焦長(zhǎng)紅,何 業(yè),靳鵬偉,朱世琴,朱為宏*
(1.華東理工大學(xué) 精細(xì)化工研究所,上海200237;2.華東理工大學(xué) 科技信息研究所,上海200237)
近年來,人們?cè)O(shè)計(jì)了許多熒光傳感器用于生物體的檢測(cè)[1-4],例如唾液酸、線粒體及血清蛋白含量的變化都可以通過熒光技術(shù)進(jìn)行檢測(cè)[5,6]。醫(yī)學(xué)工作者可以通過檢測(cè)特征標(biāo)志物含量的變化來檢測(cè)某些疾病,急性骨髓性白血病 (AML)就是其中一種,其主要臨床表現(xiàn)為骨髓內(nèi)異常細(xì)胞的快速增殖影響了正常血細(xì)胞的產(chǎn)生,以面色蒼白、發(fā)熱、身困無力為主要特征,并伴有心悸、氣短、胸脅壓痛和關(guān)節(jié)痛等[7,8]。AML的發(fā)病率隨著年齡增長(zhǎng)而增大[9],故建立一種快速檢測(cè)該類疾病的方法十分重要。
研究發(fā)現(xiàn),許多AML都是由于異檸檬酸脫氫酶-1(IDH1)及異檸檬酸脫氫酶-2(IDH2)突變引起,該突變將導(dǎo)致α-酮戊二酸 (α-KA)轉(zhuǎn)變?yōu)?-羥基戊二酸 (2HG),因此檢測(cè)α-KA轉(zhuǎn)變?yōu)?HG的過程具有十分重要的意義[10,11]?,F(xiàn)有的檢測(cè)方法一般通過液質(zhì)聯(lián)用 (LC-MS)或核磁共振 (NMR)來檢測(cè)2HG含量的變化,進(jìn)而確定IDH的突變[12,13],但其昂貴的測(cè)試成本及繁瑣的樣本預(yù)處理過程使其無法得到廣泛的應(yīng)用。2HG由于化學(xué)結(jié)構(gòu)沒有易于檢測(cè)的特征官能團(tuán),直接檢測(cè)十分困難,而α-KA 的羰基被鄰位強(qiáng)吸電子的羧基活化,因此本文的出發(fā)點(diǎn)就是通過檢測(cè)活性羰基來檢測(cè)α-KA含量的變化。
熒光檢測(cè)以其高靈敏度、高選擇性、非破壞性等優(yōu)點(diǎn)受到越來越多的關(guān)注[14-18]。羅丹明由于具有熒光量子產(chǎn)率高、光穩(wěn)定性好、摩爾消光系數(shù)高、激發(fā)波長(zhǎng)及發(fā)射波長(zhǎng)較長(zhǎng)等優(yōu)點(diǎn),在熒光探針中被廣泛應(yīng)用[19-23]。針對(duì)傳統(tǒng)測(cè)試條件的不足,本文合成了一個(gè)含有肼基作為響應(yīng)基團(tuán)的羅丹明B衍生物熒光傳感器RBN(圖1)。其識(shí)別機(jī)理是,RBN本身是閉環(huán)的結(jié)構(gòu)沒有熒光,但水合肼可以與α-KA的活性羰基發(fā)生反應(yīng)生成Schiff堿,所生成Schiff堿的酞胺螺環(huán)的吸電子能力增強(qiáng),誘導(dǎo)開環(huán),進(jìn)而導(dǎo)致RBN熒光增強(qiáng)(圖2)。為了選擇一個(gè)合適的測(cè)試條件,既可以使RBN對(duì)α-KA有較強(qiáng)的熒光響應(yīng),又使測(cè)試在接近人體中性環(huán)境下進(jìn)行,進(jìn)一步對(duì)測(cè)試條件進(jìn)行了系列優(yōu)化。以加入α-KA前RBN熒光強(qiáng)度為I0,與α-KA反應(yīng)后產(chǎn)物的熒光強(qiáng)度作為I,通過比較反應(yīng)后熒光增強(qiáng)倍數(shù)(I/I0),對(duì)檢測(cè)溫度、pH、響應(yīng)時(shí)間等測(cè)試條件進(jìn)行了系列優(yōu)化。此外,用人體內(nèi)常見的氨基酸、化學(xué)結(jié)構(gòu)類似的羰基化合物及活性氧化物(ROS)作參比,RBN對(duì)α-KA均表現(xiàn)出很好的選擇性,具有潛在的應(yīng)用價(jià)值。
圖1 熒光探針RBN的合成
圖2 熒光探針RBN檢測(cè)α-KA的原理
核磁共振氫譜和碳譜的測(cè)定采用了Bruker Avance超導(dǎo)傅里葉變換核磁共振波譜儀(400 MHz),室溫下以TMS為內(nèi)標(biāo)測(cè)定;質(zhì)譜的測(cè)試儀器為 Waters LCT Premier XE spectrometer;紫外-可見光吸收光譜的測(cè)定采用了Varian Cary 100紫外-可見分光光度計(jì);熒光發(fā)射光譜為Varian Cary Eclipse熒光光譜儀測(cè)定;熒光動(dòng)力學(xué)曲線所用儀器為海洋光學(xué)公司定制,其中所用光源為 Hamamatsu LC6Lightningcure,300W 汞氙燈提供,發(fā)射光譜由海洋光學(xué)CCD Maya2000pro跟蹤檢測(cè)。
實(shí)驗(yàn)測(cè)試所用試劑均為市售分析純?cè)噭?,羅丹明B購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,α-酮戊二酸及4-羥乙基哌嗪乙磺酸購自阿拉丁試劑有限公司。測(cè)試過程所用超純水是經(jīng)上海淶科儀器有限公司LAKECORE-S040D型超純水器凈化處理的蒸餾水。不同pH的HEPES緩沖溶液是在2mmol·L-1的4-羥乙基哌嗪乙磺酸的超純水溶液中滴加1mol·L-1的氫氧化鈉水溶液,用pH計(jì)實(shí)時(shí)測(cè)量,調(diào)節(jié)pH為5.7~7.0。RBN母液是500μmol·L-1的RBN的二甲基亞砜溶液,α-KA母液的濃度是10mmol·L-1,溶劑為超純水。
在100mL單口燒瓶中,加入羅丹明B(1.2g,2.5mmol)、水合肼(3mL)和乙醇(30mL),氬氣保護(hù)下油浴加熱至80~90℃回流反應(yīng)3h,減壓下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去溶劑,得到淺紫色固體。加入1mol·L-1的稀鹽酸(50mL)使固體全部溶解,再用1mol·L-1的氫氧化鈉水溶液(100mL)調(diào)節(jié)pH至7~8,有粉色固體析出,抽濾,所得固體經(jīng)10mL乙醇重結(jié)晶,得淡粉色固體粉末0.9g,產(chǎn)率84.0%[24]。
1HNMR (400MHz,CDCl3):1.16(t,12H,—NCH2CH3,J=7.2Hz),3.33(q,8H,—NCH2-CH3,J=7.2Hz),3.60(br,2H,—NH2),6.28(dd,2H,phenyl-H,J1=8.8Hz,J2=2.0Hz),6.41(d,2H,phenyl-H,J=2.0Hz),6.45(d,2H,phenyl-H,J=8.8Hz),7.10(t,1H,phenyl-H,J=3.6Hz),7.44(t,2H,phenyl-H,J=3.6Hz),7.93(t,1H,phenyl-H,J=3.6Hz).13CNMR(100MHz,CDCl3):12.62,44.38,65.96,97.95,104.50,108.04,123.01,123.84,128.11,128.14,130.00,132.55,148.89,151.56,153.86,166.19.HRMS (ESI):calcd for C28H32-N4O2[M+H]+:457.2604,found 457.2595。
取2mL HEPES緩沖溶液 (pH = 6.1),加入40μL的RBN母液,保持檢測(cè)溫度為37.4℃,通過熒光光譜儀檢測(cè)激發(fā)波長(zhǎng)為558nm時(shí),檢測(cè)α-KA的加入對(duì)產(chǎn)物熒光變化的影響(圖3)。隨著α-KA的不斷加入,其熒光強(qiáng)度不斷增強(qiáng),表現(xiàn)出很好的線性關(guān)系。其機(jī)理可以認(rèn)為是,RBN本身是閉環(huán)結(jié)構(gòu),沒有熒光,但隨著α-KA的加入會(huì)促進(jìn)羅丹明B螺環(huán)部位發(fā)生開環(huán),使羅丹明B整體的共軛結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,進(jìn)而導(dǎo)致RBN熒光增強(qiáng)(圖2)[25-28]。隨著α-KA 的加入,探針 RBN 的紫外吸收光譜圖也表現(xiàn)出明顯變化(圖4)。這是由于RBN自身是閉環(huán)結(jié)構(gòu),由于空間構(gòu)型扭曲,芳香環(huán)之間沒有形成共軛結(jié)構(gòu),在450~650nm之間幾乎沒有紫外吸收。當(dāng)RBN與100eq的α-KA反應(yīng)后,在450~650nm之間表現(xiàn)出明顯的吸收峰,且最大吸收峰為558nm,這是由于α-KA使RBN開環(huán)導(dǎo)致共軛結(jié)構(gòu)增大。此外,探針RBN與α-KA反應(yīng)產(chǎn)物的高分辨率質(zhì)譜的分子離子峰[M+H]+出現(xiàn)在585.2710,這與對(duì)應(yīng)的開環(huán)體的理論值(585.2713)非常一致,也進(jìn)一步證明了Schiff堿的生成使RBN發(fā)生開環(huán)的機(jī)理。
圖3 RBN與不同濃度α-KA反應(yīng)產(chǎn)物的熒光光譜圖插圖是585nm處I/I0隨α-KA當(dāng)量的變化曲線
圖4 探針RBN與α-KA作用前后的紫外吸收光譜圖
反應(yīng)體系的pH是影響反應(yīng)速率的重要因素之一。為了選擇一個(gè)合適的pH環(huán)境,進(jìn)行了一系列平行檢測(cè),以比較不同pH下RBN與α-KA反應(yīng)生成Schiff堿的熒光變化。在37.4℃的檢測(cè)溫度下,向不同pH的 HEPES緩沖溶液(2 mL)中加入40μL的RBN母液,使用558nm的光激發(fā),同樣通過熒光光譜儀分別測(cè)試加入α-KA(20μL)前后溶液的熒光,得到585nm 處I/I0隨pH的變化曲線(圖5)。研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)pH大于6.1時(shí),隨著pH值的增大,產(chǎn)物的熒光增長(zhǎng)倍數(shù)持續(xù)減小,這是由于酸性減弱不利于生成Schiff堿反應(yīng)的發(fā)生。但由于羅丹明B在強(qiáng)酸性情況下容易發(fā)生自身的開環(huán)反應(yīng),會(huì)導(dǎo)致RBN自身熒光增強(qiáng)(I0變大),因此測(cè)試環(huán)境的pH不能無限制的減小。事實(shí)上,實(shí)驗(yàn)證明在pH小于6.1后,產(chǎn)物的熒光增強(qiáng)倍數(shù)開始變得不明顯,這是由于檢測(cè)體系酸性太強(qiáng),使RBN開環(huán)導(dǎo)致其自身熒光I0增強(qiáng),進(jìn)而導(dǎo)致熒光增強(qiáng)倍數(shù)變化不明顯??紤]到在pH接近中性的條件下,測(cè)試環(huán)境更接近于人體體液的特點(diǎn),同時(shí)pH為5.7~6.1時(shí)RBN熒光增強(qiáng)倍數(shù)十分接近,故在后面系列優(yōu)化實(shí)驗(yàn)中選擇在更靠近中性環(huán)境(pH=6.1)的體系中進(jìn)行。
反應(yīng)時(shí)間是影響探針性能的另外一個(gè)重要因素,可以通過在線實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)RBN與α-KA反應(yīng)生成Schiff堿的熒光變化來評(píng)價(jià)響應(yīng)速度。在溫度為37.4℃的環(huán)境下,向2mL HEPES緩沖溶液(pH=6.1)中加入40μL的 RBN母液,再加入20μL的α-KA,使用波長(zhǎng)為558nm的光激發(fā),測(cè)試在585nm處的熒光強(qiáng)度隨時(shí)間的變化曲線(圖6),發(fā)現(xiàn)探針RBN與α-KA的反應(yīng)非常迅速,僅1.25s后產(chǎn)物的熒光強(qiáng)度就達(dá)到平衡,這明顯優(yōu)于目前報(bào)道的關(guān)于檢測(cè)α-KA的熒光探針的響應(yīng)時(shí)間(需1h以上)[4],而RBN將反應(yīng)時(shí)間縮短到1.25s,瞬間內(nèi)即可完成反應(yīng),極大程度地提高了檢測(cè)的效率,有利于在線快速檢測(cè),具有很大的應(yīng)用潛能。
圖5 在585nm處熒光強(qiáng)度(I/I0)隨pH的變化曲線
圖6 在585nm處RBN熒光動(dòng)力學(xué)曲線
由于RBN與α-KA的反應(yīng)是典型的生成Schiff堿的反應(yīng),反應(yīng)體系的溫度也可能對(duì)反應(yīng)速率有重要影響。因此進(jìn)行了一系列平行實(shí)驗(yàn)以檢測(cè)溫度變化對(duì)反應(yīng)速率的影響。采用上面優(yōu)化的pH、響應(yīng)時(shí)間,即取2mL HEPES緩沖溶液(pH=6.1),加入40μL的 RBN 母液及20μL的α-KA,通過熒光光譜儀測(cè)試溫度在5~45℃范圍內(nèi)的熒光變化(圖7)。很明顯,RBN與α-KA反應(yīng)產(chǎn)物的熒光強(qiáng)度隨溫度變化并不明顯,因此在后續(xù)的測(cè)試中選擇在人體溫度即37.4℃條件下進(jìn)行,有利于后期實(shí)際應(yīng)用。
圖7 在585nm處I/I0隨溫度的變化曲線
經(jīng)過上述一系列對(duì)反應(yīng)溫度、pH、響應(yīng)時(shí)間等條件的優(yōu)化,發(fā)現(xiàn)在檢測(cè)溫度為37.4℃、pH為6.1的HEPES緩沖溶液中,RBN與α-KA響應(yīng)非常迅速,僅需1.25s即可達(dá)到檢測(cè)平衡。在下面測(cè)試中采用優(yōu)化后的條件,進(jìn)一步探討探針RBN對(duì)α-KA的選擇性。
由于α-KA存在于人體體液中,同時(shí)體液中還存在許多其它種類的氨基酸,所以選擇了L-精氨酸(Arg)、L-纈氨酸(Val)、L-組氨酸(His)、甘氨酸(Ami)、L-絲氨酸(Ser)、L-甲硫氨酸(Met)、DL-丙氨酸(Ala)、L-亮氨酸(Leu)、L-酪氨酸(Tyr)、L-脯氨酸(Pro)、L-蘇氨酸(Thr)、L-色氨酸(Trp)、L-苯丙氨酸(Phe)、L-谷氨酸(Glu)、L-谷氨酰胺(Gln)、肌氨酸(Sar)、L-天門冬氨酸(Asp)、DL-天冬酰胺(Asn)、L-異亮氨酸(Ile)和 DL-半胱氨酸(Cys)20種常見氨基酸與α-KA進(jìn)行對(duì)比測(cè)試。檢測(cè)溫度為37.4℃,在pH為6.1的HEPES緩沖溶液中加入RBN母液,然后分別加入α-KA或20種常見氨基酸,采用558nm激發(fā),585nm下檢測(cè)產(chǎn)物的熒光。如圖8所示,測(cè)試發(fā)現(xiàn)探針RBN只有與α-KA反應(yīng)產(chǎn)物的熒光有明顯的增強(qiáng),與20種常見氨基酸反應(yīng)產(chǎn)物的熒光幾乎無變化,表明探針RBN即使在各種氨基酸存在的環(huán)境中對(duì)α-KA也有很好的選擇性。
除上述20種常見氨基酸外,還有一些化學(xué)結(jié)構(gòu)類似的羰基化合物及ROS可能會(huì)對(duì)RBN的選擇性產(chǎn)生干擾。因此選擇丙酮酸鈉(PAS)、乙二醛(GO)、3-苯丙醇(PGO)、丙酮醛(MGO)、苯丙酮酸(PPA)、過氧化氫(H2O2)等幾種化學(xué)結(jié)構(gòu)類似的物質(zhì)測(cè)試其選擇性。在與上述氨基酸相同條件下檢測(cè)發(fā)現(xiàn),除了RBN對(duì)PAS有微弱的響應(yīng)之外,只有α-KA與RBN反應(yīng)產(chǎn)物的熒光有明顯增強(qiáng)(圖9),這說明RBN對(duì)α-KA有很好的選擇性,具有潛在的應(yīng)用價(jià)值。
圖9 探針RBN基于不同羰基化合物及ROS的熒光選擇性測(cè)試
基于傳統(tǒng)的Schiff堿反應(yīng),設(shè)計(jì)合成了一個(gè)含有羅丹明B的熒光探針RBN以檢測(cè)α-KA。經(jīng)過一系列的平行實(shí)驗(yàn),優(yōu)化了RBN與α-KA的反應(yīng)條件,最后選定在pH為6.1的HEPES緩沖溶液中,檢測(cè)溫度為37.4 ℃,RBN 的濃度 為10μmol·L-1,檢測(cè)響應(yīng)時(shí)間僅1.25s。在相同的條件下,本文還采用20種常見氨基酸、化學(xué)結(jié)構(gòu)類似的羰基化合物及ROS進(jìn)行了選擇性測(cè)試,發(fā)現(xiàn)RBN對(duì)α-KA表現(xiàn)出很好的選擇性。和傳統(tǒng)的高效液相及核磁共振檢測(cè)α-KA的方法相比,RBN更加方便、經(jīng)濟(jì)、快捷,為血清等體液檢測(cè)提供了可能,具有潛在的應(yīng)用價(jià)值。
[1] Yang Y M,Zhao Q,F(xiàn)eng W,Li F Y.Luminescent chemodosimeters for bioimaging [J].Chemical Reviews,2013,113(1):192-270.
[2] Shi H F,Chen X J,Liu S J,Xu H,An Z F,Lang O Y,Tu Z Z,Zhao Q,F(xiàn)an Q L,Wang L H,Huang W.Hyperbranched phosphorescent conjugated polyelectrolytes for time-resolved heparin sensing [J].ACS Applied Materials Interfaces,2013,5(11):4562-4568.
[3] Niu L Y,Guan Y S,Chen Y Z,Wu L Z,Tung C H,Yang Q Z.BODIPY-based ratiometric fluorescent sensor for highly selective detection of glutathione over cysteine and homocysteine[J].Journal of the American Chemical Society,2012,134(46):18928-18931.
[4] Jin P W,Jiao C H,Guo Z Q,He Y,Zhu S Q,Tian H,Zhu W H.Rational design of a turn-on fluorescent sensor for α-ketoglutaric acid in a microfluidic chip [J].Chemical Science,2014,5(10):4012-4016.
[5] Key J A,Li C,Cairo C W.Detection of cellular sialic acid content using nitrobenzoxadiazole carbonyl-reactive chromophores[J].Bioconjugate Chemistry,2012,23(3):363-371.
[6] Leung C W T,Hong Y N,Chen S J,Zhao E G,Lam J W Y,Tang B Z.A photostable AIE luminogen for specific mitochondrial imaging and tracking [J].Journal of the American Chemical Society,2013,135(1):62-65.
[7] Wang J H,Chen W L,Li J M,Wu S F,Chen T L,Zhu Y M,Zhang W N,Li Y,Qiu Y P,Zhao A H,Mi J Q,Jie J,Wang Y G,Ma Q L,Huang H,Wu D P,Wang Q R,Li Y,Yan X J,Yan J S,Li J Y,Wang S,Huang X J,Wang B S,Jia W,Shen Y,Chen Z,Chen S J.Prognostic significance of 2-h(huán)ydroxyglutarate levels in acute myeloid leukemia in China [J].Proceedings of the National Academy of Sciences,2013,110(42):17017-17022.
[8] DiNardo C D,Propert K J,Loren A W,Paietta E,Sun Z X,Levine R L,Straley K S,Yen K,Patel J P,Agresta S,Abdel-Wahab O,Perl A E,Litzow M R,Rowe J M,Lazarus H M,F(xiàn)ernandez H F,Margolis D J,Tallman M S,Luger S M,Carroll M.Serum 2-h(huán)ydroxyglutarate levels predict isocitrate dehydrogenase mutations and clinical outcome in acute myeloid leukemia [J].Blood,2012,121(24):4917-4924.
[9] Zadran S,Remacle F,Levine R D.miRNA and mRNA cancer signatures determined by analysis of expression levels in large cohorts of patients[J].Proceedings of the National Academy of Sciences,2013,110(47):19160-19165.
[10] Rendina A R,Pietrak B,Smallwood A,Zhao H Z,Qi H W,Quinn C,Adams N D,Concha N,Sweitzer S,Schwartz B.Mutant IDH1enhances the production of 2-h(huán)ydroxyglutarate due to its kinetic mechanism [J].Biochemistry,2013,52(26):4563-4577.
[11] Sandala G M,Smith D M,Marsh E N G,Radom L.Toward an improved understanding of the glutamate mutase system [J].Journal of the American Chemical Society,2007,129(6):1623-1633.
[12] Langenbeck U,M?hring H U,Dieckmann K P.Gas chromatography ofα-keto acids as their o-trimethylsilylquino-xalinol derivatives [J].Journal of Chromatography A,1975,115(1):65-70.
[13] Montenegro P,Valente I M,Goncalves L M,Rodrigues J A,Barros A A.Single determination ofα-ketoglutaric acid and pyruvic acid in beer by HPLC with UV detection[J].Analytical Methods,2011,3(5):1207-1212.
[14] Shao J Y,Sun H Y,Guo H M,Ji S M,Zhao J Z,Wu W T,Yuan X L,Zhang C L,James T D.A highly selective red-emitting FRET fluorescent molecular probe derived from BODIPY for the detection of cysteine and homocysteine:an experimental and theoretical study[J].Chemical Science,2012,3(4):1049-1061.
[15] Kumar V,Anslyn E V.A selective turn-on fluorescent sensor for sulfur mustard simulants [J].Journal of the American Chemical Society,2013,135(16):6338-6344.
[16] 殷麗艷,陳甜甜,朱維平.基于萘酰亞胺的Turn-on型Fe3+熒光探針 [J].影像科學(xué)與光化學(xué),2014,32(1):84-90.Yin L Y,Chen T T,Zhu W P.A turn-on fluorescent probe for Fe3+based on naphthalimide [J].Imaging Science and Photochemistry,2014,32(1):84-90.
[17] 胡 睿,郭旭東,楊國強(qiáng).激發(fā)態(tài)分子內(nèi)質(zhì)子轉(zhuǎn)移化合物的性能及作為熒光化學(xué)傳感器的應(yīng)用研究 [J].影像科學(xué)與光化學(xué),2013,31(5):335-348.Hu R,Guo X D,Yang G Q.Investigation on the property of the excited state intramolecular proton transfer compounds and its application as fluorescence chemical sensor[J].Imaging Science and Photochemistry,2013,31(5):335-348.
[18] Zeng Y,Li Y Y,Li M,Yang G Q,Li Y.Enhancement of energy utilization in light-h(huán)arvesting dendrimers by the pseudorotaxane formation at periphery[J].Journal of the American Chemical Society,2009,131(25):9100-9106.
[19] Sakabe M,Asanuma D,Kamiya M R,Iwatate J,Hanaoka K,Terai T,Nagano T,Urano Y.Rational design of highly sensitive fluorescence probes for protease and glycosidase based on precisely controlled spirocyclization [J].Journal of the American Chemical Society,2013,135(1):409-414.
[20] Wu Y X,Li J B,Zhang X B,Tan W H,Shena G L,Yua R Q. A rhodamine-appended water-soluble conjugated polymer:an efficient ratiometric fluorescence sensing plat-form for intracellular metal-ion probing [J].Chemical Communications,2014,50(16):2040-2042.
[21] Zhou L Y,Zhang X B,Wang Q Q,Lv Y F,Mao G J,Luo A L,Wu Y X,Wu Y,Zhang J,Tan W H.Molecular engineering of a TBET-based two-photon fluorescent probe for ratiometric imaging of living cells and tissues [J].Journal of the American Chemical Society,2014,136(28):9838-9841.
[22] Li K,Xiang Y,Wang X Y,Hu J L R R,Tong A J,Tang B Z.Reversible photochromic system based on rhodamine B salicylaldehyde hydrazone metal complex[J].Journal of the American Chemical Society,2014,136(4):1643-1649.
[23] 楊 博,吳文輝.具有熒光增強(qiáng)性能的羅丹明B衍生物的合成及其對(duì)汞離子的檢測(cè) [J].影像科學(xué)與光化學(xué),2013,31(6):421-429.Yang B,Wu W H.Synthesis of the rhodamine B derivatives with fluorescence “turn-on”effect and their application to the detection of Hg2+[J].Imaging Science and Photochemistry,2013,31(6):421-429.
[24] Dujols V,F(xiàn)ord F,Czarnik A W.A long-wavelength fluorescent chemodosimeter selective for Cu(Ⅱ)ion in water[J].Journal of the American Chemical Society,1997,119(31):7386-7387.
[25] Karaku?E,ü?üncüa M,Emrullaholu M.A rhodamine/BODIPY-based fluorescent probe for the dierential detection of Hg(Ⅱ)and Au(Ⅲ)[J].Chemical Communications,2014,50(9):1119-1121.
[26] Best Q A,Sattenapally N,Dyer D J,Scott C N,McCarroll M E.pH-Dependent Si-fluorescein hypochlorous acid fluorescent probe:spirocycle ring-opening and excess hypochlorous acid-induced chlorination[J].Journal of the American Chemical Society,2013,135(36):13365-13370.
[27] Zhao Y,Zhang X B,Han Z X,Qiao L,Li C Y,Jian L X,Shen G L,Yu R Q.Highly sensitive and selective colorimetric and off-on fluorescent chemosensor for Cu2+in aqueous solution and living cells[J].Analytical Chemistry,2009,81(16):7022-7030.
[28] Yu H B,Jin L J,Dai Y,Li H Q,Xiao Y.From a BODIPY rhodamine scaffold to a ratiometric fluorescent probe for nitric oxide [J].New Journal of Chemistry,2013,37(6):1688-1691.