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    綠色木霉與黑曲霉混合發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶的研究

    2015-04-12 06:09:40姜伯玲王曙陽李文建董妙音陳積紅
    中國釀造 2015年7期
    關(guān)鍵詞:木霉黑曲霉糖苷酶

    姜伯玲,王曙陽 *,李文建,董妙音,陳積紅,劉 敬,胡 偉

    (1. 中國科學(xué)院近代物理研究所,甘肅 蘭州 730000;2.中國科學(xué)院大學(xué),北京 100049)

    纖維素酶是一類能夠?qū)⒗w維素降解為葡萄糖的多組分酶系的總稱,它們協(xié)同作用,分解纖維素產(chǎn)生寡糖和纖維二糖,最終水解為葡萄糖[1-2]。一般按照其催化功能可分為3大類:外切-β-1,4-葡聚糖酶(exo-l,4-β-D-glucanase,CBH)E.C.3.2.1.4、內(nèi)切-β-1,4-葡聚糖酶(endo-1,4-β-D-glucanase,EG)E.C.3.2.1.91及β-葡萄糖苷酶(β-D-1,4-glucosidase,β-GA)E.C.3.2.1.21。天然纖維的組成和結(jié)構(gòu)不同,3種酶必須同時參與才能將纖維素晶體降解為簡單糖類[3-5]。

    目前,纖維素酶在食品、紡織、畜牧業(yè)、醫(yī)藥工業(yè)、生物質(zhì)能源開發(fā)及工農(nóng)業(yè)廢棄物回收等方面已廣泛應(yīng)用[6-8],市場對纖維素酶的需求量日益增加。能分泌纖維素酶的微生物是纖維素酶的主要來源,主要有真菌、細菌、放線菌和一些原生動物等[9-10]。真菌類的木霉屬(Trichoderma)、曲霉屬(Aspergillus)能產(chǎn)生3類纖維素酶且是胞外酶,降解纖維素的能力較強,因此是人們研究纖維素酶的熱點領(lǐng)域。但應(yīng)用研究發(fā)現(xiàn),單菌發(fā)酵所產(chǎn)的纖維素酶存在酶系不完整和個別酶活低的缺陷,如綠色木霉及其近緣菌株發(fā)酵產(chǎn)內(nèi)切葡聚糖酶活力較高,但所產(chǎn)的纖維素酶中普遍存在β-葡萄糖苷酶(β-GA)活力低的缺陷,而黑曲霉產(chǎn)β-葡萄糖苷酶能力較高,產(chǎn)內(nèi)切和外切葡聚糖酶能力較低[11-13]。纖維素酶活高低是影響纖維素酶降解纖維素能力的一個重要指標,而纖維素酶系組分配比的合理性也是不可忽視的一個影響因素。DUFF S J B等[14-15]報道,β-GA與濾紙酶活力(filter paper activity,F(xiàn)PA)的比值在0.12~1.50范圍內(nèi)時,纖維素酶系完整,組分配比合理,可以有效降解天然纖維素。因此,開發(fā)產(chǎn)纖維素酶活高、酶系全、酶組分配比合理的多菌混合發(fā)酵在降低纖維素酶生產(chǎn)成本、提高纖維素酶降解能力等方面有重要意義[16]。

    本研究利用綠色木霉與黑曲霉混合發(fā)酵生產(chǎn)纖維素酶,研究了綠色木霉與黑曲霉單獨發(fā)酵及混合發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶酶活的特點,優(yōu)化黑曲霉的接種時間及混合發(fā)酵時間,使混合發(fā)酵所產(chǎn)纖維素酶系完整、降解纖維素能力增強,從而降低生產(chǎn)成本,利于工業(yè)生產(chǎn)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 試驗菌株

    綠色木霉(Trichoderma viride)GSTCC 62010(NM01)、黑曲霉(Aspergillus niger)GSTCC 60108(NH01):甘肅省微生物菌種保藏中心;綠色木霉NMy及黑曲霉NHy由綠色木霉NM01、黑曲霉NH01混合發(fā)酵選育得到;黑曲霉NH11-1是黑曲霉NH01通過重離子輻照選育得到;選育得到的菌株均保存于中國科學(xué)院近代物理研究所微生物實驗室。

    1.1.2 主要試劑

    羧甲基纖維素鈉(carboxymethylatedcellulose,CMC-Na):天津市北辰方正試劑廠;微晶纖維素、水楊苷:加拿大Bio Basic股份有限公司;3,5-二硝基水楊酸(dinitrosalicylic acid,DNS):上海中秦化學(xué)試劑有限公司;瓊脂:北京索萊寶科技有限公司。以上試劑均為分析純。

    1.1.3 培養(yǎng)基

    (1)斜面培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,瓊脂20 g,蔗糖20 g,水1 000 mL,pH自然,121 ℃滅菌30 min。

    (2)種子培養(yǎng)基:CMC-Na 7.5 g,蛋白胨5.0 g,吐溫-80 2.0 mL,MgSO4·7H2O 0.3 g,CaCl20.3 g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.005 g,MnSO4·H2O 0.001 6 g,ZnSO4·7H2O 0.001 4 g,CoCl20.002 g,蒸餾水1 000 mL,pH自然,121 ℃滅菌30 min。

    (3)發(fā)酵培養(yǎng)基:CMC-Na 7.5 g,吐溫-80 2.0 mL,(NH4)2SO41.4g,K2HPO42.0g,MgSO4·7H2O0.3g,CaCl20.3 g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.005 g,MnSO4·H2O 0.001 6 g,ZnSO4·7H2O 0.001 4 g,CoCl20.002 g,蒸餾水1 000 mL,pH自然,121 ℃滅菌30 min。

    1.2 儀器與設(shè)備

    SP-756PC型紫外可見分光光度計:上海光譜儀器有限公司;HZQ-X300型恒溫振蕩器、DHP-9082型電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海一恒科學(xué)儀器有限公司;LDZX-50KBS型立式壓力蒸汽滅菌器:上海申安醫(yī)療器械廠;TDZ5-WS型多管架自動平衡離心機:湘儀離心機儀器有限公司。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 綠色木霉和黑曲霉單獨發(fā)酵培養(yǎng)方法

    將4 ℃冰箱保存的綠色木霉NM01、NMy與黑曲霉NHy、NH11-1分別接種于新鮮的斜面培養(yǎng)基上,30 ℃恒溫培養(yǎng)3 d,用無菌生理鹽水洗下斜面孢子,利用血球計數(shù)板計數(shù),控制孢子濃度為1×107個/mL,接種孢子懸液于種子培養(yǎng)基,30 ℃、200 r/min恒溫振蕩培養(yǎng)12 h。將種子培養(yǎng)基按5%的接種量接種至發(fā)酵培養(yǎng)基,30 ℃、200 r/min振蕩培養(yǎng)5 d,取發(fā)酵液待測。

    1.3.2 綠色木霉與黑曲霉混合發(fā)酵培養(yǎng)方法

    將1.3.1中的種子培養(yǎng)基按綠色木霉NM01∶黑曲霉(NHy、NH11-1)=5∶1(V/V)的接種比例接種于發(fā)酵培養(yǎng)基,使綠色木霉NM01分別與黑曲霉NHy、NH11-1進行混合發(fā)酵,30 ℃、200 r/min恒溫振蕩培養(yǎng)5 d,取發(fā)酵液待測。

    1.3.3 混合發(fā)酵中黑曲霉NH11-1接種時間的優(yōu)化

    將1.3.1中的綠色木霉NM01種子培養(yǎng)基按5%的接種量接種至發(fā)酵培養(yǎng)基,黑曲霉NH11-1種子培養(yǎng)基分別推遲24 h、48 h、72 h接種至綠色木霉NM01發(fā)酵培養(yǎng)基中,綠色木霉NM01與黑曲霉NH11-1的接種比例仍為5∶1(V/V),30 ℃、200 r/min振蕩培養(yǎng)5 d,取發(fā)酵液待測。

    1.3.4 纖維素酶活力和β-GA的測定

    發(fā)酵液在20 ℃、4 000 r/min下離心10 min,取上清液即得粗酶液。FPA與β-GA的測定見參考文獻[17]。一個濾紙酶活力和一個β-葡萄糖苷酶活力單位均定義為:在標準反應(yīng)條件下每分鐘生成1 μg葡萄糖所需的酶量(U/mL)。

    1.3.5 總還原糖含量的測定

    還原糖含量采用DNS方法進行測定,1.3.4中得到的粗酶液與相應(yīng)底物反應(yīng)后,添加3 mL DNS溶液,沸水浴中反應(yīng)5 min,冷卻至室溫后,于波長520 nm處檢測其吸光度值,根據(jù)葡萄糖標準曲線回歸方程計算還原糖含量。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 綠色木霉、黑曲霉單獨發(fā)酵培養(yǎng)對產(chǎn)纖維素酶活的影響

    綠色木霉NM01、NMy及黑曲霉NH11-1、NHy單獨發(fā)酵5 d時,取樣進行FPA與β-GA的檢測,結(jié)果如圖1所示。

    由圖1可知,綠色木霉NM01的FPA(204.60 U/mL)極顯著(P<0.01)高于其他3個菌株;而黑曲霉NH11-1及NHy的β-GA分別為339.38 U/mL、333.67 U/mL,極顯著(P<0.01)高于2株綠色木霉,而黑曲霉NH11-1的β-GA(339.38 U/mL)與NHy1的β-GA(333.67 U/mL)之間沒有顯著差異,這符合黑曲霉產(chǎn)纖維素酶的特點,即黑曲霉產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的能力較強,但是產(chǎn)外切葡聚糖酶的能力較弱,致使纖維素酶的總體酶活不高;而綠色木霉存在β-葡萄糖苷酶酶活較低的缺陷,使得其所產(chǎn)的纖維素酶酶系結(jié)構(gòu)不合理。此結(jié)果可作為混合發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶的依據(jù),即將FPA較高的綠色木霉NM01分別與β-GA較高的黑曲霉NH11-1及NHy進行混合發(fā)酵。

    圖1 綠色木霉、黑曲霉發(fā)酵培養(yǎng)對產(chǎn)纖維素酶酶活的影響Fig.1 Effect of fermentation by Aspergillus niger and Trichoderma viride on cellulase activities

    2.2 菌株混合發(fā)酵培養(yǎng)對產(chǎn)纖維素酶酶活的影響

    綠色木霉NM01分別與黑曲霉NH11-1、NHy混合(5∶1)發(fā)酵培養(yǎng)對產(chǎn)纖維素酶酶活的影響結(jié)果如圖2所示。

    圖2 兩菌株混合發(fā)酵培養(yǎng)對產(chǎn)纖維素酶酶活的影響Fig.2 Effect of mixed-culture fermentation by Aspergillus niger and Trichoderma viride on cellulase activities

    由圖2可知,綠色木霉NM01與黑曲霉NH11-1混合發(fā)酵的FPA與β-GA分別為239.59 U/mL和512.88 U/mL,2種酶活極顯著(P<0.01)高于綠色木霉NM01與黑曲霉NHy混合發(fā)酵的FPA與β-GA相應(yīng)酶活(65.82 U/mL,130.06 U/mL)。與綠色木霉NM01、黑曲霉NH11-1及NHy單獨發(fā)酵相比混合發(fā)酵產(chǎn)β-GA效果具有明顯優(yōu)勢,而所產(chǎn)的FPA沒有明顯提高。綠色木霉NM01與黑曲霉NH11-1混合發(fā)酵所產(chǎn)纖維素酶中β-GA與FPA的比值為2.14,超出0.12~1.50的范圍,所以需要對黑曲霉NH11-1的接種時間進行優(yōu)化,控制其所產(chǎn)纖維素酶活的大小,從而使β-GA與FPA的比值在0.12~1.50范圍內(nèi)。

    2.3 混合發(fā)酵中黑曲霉NH11-1接種時間的優(yōu)化

    β-GA與FPA的比值在0.12~1.50范圍內(nèi)時,纖維素酶水解纖維素的能力較強,而且針對不同的底物有最適的比值。從理論上來講,β-葡萄糖苷酶水解纖維二糖,從而減弱纖維二糖對酶解過程的抑制,提高酶解效率,所以在范圍內(nèi)其比值較大時酶解效果較好。黑曲霉NH11-1延遲接種時間對產(chǎn)纖維素酶酶活的影響結(jié)果見表1。

    表1 黑曲霉NH11-1延遲接種時間對產(chǎn)纖維素酶酶活的影響Table 1 Effect of delayed inoculation time of Aspergillus niger NH11-1 on cellulase activities

    由表1可知,以綠色木霉NM01和黑曲霉NH11-1單獨發(fā)酵作為對照,當黑曲霉NH11-1與綠色木霉NM01混合接入培養(yǎng)基時,所得到的β-GA均明顯高于綠色木霉NM01和黑曲霉NH11-1單獨發(fā)酵所得到β-GA(153.19 U/mL、339.38 U/mL),但所得到的FPA沒有明顯高于綠色木霉NM01單獨發(fā)酵所得到的FPA(204.60 U/mL)。說明黑曲霉NH11-1與綠色木霉NM01混合接種進行發(fā)酵時以黑曲霉NH11-1產(chǎn)β-葡萄糖苷酶為主,以綠色木霉NM01產(chǎn)纖維素酶為輔,而且β-GA與FPA的比值為2.14,超出0.12~1.50的范圍,即此時纖維素酶對天然纖維素的降解能力不是很強。

    黑曲霉NH11-1推遲24 h接種后發(fā)酵第5天的FPA最低(101.61U/mL),β-GA與FPA的比值為2.86,即黑曲霉NH11-1與綠色木霉NM01之間未形成協(xié)同作用,而是成了綠色木霉NM01產(chǎn)纖維素酶的干擾因素。黑曲霉NH11-1推遲72 h接種的β-GA與FPA的比值為1.51,說明以黑曲霉NH11-1產(chǎn)β-GA為主,其β-GA與FPA的比值與推遲24 h接種的混合發(fā)酵組均超出0.12~1.50的范圍,即纖維素酶系不滿足水解纖維素的最佳條件。

    黑曲霉NH11-1推遲48 h接種后發(fā)酵第5天的β-GA與FPA的比值為1.22,表明纖維素酶系完整,纖維素酶各組分配比合理,且FPA和β-GA較高,滿足其對纖維素進行完全水解的條件,說明此過程以綠色木霉產(chǎn)纖維素酶為主,而黑曲霉NH11-1起輔助協(xié)同作用。此結(jié)果不同于高星星等的報道[18],即黑曲霉推遲接種48 h與里氏木霉混合發(fā)酵產(chǎn)酶效果最佳,可能與所使用菌種、培養(yǎng)基碳源等條件有關(guān)。

    2.4 發(fā)酵時間對混合發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶酶活的影響

    黑曲霉NH11-1推遲48 h接種與綠色木霉NM01混合發(fā)酵時間對產(chǎn)纖維素酶酶活的影響結(jié)果如圖3所示。

    圖3 發(fā)酵時間對混合發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶酶活的影響Fig.3 Effect of mixed-culture fermentation time on cellulase activity

    由圖3可知,在混合發(fā)酵第2~4天,F(xiàn)PA顯著下降,β-GA呈上升趨勢,說明黑曲霉NH11-1接種至綠色木霉NM01發(fā)酵瓶中后在初始階段迅速生長,在發(fā)酵體系中以黑曲霉NH11-1產(chǎn)β-GA為主,綠色木霉NM01產(chǎn)纖維素酶為輔。發(fā)酵第4~6天FPA開始逐漸上升,β-GA仍呈上升趨勢,說明此過程主要是綠色木霉NM01產(chǎn)纖維素酶,而黑曲霉NH11-1起輔助協(xié)同作用。綠色木霉NM01與黑曲霉NH11-1二者互利共生,綠色木霉產(chǎn)生大量的內(nèi)切和外切葡聚糖酶,催化發(fā)酵培養(yǎng)基中的纖維素類底物產(chǎn)生大量纖維二糖,纖維二糖進一步誘導(dǎo)黑曲霉NH11-1生成大量β-GA,有效降解纖維二糖生成葡萄糖,供給綠色木霉NM01與黑曲霉NH11-1利用。在發(fā)酵第5天與第6天β-GA與FPA的比值分別為1.22、1.10,說明纖維素酶組分配比合理,同時纖維素酶活均較高,均滿足降解纖維素的條件,但考慮到發(fā)酵的經(jīng)濟性,因此,選取發(fā)酵周期為5 d。

    3 結(jié)論

    與綠色木霉、黑曲霉單一培養(yǎng)相比,黑曲霉NH11-1與綠色木霉NM01混合發(fā)酵在產(chǎn)纖維素酶方面具有明顯優(yōu)勢,二者可以兼容并發(fā)揮協(xié)同作用,改善纖維素酶的組分配比,并提高纖維素酶總體酶活。結(jié)果表明,黑曲霉NH11-1推遲48 h接種至綠色木霉NM01發(fā)酵瓶中進行混合發(fā)酵的產(chǎn)酶效果最佳,30 ℃、200 r/min恒溫振蕩培養(yǎng)5 d,F(xiàn)PA達到242.80 U/mL,是出發(fā)菌黑曲霉NH11-1的2.66倍;β-GA達到297.35 U/mL,是出發(fā)菌綠色木霉NM01的1.94倍;β-GA與FPA的比值為1.22,符合纖維素酶水解天然纖維素的最佳比例范圍。

    結(jié)果表明,綠色木霉NM01與黑曲霉NH11-1在同一發(fā)酵體系中二者可以兼容并發(fā)揮協(xié)同作用,可以改善纖維素酶的組分配比,并提高纖維素酶總體酶活,即混合發(fā)酵具有良好的大規(guī)模產(chǎn)纖維素酶的工業(yè)應(yīng)用前景。

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