTP 0.25 mmol/L 2.5

    25 μmol/L Primer 1.0 μmol/L 1.0

    5 U/μL Taq Polymase 1 U 0.2

    25 ng/μL模板DNA 40 ng 1.0

    滅菌 ddH2O 14.3

    2 結(jié)果與分析

    2.1 基因組DNA提取與檢測

    檢測同一批提取的DNA樣品結(jié)果表明,主帶明亮,略有拖尾現(xiàn)象。說明CTAB法快速提取DNA效果良好,但存在DNA降解現(xiàn)象;后續(xù)試驗表明,該法提取基因組DNA可滿足PCR試驗需求。

    2.2 正交優(yōu)化ISSR-PCR反應(yīng)

    依據(jù)瓊脂糖電泳條帶的強弱和雜帶的多少做直觀分析。從圖1可以看出,在16個處理組合中,由于Taq 酶、Mg2+、模板DNA、dNTP、引物濃度5種影響因素組合的不同,擴增效果存在著明顯差異。按照擴增結(jié)果將16個處理從高到低依次打分,條帶數(shù)量豐富、背景清晰的記為16分;與之相反,擴增結(jié)果最差的為1分。編號1-16的評分結(jié)果分別為9、8、11、10、15、14、7、6、12、13、4、3、1、2、16、5分。圖2直觀分析結(jié)果顯示,Taq 酶、Mg2+、模板DNA、dNTP、引物濃度的最佳條件組合分別為1.0 U、2.5 mmol/L、40 ng、0.25 mmol/L、0.1 μmol/L。

    2.3 ISSR引物的篩選及體系驗證

    以吳江3號A基因組DNA為模板,根據(jù)文獻報道選擇13個適用于水稻的ISSR引物(引物編號、序列見表3),利用這13個引物對供試的15個香稻不育系材料進行PCR 擴增,

    結(jié)果如圖3所示。可以看出,15份材料均可擴增出穩(wěn)定、清晰的條帶。試驗共擴增出89條DNA條帶,條帶大小為 160~1 600 bp,其中引物UBC809擴增出的清晰條帶最多,為12條;引物UBC807、UBC855、UBC888的擴增條帶數(shù)最少,僅有5條??傮w看出,13個引物共產(chǎn)生25條多態(tài)性帶,引物擴增產(chǎn)物的多態(tài)性比率較低,僅為28.1%。

    表3 所篩選的ISSR引物序列及擴增帶數(shù)

    引物編號 引物序列 擴增帶數(shù)

    (條)

    UBC807 5′-(AG)8T-3′ 5

    UBC808 5′-(AG)8C-3′ 7

    UBC809 5′-(AG)8G-3′ 12

    UBC811 5′-(GA)8C-3′ 8

    UBC 835 5′-(AG)8YC-3′ 7

    UBC 855 5′-(AC)8YT-3′ 5

    UBC 857 5′-(AC)8YG-3′ 7

    UBC 864 5′-(ATG)6-3′ 8

    UBC 880 5′-GGAGAGGAGAGGAGA-3′ 7

    UBC 888 5′-BDB(AC)7-3′ 5

    UBC 889 5′-DBD(CA)7-3′ 6

    UBC 890 5′-VHV(GT)7-3′ 6

    UBC 891 5′-HVH(GT)7-3′ 6

    注:Y=(C,T),B=(C,G,T),D=(A,G,T),H=(A,C,T),V=(A,C,G)。

    3 結(jié)論與討論

    ISSR標記基于PCR技術(shù),較RAPD、RFLP等第一代標記穩(wěn)定,但也受多種因素影響,試驗的可靠性和穩(wěn)定性與PCR反應(yīng)條件有很大關(guān)系[10]。本試驗的目的在于建立1套成本低廉、操作簡便、可靠性高、表達穩(wěn)定的ISSR-PCR技術(shù)體系,

    以期提供大量遺傳信息,應(yīng)用于香稻種質(zhì)資源的鑒定。研究中發(fā)現(xiàn),不同反應(yīng)體系下ISSR-PCR反應(yīng)結(jié)果可能出現(xiàn)不同(帶型不同),該情況在李雪等的研究中也有出現(xiàn)[8,11],分析其原因,可能是由于部分處理的引物濃度或Taq酶濃度過高而引起非特異擴增。非特異帶的形成對研究結(jié)果會造成根本性誤差,因此建立穩(wěn)定的ISSR-PCR反應(yīng)體系并對體系進行驗證就顯得更為重要[10,12]。

    本試驗利用正交設(shè)計優(yōu)化,確定適用于香稻ISSR-PCR的體系為:1.0 U Taq酶,2.5 mmol/L Mg2+,40 ng模板DNA,0.25 mmol/L dNTP,引濃度0.1 μmol/L。在該體系下將所篩選13個ISSR-PCR引物對15個不育系材料進行驗證擴增,結(jié)果表明,該體系廣泛適用于各材料及所篩選的引物,且表達穩(wěn)定、條帶清晰。一般而言,13個ISSR引物擴增所獲得的信息足以進行相關(guān)遺傳分析,但筆者在試驗中發(fā)現(xiàn),所篩選的13個引物雖然擴增出較多數(shù)目的分子標記(89個),但標記總體多態(tài)性較低,僅為28.1%,分析原因可能是由于香稻不育系之間來源類似、親緣關(guān)系較近。本試驗結(jié)果如果要分析香稻不育系間的遺傳關(guān)系,多態(tài)性標記數(shù)目顯得不足??稍诒驹囼灮A(chǔ)上對香稻進行遺傳分析,進一步篩選適宜的ISSR引物以獲得更多的多態(tài)性標記,或采用分子標記結(jié)合表型標記的方法,以獲得理想的結(jié)果。

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