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    AB-8樹脂分離純化荷葉總黃酮的研究

    2014-03-14 08:39:42張蕾李梅香吳秀玲喬旭光
    食品研究與開發(fā) 2014年10期
    關(guān)鍵詞:樣液大孔提取液

    張蕾,李梅香,吳秀玲,喬旭光

    (1.濟寧職業(yè)技術(shù)學院,山東濟寧272000;2.山東農(nóng)業(yè)大學食品學院,山東泰安271018)

    AB-8樹脂分離純化荷葉總黃酮的研究

    張蕾1,李梅香1,吳秀玲1,喬旭光2,*

    (1.濟寧職業(yè)技術(shù)學院,山東濟寧272000;2.山東農(nóng)業(yè)大學食品學院,山東泰安271018)

    研究AB-8大孔樹脂對荷葉總黃酮的分離純化工藝,確定吸附和洗脫條件。結(jié)果表明荷葉黃酮物質(zhì)可以較好的利用AB-8型樹脂進行分離純化,得到最佳吸附工藝為v吸附流速=3BV/h,c吸附原液=2.08mg/mL,pH=6及最佳解析工藝為洗脫劑為乙醇溶液,c乙醇=80%,v洗脫流速=1.5BV/h,V洗脫劑用量=3BV。經(jīng)過AB-8型樹脂在此工藝條件下對荷葉黃酮進行精制,其純度可達59.31%。

    荷葉;黃酮;大孔樹脂;分離純化

    荷葉資源豐富,富含黃酮類物質(zhì)。荷葉黃酮能擴張血管,降壓調(diào)脂減肥,對平滑肌有解毒作用,能抗有絲分裂、抑菌和止痙攣,具有顯著生理活性[1-2]。目前,主要應(yīng)用樹脂法、萃取法、高速逆流色譜技術(shù)法和超臨界CO2萃取等方法從天然植物中富集分離黃酮類化合物[3-4]。大孔樹脂比表面積高,具有網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),能夠選擇性的吸附有機物質(zhì),從而實現(xiàn)天然產(chǎn)物的分離提純,特別適合分離提純糖苷類、黃酮類、皂苷類等成分。利用大孔樹脂進行分離,可實現(xiàn)較大的吸附容量、溫和的解析條件、較低成本等,已被廣泛應(yīng)用于天然產(chǎn)物研究,富集分離效果較好[5]。AB-8型大孔吸附樹脂是一種弱極性的聚苯乙烯型聚合物吸附劑,有研究表明黃酮類物質(zhì)的分離富集可應(yīng)用AB-8型大孔吸附樹脂,效果較好[6]。

    1 材料與方法

    1.1 材料與設(shè)備

    UV—2000型紫外分光光度計:上海UNICO儀器有限公司;QL-866漩渦混和器:江蘇海門其林貝爾儀器制造有限公司;超聲波細胞粉碎機:上海生析超聲儀器有限公司;層析柱。

    蘆?。≧utinu):生化試劑,國藥集團化學試劑有限公司。亞硝酸鈉,氫氧化鈉,硝酸鋁,乙醇,鹽酸,分析純。AB-8型大孔樹脂:天津波鴻樹脂科技有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 荷葉黃酮物質(zhì)的提取方法

    新鮮荷葉,干燥粉碎。將樣品用超聲波法進行處理,用乙醇提取荷葉黃酮濃度為70%料液比為1∶30。提取完畢,過濾,用石油醚萃取過濾液(V∶V=1∶1)。減壓真空濃縮棄去石油醚層的黃酮提取液,經(jīng)定容后得到荷葉黃酮提取液。

    1.2.2 荷葉黃酮物質(zhì)的測定方法[7]

    根據(jù)黃酮類物質(zhì)能與金屬離子通過絡(luò)合作用生成紅色化合物的原理,故采用NaNO2-Al(NO3)3-NaOH體系制作荷葉黃酮測定標準曲線且得到回歸方程Y= 0.524 4x-0.005 1,R2=0.999 9[14]。本研究中的樣液均以此法處理,測定吸光值,進而通過該方程得到荷葉黃酮的含量。

    1.2.3 AB-8大孔吸附樹脂的預(yù)處理方法[8]

    樹脂用乙醇進行濕法裝柱。用乙醇處理樹脂直至流出液與適量水混合后為澄清,用去離子水沖洗樹脂,直至流出液無醇味。先用5%鹽酸溶液處理樹脂,流速為5 BV/h,用量為4 BV,且浸泡樹脂3 h,再用去離子水沖洗樹脂直至出水pH為中性,流速為5BV/h。用4BV濃度為5%的氫氧化鈉溶液以5 BV/h的流速處理樹脂層,浸泡樹脂3 h,再用去離子水沖洗樹脂直至出水pH為中性,流速為5 BV/h。進行裝柱時,柱內(nèi)應(yīng)先放有水。

    1.2.4 AB-8樹脂對荷葉總黃酮的靜態(tài)吸附率與解吸率測定方法[9]

    分別稱取1 g預(yù)處理過樹脂于具塞三角瓶中,加入黃酮提取液(V體積=100mL,C初=0.8mg/mL),置于搖床上振蕩24 h。過濾后,按照1.2.2中方法測定濾液中荷葉黃酮濃度。

    用去離子水洗滌以上樹脂,然后加入濃度為90%的乙醇溶液,振蕩24 h,過濾,再測定濾液中荷葉黃酮濃度[14]。

    Q為黃酮吸附量,(mg/g);C初為黃酮提取液原始濃度,(mg/mL);C剩為解析后剩余黃酮濃度,(mg/mL);V為體積;W為樹脂干重(105℃下烘干相同重量的濕樹脂至恒重)

    C解為解析液中黃酮濃度,(mg/mL);V解為解析液的體積,mL;C初為黃酮提取液原始濃度,(mg/mL);C殘為柱層析后剩余樣液中黃酮濃度,(mg/mL);V上為上柱用提取液體積,mL。

    1.2.5 AB-8樹脂對荷葉黃酮的動態(tài)吸附實驗

    1.2.5.1 不同吸附流速對吸附效果的影響[10-11]

    荷葉黃酮提取液(C初=1.82mg/mL,V=100mL)分別以2、3、4BV/h的流速通過AB-8樹脂吸附柱,本著以泄漏點最遲出現(xiàn)的原則選擇最佳吸附流速。

    在精制色素溶液的過程中,當該處泄漏液的吸光度值為上柱前樣液吸光度值的1/10時,確定為泄漏點。本研究中,因黃酮溶液濃度與吸光值不成正比關(guān)系,所以需通過計算,當該處溶液的黃酮濃度值為上柱前樣液黃酮濃度值的1/10時,確定該處為泄露點。

    1.2.5.2 不同上樣濃度對吸附效果的影響

    將100mL C初分別是1.24、1.86、2.08、2.79mg/mL的荷葉黃酮提取液以3 BV/h的吸附流速,通過已經(jīng)處理好的裝有一定AB-8大孔樹脂的吸附柱,優(yōu)化上樣濃度,以泄漏點出現(xiàn)最遲的上樣濃度為宜。

    1.2.5.3 不同上樣液pH對吸附效果的影響

    分別將100mLpH為4、6、8的濃度均為2.08mg/mL的荷葉黃酮溶液,以3BV/h的吸附流速通過已經(jīng)處理好的裝有一定AB-8大孔樹脂的吸附柱,優(yōu)化上樣液pH,以泄漏點最遲出現(xiàn)的上樣液pH為宜。

    1.2.6 AB-8樹脂對荷葉黃酮的動態(tài)洗脫實驗

    1.2.6.1 確定解析劑濃度

    用荷葉黃酮提取液對進行預(yù)處理過的AB-8大孔樹脂吸附,達到泄漏點后,用去離子水洗樹脂柱至流出液無色,然后用3 BV不同濃度的乙醇溶液以1.5 BV/h的流速對AB-8樹脂柱進行解析,分別合并用不同濃度的乙醇溶液解析情況下的濃組分,測定其吸光值。

    1.2.6.2 確定解析劑用量

    用AB-8樹脂柱吸附荷葉黃酮提取液直至泄漏點出現(xiàn),水洗至流出液為無色。然后用不同量的80%乙醇溶液解析吸附過的樹脂,解析流速為1.5 BV/h,分別合并不同洗脫情況下解析液的濃組分,測定其吸光值。

    1.2.6.3 選擇不同的解析流速

    用AB-8樹脂柱吸附荷葉黃酮提取液直至泄漏點出現(xiàn),水洗至流出液為無色。然后用80%乙醇溶液分別以1、1.5、2 BV/h的解析流速對樹脂柱進行解析,解析劑用量均為3 BV,分別收集每種情況下的洗脫液。各管收集10mL解析液,計算其黃酮濃度。

    1.2.6.4 選擇不同的吸附-洗脫pH

    分別調(diào)荷葉黃酮溶液的pH為4、6、8,使其分別通過AB-8樹脂柱,吸附流速均為3BV/h。然后用80%乙醇洗脫AB-8樹脂柱,解析流速為1.5 BV/h。每管收集10mL解析液,計算流出液黃酮濃度。

    1.2.7 荷葉黃酮產(chǎn)品得率純度的計算[14]

    1.2.7.1 計算提取液中荷葉黃酮純度

    式中:c為提取液黃酮濃度,(mg/mL);w為荷葉樣品質(zhì)量,mg;V為黃酮溶液體積,(mg/mL)。

    1.2.7.2 計算上柱前提取液黃酮純度

    式中:m為提取液黃酮質(zhì)量,g;n為提取液干燥后固形物質(zhì)量,g。

    1.2.7.3 計算產(chǎn)品中荷葉黃酮純度

    式中:p為總黃酮質(zhì)量,g;q為產(chǎn)品質(zhì)量,g。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 AB-8樹脂對總黃酮的靜態(tài)吸附率與解吸率測定結(jié)果

    根據(jù)1.2.4中的方法和公式,計算得AB-8型樹脂對荷葉黃酮的基本飽和吸附量為96.01mg/g,洗脫率為92.72%。

    2.2 AB-8樹脂對荷葉黃酮的動態(tài)吸附實驗結(jié)果

    2.2.1 不同吸附流速對吸附效果的影響

    按照1.2.5.1中的方法,分別考察吸附流速為2、3 BV/h及4BV/h時的樹脂的吸附效果見圖1。

    圖1 吸附流速對AB-8樹脂吸附作用的影響Fig.1 The effect of adsorption velocity on the adsorption impact of AB-8 resin

    由圖1和計算可得,2 BV/h、3 BV/h及4 BV/h三種流速分別在80、70、50mL附近出現(xiàn)泄漏點。吸附流速越慢,泄漏點出現(xiàn)越遲。這是由于較慢的吸附流速可使荷葉黃酮樣液充分接觸樹脂,吸附效果好。若流速過快,會使AB-8樹脂還沒充分吸附荷葉黃酮,已隨吸附液流出。所以較慢的吸附流速利于提高吸附效果。但流速過慢,會降低吸附效率。因此選用吸附流速為3BV/h。

    2.2.2 不同上樣濃度對吸附效果的影響

    按照1.2.5.2中的方法,考察上樣濃度對AB-8型樹脂吸附效果的影響(圖2),C初分別是1.24、1.86、2.08、2.79mg/mL。

    由圖2可得,C初分別是1.24、1.86、2.08、2.79mg/mL的荷葉黃酮提取液通過樹脂柱,吸附流速為3 BV/h,泄露點分別出現(xiàn)在60、70、70、40mL附近。得出若初始濃度過低,則樹脂吸附效率較低。若樣初始濃度過大,則泄露點出現(xiàn)較早,吸附量較低。由圖2可知,C初為1.86mg/mL和2.08mg/mL的樣液上柱,樹脂吸附效果較好??紤]到在泄露發(fā)生情況相同的條件下,樣液黃酮初始濃度越高,AB-8型樹脂的吸附量和吸附率則越大,所以確定樣液上樣濃度為2.08mg/mL。

    圖2 上樣液濃度對AB-8型樹脂吸附作用的影響Fig.2 The effect of initial concentration on the adsorption impact of AB-8resin

    2.2.3 不同上樣液pH對吸附效果的影響

    按照1.2.5.3中的方法,分別考察pH為4、6、8時上樣液pH對AB-8樹脂吸附效果的影響見圖3。

    圖3 上樣液pH對AB-8樹脂吸附作用的影響Fig.3 The effect of pH on the adsorption impact of AB-8 resin

    由圖3得,調(diào)樣液pH分別為4、6、8,經(jīng)AB-8型樹脂吸附后,分別在60、70、50mL處發(fā)生泄露現(xiàn)象。由于荷葉黃酮為多酚性物質(zhì),含羥基較多,水溶液呈弱酸性;若吸附原液為酸性,則-OH上質(zhì)子電離會收到抑制作用,AB-8樹脂吸附能力下降,吸附飽和時間延長。若吸附原液為堿性,質(zhì)子與堿反應(yīng),削弱AB-8樹脂與吸附液進行氫鍵吸附的能力,甚至沒有飽和就已經(jīng)泄漏了。因此,在酸性條件下荷葉黃酮以分子的狀態(tài)存在,吸附效果好。從吸附量和吸附率考慮,pH為6的條件利于提高樹脂吸附效果。

    2.3 AB-8樹脂對荷葉黃酮的動態(tài)解析實驗

    2.3.1 確定洗脫劑濃度

    選擇合適解吸劑時應(yīng)考慮溶解吸附質(zhì)效果好,同時應(yīng)具備低沸點,易回收,利于環(huán)保等問題。因此最好選用極性有機溶劑乙醇作為解析劑,其低沸點且水溶性較好[12]。根據(jù)1.2.6.1中方法,采用不同濃度乙醇對已吸附飽和的樹脂進行解析,其影響結(jié)果見表1和圖5。

    表1 不同濃度乙醇的動態(tài)解析Table1 The desorption effect of different concentration of ethanol

    由表1得,較高的乙醇濃度對樹脂動態(tài)解析效果有利,其中,80%乙醇和90%的乙醇溶液動態(tài)解析效果相近。分別選用60%、70%、80%的乙醇作為洗脫劑進行解析,分別收集每種洗脫液,每管10mL,測定吸光值,計算濃度。這三種乙醇濃度的洗脫情況見圖4。

    圖4 濃度乙醇濃度對解析效果的影響Fig.4 Effect of ethanol concentration on desorption performance

    由圖4可得,高濃度乙醇能快速洗脫濃組分。用80%的乙醇溶液動態(tài)解析荷葉黃酮,洗脫速度快,且洗脫峰峰形集中。而用60%和70%的乙醇進行動態(tài)解析,洗脫曲線峰形較寬且峰形拖尾現(xiàn)象較嚴重。所以確定乙醇溶液濃度為80%。

    2.3.2 確定解析劑用量

    在保證吸附物充分被解析的基礎(chǔ)上應(yīng)盡量節(jié)省解析劑的用量。通常解析劑用量是用樹脂柱床體積的倍數(shù)來表達。按照1.2.6.2中方法,考察不同解析劑用量對AB-8樹脂洗脫效果的影響,結(jié)果見表2。

    表2 80%乙醇的用量對洗脫效果的影響Table2 The desorption effect of different dosage of 80%ethanol

    由表2可得,當80%乙醇的用量越大,解析效果越好。鑒于乙醇用量分別為4、5 BV和6 BV時,解析液濃組分的總吸光值增加幅度較小,為節(jié)省解析劑用量,所以洗脫劑乙醇的適宜用量為3BV。

    2.3.3 選擇不同解析流速

    一般要求解析流速較慢。若采用較快解析流速會產(chǎn)生一些問題,如吸附物不能較完全解析,洗脫峰峰形較寬,會產(chǎn)生拖尾現(xiàn)象等。但是若采用過較慢解析流速,則會延長解析時間。因而常把解析流速確定為吸附流速的1/3~1/2[13]。因而本實驗采用解析流速分別為1、1.5、2BV/h,均為本實驗吸附流速的1/2來考察。

    按照1.2.6.3中的方法,比較不同解析流速對洗脫效果的影響,結(jié)果見圖5。

    圖5 解析流速的選擇對洗脫效果的影響Fig.5 Effect of different desorption velocity on desorption performance

    由圖5可得,解析流速為1 BV/h時,峰值低、峰形寬且拖尾嚴重。當解析流速為2BV/h時,峰值高、峰形集中。整體來看,無論從洗脫峰峰形和峰值還是拖尾現(xiàn)象是否嚴重情況來看,解析流速為2 BV/h與解析流速為1.5BV/h時的洗脫效果相差不明顯??紤]到其二者分別對應(yīng)的吸附流速所產(chǎn)生的吸附情況有所差異,v吸附為3 BV/h時比v吸附為4 BV/h時泄漏點晚出現(xiàn)20 mL,所以選擇v吸附為3 BV/h,v解析為1.5 BV/h。

    2.3.4 選擇不同的吸附-洗脫pH

    按照1.2.6.4中的方法,比較吸附原液不同pH對洗脫效果的影響,選定荷葉黃酮溶液pH分別為4、6、8,結(jié)果見圖6。

    圖6 不同吸附原液pH對洗脫效果的影響Fig.6 Effect of different pH on desorption performance

    由圖6可知,當荷葉黃酮溶液pH為6時,洗脫峰峰值高,峰形窄,基本無拖尾現(xiàn)象。洗脫效果最好??梢缘贸?,AB-8大孔樹脂對黃酮類物質(zhì)的吸附-洗脫工作過程存在一個最佳pH。若pH過高,使AB-8樹脂與樣液的較弱產(chǎn)生氫鍵吸附作用,在吸附物解析時產(chǎn)生洗脫峰峰值低峰形寬等現(xiàn)象;若pH過低,黃酮則會與樹脂結(jié)合較牢固,不利于洗脫,峰值低,且拖尾嚴重。所以最合適吸附-洗脫pH為6。

    2.4 產(chǎn)品得率純度計算

    根據(jù)1.2.7中的公式及計算方法,得出荷葉經(jīng)超聲波粉碎技術(shù)處理,提取液中黃酮得率為5.35%;用AB-8大孔樹脂處理前濃縮樣液中的黃酮含量為16.52%;經(jīng)AB-8大孔樹脂分離純化后得到的產(chǎn)品中荷葉黃酮含量為59.31%。

    3 結(jié)論

    經(jīng)過研究AB-8大孔樹脂對的吸附和解吸特性,得到最佳吸附-解析條件,即選擇AB-8大孔吸附樹脂為吸附劑,v吸附流速=3 BV/h,c吸附原液=2.08mg/mL,pH= 6;解析劑選擇乙醇溶液,c乙醇=80%,v洗脫流速=1.5BV/h,V洗脫劑用量=3BV。經(jīng)過該條件的分離提純。產(chǎn)品中荷葉黃酮的純度為純化前荷葉黃酮純度的3.59倍,而是荷葉黃酮粗提液純度的11.09倍,提高了10倍之多。本研究表明荷葉總黃酮的富集可通過AB-8大孔樹脂得以實現(xiàn),工藝條件溫和,分離效果較好。

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    Study on Separation and Purification of Total Flavones from Lotus Leaf by AB-8 Macroporous Resin

    ZHANG Lei1,LI Mei-xiang1,WU Xiu-ling1,QIAO Xu-guang2,*
    (1.College of Food Science and Technology,Jinan 272000,Shandong,China;2.Shandong Agricultural University,Taian 271018,Shandong,China)

    The isolation ability of AB-8 macroporous adsorption resin for total flavones of lotus leaf was studied by examining the characteristics of adsorption and desorption.The result showed that the AB-8 resin possesses higher absorption and desorption capacity.The optimum conditions were as follows:the best adsorption process is vadsorption=3 BV/h,cadsorption=2.08mg/mL pH=6;the best desorption process is using 80% ethanol as the elution solvent,1.5BV/h flow rate,within 3 BV the flavonoids can be eluted completely.The product yield can be 59.31% by refinement of flavonoids from lotus leaf.

    lotus leaf;flavonoids;macroporous resins;purification

    10.3969/j.issn.1005-6521.2014.010.011

    2013-03-04

    張蕾(1981—),女(回),講師,研究生,主要從事功能食品研究。

    *通信作者:喬旭光,教授。

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