王 歡,胡集鋮,李 亞,韓萍芳
(1.南京工業(yè)大學(xué) 生物與制藥工程學(xué)院,南京 211800;2.上海市尚德實(shí)驗(yàn)學(xué)校,上海 201315)
作為生物催化劑,酶在工業(yè)、醫(yī)藥、農(nóng)業(yè)和食品等各個(gè)領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用[1]。在資源、能源短缺和環(huán)境不斷惡化的今天,酶促轉(zhuǎn)化已被提到相當(dāng)重要的戰(zhàn)略高度[2]。但是,游離酶在實(shí)際使用過(guò)程中對(duì)環(huán)境十分敏感,同時(shí)很難從反應(yīng)體系中被分離回收和重復(fù)利用,這些缺點(diǎn)是酶促反應(yīng)產(chǎn)業(yè)化的技術(shù)瓶頸[3]。為了克服這些問(wèn)題,在20世紀(jì)60年代,酶固定化技術(shù)應(yīng)運(yùn)而生且快速發(fā)展起來(lái)。
隨著對(duì)酶固定化技術(shù)研究的深入,探索高效廉價(jià)的載體引起了人們的重視。海泡石具有截面積為0.36 nm×1.06 nm的管狀貫穿通道及高達(dá)900 m2/g的理論表面積[4]。在通道和孔洞中可以吸附大量的水或極性物質(zhì),包括低極性物質(zhì),因此,海泡石具有很強(qiáng)的吸附能力[5]。由于海泡石具有以上這些特點(diǎn),使之具備作催化劑載體的良好條件[6]。
脂肪酶(lipase,E C 3.1.1.3,甘油酯水解酶)是一類特殊的酯鍵水解酶,能分解生物產(chǎn)生各種天然油脂,主要水解由甘油和C12原子以上的長(zhǎng)鏈脂肪酸形成的甘油三酯。其重要特征是在異相系統(tǒng)(油-水)界面上水解特殊酯(脂肪酸甘油酯)類作為重要的工業(yè)用酶被廣泛應(yīng)用于食品、制革、飼料洗滌和油脂化工等工業(yè)領(lǐng)域[7-8]。
筆者以海泡石為載體固定化豬胰脂肪酶(PPL),并考察固定化酶的最適條件及穩(wěn)定性、最適pH等理化性質(zhì),以期為進(jìn)一步的應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。
豬胰脂肪酶(porcine pancreas lipase,PPL),南京奧多福尼生物技術(shù)有限責(zé)任公司;海泡石(47 μm,預(yù)處理);Pluronic P123(EO20-PO70-EO20)、檸檬酸、三乙酸甘油酯、磷酸(分析純),國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;NaHCO3、NaH2PO4、Na2HPO4和 NaOH(分析純),廣東汕頭西隴化工廠。
DSHZ-300A型恒溫振蕩器(太倉(cāng)市試驗(yàn)設(shè)備廠),85-1型磁力攪拌器(金壇醫(yī)療設(shè)備廠),PHS-3C型pH測(cè)定儀(上海盛磁儀器有限公司),GL-21M型離心機(jī)(上海離心機(jī)械研究所),Nexus 670傅里葉紅外光譜儀(FT-IR)(美國(guó)Nicolet公司),JEM-2010UHR高分辨透射電鏡(SEM)儀(日本電子光學(xué)公司)。
取原礦樣放入燒杯中,加入適量蒸餾水(體積比1∶5),磁力攪拌10 min后,水化過(guò)夜。傾去上層懸浮物,取中間層懸濁液。下層沉淀物按上述方法再處理幾次,把得到的所有懸濁液抽濾,所得固體在105 ℃下烘干[9]。
取2 mg/mL的酶溶液40 mL、海泡石80 mg,加入100 mL具塞三角燒瓶中,混合液在25℃、110 r/min的條件下,進(jìn)行酶固定化?;旌弦悍磻?yīng)到一定時(shí)間后,取出燒瓶在10℃、3 000 r/min條件下離心10 min。上清液用考馬斯亮藍(lán)蛋白測(cè)試方法測(cè)定其蛋白含量,上清液中減少的蛋白量即是海泡石材料上所固定的酶蛋白量,固定化的酶蛋白與載體量的比例可以由Pa=(ρi-ρf)V/m計(jì)算得出,式中:Pa為單位載體上固定的酶蛋白的量(mg/g),ρi和ρf為反應(yīng)前后酶溶液的質(zhì)量濃度(g/L),V為反應(yīng)液體積(mL),m為使用的載體質(zhì)量(g)。
在100 mL的三角瓶中加入2 g三乙酸甘油酯、50 mL去離子水、10 mL pH為7.0的緩沖液,磁力攪拌器攪拌10 min制備成乳濁液。當(dāng)溶液pH穩(wěn)定后記錄初始pH值,并加入游離脂肪酶或固定化的脂肪酶。反應(yīng)30 min,用0.02 mol/L的NaOH溶液滴定,使pH回到初始值,記錄消耗的NaOH的量。
一個(gè)酶活(U)定義:在40℃的條件下,每分鐘內(nèi)催化1 μmol底物轉(zhuǎn)化為產(chǎn)物所需要的酶量。
2.1.1 固載時(shí)間對(duì)酶固定化的影響
在磷酸緩沖液(PBS)pH 7.0的條件下,考察固載時(shí)間對(duì)脂肪酶固定化的影響,結(jié)果見圖1。由圖1可知:脂肪酶在海泡石的最佳固定化時(shí)間為4 h,此時(shí)固定化酶活力達(dá)到最大值,固定化時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或過(guò)短均使固定化酶活力下降。這是因?yàn)殡S著時(shí)間的延長(zhǎng),過(guò)多的酶吸附于載體表面,導(dǎo)致載體孔道堵塞,酶蛋白分子互相屏蔽,能與底物契合的酶數(shù)量減少。因此,最佳固定化酶反應(yīng)時(shí)間為4 h。
圖1 固定化時(shí)間對(duì)海泡石固載豬胰脂肪酶比酶活的影響Fig.1 Effects of time on activities of immobilized PPL on sepiolite
2.1.2 溫度對(duì)酶固定化的影響
由于溫度過(guò)高會(huì)導(dǎo)致酶變性失活,因此考察不同溫度(20~50℃)對(duì)酶固定化的影響,結(jié)果見圖2。
由圖2可知:當(dāng)溫度小于30℃,所得固定化脂肪酶的比酶活較高(306 U/g);但是當(dāng)溫度超過(guò)30℃時(shí),酶活急劇下降,這是因?yàn)樵诠潭ɑ^(guò)程中酶失活所致。因此,在脂肪酶固定化過(guò)程中溫度應(yīng)控制在25~30℃之間比較理想,最佳溫度為25℃。
圖2 溫度對(duì)海泡石固載豬胰脂肪酶比酶活的影響Fig.2 Effects of temperature on activities of immobilized PPL on sepiolite
2.1.3 pH對(duì)酶固定化的影響
考察緩沖液的pH對(duì)酶固定化的影響,結(jié)果如表1所示。
由表1可知:脂肪酶的固定量受pH的影響較大,在pH 5.0的緩沖液中,酶的固定量最大為97.36 mg/g;在pH 6.0~7.0的緩沖液中,酶的固定量有所降低,但不明顯。這是因?yàn)橹久傅牡入婞c(diǎn)為5.0,當(dāng)溶液的pH大于酶分子的等電點(diǎn)時(shí),酶分子帶負(fù)電;當(dāng)溶液的pH小于等電點(diǎn)時(shí),酶分子帶正電,同時(shí)載體孔道內(nèi)表面pH比溶液中pH要小,在這種情況下,蛋白質(zhì)分子表面的正電荷逐漸減少為零電荷,蛋白質(zhì)分子間的庫(kù)倫力在減少,分子之間可以較緊密的單層排列在載體的內(nèi)表面[10-11],從而能在 pH 5.0 ~7.0時(shí)得到較高的固定量,并使得酶分子的活力在pH 6.0處充分表現(xiàn)出來(lái)。但在pH 6.0~9.0之間,由于酶分子表面所帶電荷從中性變?yōu)樨?fù)值,這時(shí)酶分子和載體表面都帶負(fù)電荷,彼此之間相互排斥,從而導(dǎo)致酶的固定量降低,酶活降低[12]。
表1 pH對(duì)酶固定量及酶活的影響Table 1 Effects of pH on PPL enzymeimmobilization and enzymatic activities on sepiolite
2.2.1 固定化酶的化學(xué)穩(wěn)定性
考察不同pH的磷酸緩沖液分別浸泡游離脂肪酶和海泡石固定化脂肪酶30 min,然后測(cè)定其酶活,以各自未經(jīng)浸泡的初始酶活力為100%計(jì),計(jì)算相對(duì)酶活力,結(jié)果如圖3所示。由圖3可知:游離脂肪酶的酶活大大降低,最高的相對(duì)酶活力也未達(dá)到50%,而且游離酶對(duì)酸堿非常敏感;經(jīng)固定化的脂肪酶對(duì)酸堿的耐受力明顯加強(qiáng),相同pH條件下浸泡后固定化脂肪酶的相對(duì)活力均大于游離酶,而且固定化脂肪酶在pH在5.0~9.0范圍內(nèi)都能維持接近90%的較高酶活。
圖3 游離脂肪酶和固定化脂肪酶的pH穩(wěn)定性Fig.3 Effects of pH on stability of free and immobilized lipase
2.2.2 固定化酶的熱穩(wěn)定性
將游離脂肪酶和海泡石固定化脂肪酶分別置于60℃環(huán)境中處理0~6 h,然后測(cè)定處理后的酶活,計(jì)算相對(duì)酶活力,以各自未經(jīng)熱處理的初始酶活力為100%計(jì),結(jié)果見圖4。
由圖4可知:游離酶在60℃環(huán)境下活力下降很快,1 h后游離酶的活力基本只有最初活力的33%。而對(duì)于固定化酶,其活力在60℃環(huán)境下下降比較緩慢,且反應(yīng)2 h后固定化酶的活力仍保留最初活力的87%。這說(shuō)明固定化脂肪酶的熱穩(wěn)定性得到了顯著的提高。酶作為一種蛋白質(zhì),其構(gòu)象對(duì)熱不穩(wěn)定,在高溫下會(huì)因變性而失活。當(dāng)酶蛋白被固定在載體上后,脂肪酶的三級(jí)結(jié)構(gòu)可以得到保護(hù)而不至于被高溫破壞,酶活力從孔道中緩慢釋放,使得固定化酶的熱穩(wěn)定性得到了提高。酶催化反應(yīng)通常會(huì)在較高溫度下進(jìn)行,固定化酶提高了酶作用效率和耐熱性,這無(wú)疑對(duì)酶催化反應(yīng)是非常有利的。
2.2.3 固定化酶的可重復(fù)利用性
重復(fù)利用在酶催化應(yīng)用方面具有很重要的作用,尤其在工業(yè)上對(duì)于節(jié)約成本方面顯得非常重要。圖5表示的是重復(fù)利用次數(shù)對(duì)酶活的影響結(jié)果。由圖5可知:固定化酶的催化活力隨重復(fù)次數(shù)的增加而下降,但在經(jīng)過(guò)5次重復(fù)使用后,其活力仍保留了91 U/g的比酶活。由于實(shí)驗(yàn)中,固定化酶使用量比較少,在回收脂肪酶的過(guò)程時(shí)不可避免地存在一定的損失,這可能也是導(dǎo)致酶活下降的原因之一。同時(shí)酶分子與材料之間是通過(guò)弱的分子間作用力(氫鍵、范德華力)吸附,經(jīng)過(guò)多次的反應(yīng)、分離和洗滌,也使得酶分子很容易從孔道中脫落[13-14]。因此,就固定化脂肪酶本身而有,其重復(fù)使用性能還是理想的。
圖4 游離脂肪酶和海泡石固定化脂肪酶的熱穩(wěn)定性Fig.4 Effects of temperature on stability of free and immobilized lipase
圖5 使用次數(shù)對(duì)海泡石固載豬胰脂肪酶比酶活的影響Fig.5 Effects of reuse cycles on the activity of the immobilized PPL on sepiolite
2.3.1 FT-IR分析
圖6為固定化海泡石材料的紅外表征結(jié)果。由圖6可知:Si—O—Si對(duì)稱和不對(duì)稱伸縮振動(dòng)峰出現(xiàn)在471、1 095 和 800 cm-1處。這些 Si—O—Si鍵形成了SiO2網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),在脂肪酶固載上去之后,該峰的強(qiáng)度明顯減少,是因?yàn)镾i—OH的基團(tuán)和脂肪酶的N—H基團(tuán)產(chǎn)生了氫鍵。而且2 850到2 995 cm-1處的C—H伸縮振動(dòng)峰、1 577cm-1處的C—O伸縮振動(dòng)峰、1 434 cm-1周圍的C—H扭曲振動(dòng)峰,這些脂肪酶的特征峰都只出現(xiàn)在固載酶的紅外圖譜上[15]。這些結(jié)果均表明,脂肪酶已成功固載在海泡石上。
圖6 海泡石材料和固定化脂肪酶的FT-IR圖譜Fig.6 FT-IR spectra of SEP and SEP-PPL
2.3.2 SEM分析
圖7為海泡石與固載后海泡石后的SEM照片結(jié)果。由圖7可知:未固載脂肪酶的海泡石和固載后的海泡石的存在明顯差異,對(duì)比可以看出脂肪酶已經(jīng)聚集固載于海泡石上。
圖7 海泡石和固定化酶的海泡石的掃描電鏡照片F(xiàn)ig.7 SEM images of SEP and SEP-PPL
采用海泡石制備固定化脂肪酶具有工藝簡(jiǎn)單、條件溫和及操作方便的特點(diǎn)。制備的固定化酶有較高的酶活,其最適固載時(shí)間為4 h,磷酸緩沖液pH 6.0,此時(shí)比酶活為309 U/g。獲得的固定化酶在pH和熱穩(wěn)定性的適應(yīng)能力都有顯著提高,固定化酶在60℃環(huán)境中保存2 h后仍保留最初活力的87%。實(shí)驗(yàn)表明海泡石是固定化脂肪酶的良好載體。
[1] Katchalski-Katzir E.Immobilized enzymes-learning from past successes and failures[J].Trends Biotechnol,1993,11(11):471-478.
[2] Schmid A,Dordick J S,Hauer B,et al.Industrial biocatalysis today and tomorrow[J].Nature,2001,409:258-268.
[3] 游金坤,余旭亞,趙鵬.吸附法固定化酶的研究進(jìn)展[J].化學(xué)工程,2012,40(4):1-2.
[4] 張琦.海泡石吸附性能研究[D].天津:河北工業(yè)大學(xué),2002.
[5] 宋秀芹,馬建峰,楊華麗,等.海泡石澄清作用在菜汁制作中的應(yīng)用[J].化學(xué)世界,1996,37(7):349-351.
[6] 鄧庚風(fēng),羅來(lái)濤,陳昭平,等.海泡石的性能及其應(yīng)用[J].江西科學(xué),1999,17(1):61.
[7] Jaeger K E,Eggert T.Lipases for biotechnology[J].Curr Opin Biotechnol,2002,13(4):390-397.
[8] 劉海洲,吳小飛,牛佰慧,等.脂肪酶在食品工業(yè)中的應(yīng)用與研究進(jìn)展[J].糧食加工,2008,33(5):55-57.
[9] 張晴,陳勇.海泡石對(duì)有機(jī)染料吸附作用的研究[J].青島大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,1995,8(2):73-77.
[10] Vinu A,Murugesan V,Tangermann O,et al.Adsorption of cytochrome c on mesoporous molecular sieves:influence of pH,pore diameter,and aluminum incorporation[J].Chem Mater,2004,16(16):3056-3065.
[11] Vinu A,Murugesan V,Hartmann M,et al.Adsorption of lysozyme over mesoporous molecular sieves MCM-41 and SBA-15:influence of pH and aluminum incorporation[J].J Phys Chem B,2004,108:7323-7330.
[12] Katiyar A,Lei L,Smirniotis P,et al.Protein adsorption on the mesoporous molecular sieve silicate SBA-15:effects of pH and pore size[J].J Chromatogr A,2005,1069:119-126.
[13] Ma H,He J,Evans D G,et al.Immobilization of lipase in a mesoporous reactor based on MCM-41[J].J Mol Catal B:Enzymatic,2004,30(5/6):209-217.
[14] Yadav G D,Jadhav S R.Synthesis of reusable lipases by immobilization on hexagonal mesoporous silica and encapsulation in calcium alginate:transesterification in non-aqueousmemdium[J].Microporous Mesoporous Mater,2005,86:215-222.
[15] Zhu Kai,Wang Jianqiang,Wang Yanhua,et al.Synthesis of retinyl palmitate catalyzed by Candida sp.99-125 lipase immobilized on fiber-like SBA-15[J].J Nanosci Nanotechnol,2011,11(9):7593-7602.