張潔茹 劉曉嘉 陳麗飛 趙春莉 董 然 顧德峰
(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué),長春,130118)
萱草(Hemerocallis spp.)作為百合科萱草屬的極具經(jīng)濟(jì)價值和廣闊前景的宿根花卉[1-2],越來越受到人們的青睞。但由于其自然分蘗繁殖的速度慢,遠(yuǎn)不能滿足城市綠化日益增長的需求,而利用組培快繁技術(shù)可以極大地提高萱草的繁殖倍數(shù),加快繁殖速度,實現(xiàn)規(guī)模化生產(chǎn)。目前,國內(nèi)關(guān)于萱草組培快繁的研究諸多,主要是對國外引進(jìn)的萱草新品種進(jìn)行組培快繁的研究[3-6],而對萱草品種雜交后選育的優(yōu)良單株再進(jìn)行離體快繁無性系研究少見報道[7];并且很多研究中,多數(shù)以花莖作為外植體,但由于萱草整株花莖很長又有分蘗,具體哪個部位啟動效果好,并未做出細(xì)節(jié)上的研究。因萱草品種間差異大,不同品種的誘導(dǎo)途徑、所需的激素種類及濃度存在差異性,所以針對每一品種系統(tǒng)地展開組培快繁的研究。
為能充分利用我國優(yōu)質(zhì)的萱草種質(zhì)資源、降低由國外引種產(chǎn)生的高額成本,本試驗以北京引進(jìn)的、資源有限的2 個萱草新品種和自行雜交后代優(yōu)選出的2 個萱草單株為試材,通過萱草花莖誘導(dǎo)愈傷組織和不定芽的途徑對4 個萱草材料分別建立有效的離體快繁體系,并對花莖不同部位的啟動效果做了較詳盡的研究,還比較了4 個萱草材料在啟動培養(yǎng)、增殖培養(yǎng)中的差異性,以期為不同萱草品種的工廠化育苗提供技術(shù)支撐,彌補(bǔ)品種單一的空缺,為我國的園林景觀多添新彩;并且還可以建立具有自主品種產(chǎn)權(quán)的萱草新品種,為下一步品種審定及品種推廣奠定基礎(chǔ)。
以北京引進(jìn)的萱草新品種及吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)萱草試驗田經(jīng)多年栽培選育出的萱草雜交后代優(yōu)良單株為試材。選用的4 個萱草材料,分別編號為WNF(無名粉)、L - 1(綠色眼睛)、RBH、CC627,其中WNF 和L-1 為北京引進(jìn)的新品種:花為粉紅色系、花冠大,直徑約14 cm;RBH 和CC627 為選育出的優(yōu)良單株:植株矮化、花莖高約25 cm、花單瓣雙色。本試驗于天氣晴朗的清晨,截取抽葶20 cm、未開花、生長健壯、無病蟲害的萱草花莖作為外植體。
外植體滅菌:將抽葶20 cm 的萱草花莖分為上、中、下3 個部位,即距花托1.5 ~3.5 cm 處為花莖分枝處的“Y”型莖段,作為花莖上部;距花托3. 5 ~10.0 cm 處分節(jié)部位作為花莖中部;距花托>10.0 cm 分節(jié)部位作為花莖下部。將取回的材料根據(jù)上、中、下部位分別剪切成2.0 ~2.5 cm 的小段(圖1中A、B)。因其幼嫩程度不同,對花莖上、中、下部位分別采用不同的方法滅菌,即花莖上部用75%酒精浸泡10 s 后再用0.1% HgCl2浸泡13 min;花莖中部用75%酒精浸泡20 s 后再用0.1% HgCl2浸泡14 min;花莖下部用75%酒精浸泡30 s 后再用0.1% HgCl2浸泡15 min,最終無菌水沖洗6 ~7 次,備用。
啟動培養(yǎng):將滅菌完畢的外植體分別接種于不同激素質(zhì)量濃度配比的啟動培養(yǎng)基上(表1),每次處理100 瓶,每瓶1 個外植體,3 次重復(fù)。接種后觀察萌動時間、愈傷著生位置、愈傷類型等,30 d 后統(tǒng)計啟動率,以期篩選出4 個萱草材料的最佳取材部位、最適啟動培養(yǎng)基。啟動率=(萌動的外植體數(shù)/接種的無污染外植體數(shù))×100%;出愈率=(形成愈傷組織的外植體數(shù)/接種的無污染外植體數(shù))×100%;不定芽分化率=(愈傷組織分化不定芽的外植體數(shù)/形成愈傷組織的外植體數(shù))×100%;出芽率=(直接誘導(dǎo)出不定芽的外植體/接種的無污染外植體數(shù))×100%,見表2所示。
繼代增殖培養(yǎng):將分化不定芽的愈傷組織分切成0.5 cm×0.5 cm 小塊(圖1中J)和直接誘導(dǎo)出的不定芽(圖1中K)接種于不同激素質(zhì)量濃度配比的增殖培養(yǎng)基上(表3),每次處理5 瓶,每瓶10 叢,1叢3 個芽,3 次重復(fù)。30 d 后統(tǒng)計不定芽的增殖率及系數(shù),以期篩選出4 個萱草材料各自的最適增殖培養(yǎng)基。增殖率=(增殖的不定芽愈傷塊/接種總塊數(shù))×100%;增殖系數(shù)=增殖瓶數(shù)/接種總瓶數(shù)。
數(shù)據(jù)分析:試驗數(shù)據(jù)均用Excel 2003 和DPS v7.05 統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析。
培養(yǎng)條件:試驗所用基礎(chǔ)培養(yǎng)基為MS 培養(yǎng)基,添加蔗糖30 g/L、卡拉膠8 g/L,pH=5.8,培養(yǎng)溫度為(23±2)℃,光照強(qiáng)度為2 000 lx,光照時間為14 h/d。
接種30 d 后,在不加任何激素的Q1 處理下,4個萱草材料啟動率均為0,可見適宜外源激素添加對啟動培養(yǎng)的重要性。NAA 質(zhì)量濃度的高低對4個萱草材料的啟動效果無顯著影響,而6 -BA 和2,4-D 質(zhì)量濃度的高低對4 個萱草材料的啟動效果存在顯著差異。其中WNF、L -I 表現(xiàn)出一致性,適合二者的培養(yǎng)基6 -BA 質(zhì)量濃度均為1.0 mg/L,隨質(zhì)量濃度的不斷增加,啟動率逐漸降低,只在添加1.0 mg/L 2,4-D 的Q3 處理下啟動率最大,分別為45.00%和37.60%;CC627 隨6 -BA 質(zhì)量濃度增加,啟動率先升高后降低,當(dāng)6-BA 質(zhì)量濃度為2.0 mg/L、添加1.0 mg/L 2,4 -D 的Q5 處理下啟動率達(dá)到最大值62.53%;RBH 在添加2,4 -D 的培養(yǎng)基中均未出現(xiàn)萌動現(xiàn)象,而在未添加2,4 -D,6 -BA 質(zhì)量濃度為3.0 mg/L 的Q12 處理下啟動率達(dá)到最大值28.30%。
表1 不同激素組合中外植體的啟動狀況
啟動培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),以花莖為外植體出現(xiàn)間接和直接不定芽發(fā)生型[8]兩種途徑。不同激素質(zhì)量濃度配比下誘導(dǎo)的愈傷組織類型多樣,其中兩類較優(yōu)質(zhì)的愈傷組織為:①乳白或黃色,質(zhì)地緊實,表面凹凸不平,有顆粒感,剖開無褐化(圖1中E);②綠色,質(zhì)地較軟,表面凹凸不平,有黃白色小芽點(圖1中F)。當(dāng)6 -BA 與NAA 配比時易誘導(dǎo)出①號愈傷組織,而在6 -BA、NAA 和2,4 -D 三者共同作用下易誘導(dǎo)出②號愈傷組織;并且在添加2,4 -D 誘導(dǎo)出的愈傷組織較不添加2,4 -D 誘導(dǎo)出的愈傷組織質(zhì)地疏松,分化不定芽的速度快、數(shù)量多,可見2,4 -D是影響愈傷組織誘導(dǎo)的一個重要因素。綜合考慮,WNF 和L -1 最適啟動培養(yǎng)基為MS +6 - BA1.0 mg/L+NAA0.5 mg/L+2,4 -D1.0 mg/L;RBH 最適啟動培養(yǎng)基為MS +6 -BA3.0 mg/L +NAA1.0 mg/L;CC627 最適啟動培養(yǎng)基為MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.5 mg/L+2,4 -D1.0 mg/L。
接種1 周后,外植體均有不同程度的翻卷,其中上部“Y”型莖段分叉處及切口與培養(yǎng)基接觸部位(圖1中C、D)、中部莖段分節(jié)處及切口與培養(yǎng)基接觸部位均略有白色瘤狀突起。隨培養(yǎng)時間增加,白色瘤狀突起逐漸變大,5 周后,“Y”型莖段分叉處及切口處的瘤狀突起形成團(tuán)狀愈傷組織;中部莖段分節(jié)處的瘤狀突起直接形成不定芽(圖1中H、I)、切口處形成團(tuán)狀愈傷組織,而下部莖段無萌動現(xiàn)象。
由表2顯示,花莖上部只呈現(xiàn)間接不定芽發(fā)生途徑,而中部呈現(xiàn)間接和直接不定芽發(fā)生兩種途徑。不同萱草材料、不同部位愈傷和不定芽誘導(dǎo)率差異較大,其中CC627 花莖上、中部出愈率最高,分別達(dá)到86.30%和65.73%,而RBH 出愈率最低,僅為36.56%和20.30%。CC627 花莖上、中部不定芽分化率分別高達(dá)91.30%和58.30%,RBH 花莖上部愈傷分化率最低為52.47%,而中部愈傷組織無分化現(xiàn)象。4 個萱草材料均只在花莖中部直接誘導(dǎo)出不定芽,其中RBH 出芽率最高為48.57%,而CC627出芽率最低為32.87%。綜合考慮,花莖上部愈傷組織形成與分化能力較花莖中部強(qiáng),但花莖中部直接誘導(dǎo)出不定芽的能力較強(qiáng),省略了脫分化環(huán)節(jié),可以大大的縮短繁育周期,故花莖上部和中部為萱草離體快繁的最佳外植體。
表2 外植體不同取材部位的啟動狀況 %
由表3顯示,(1)WNF 和L-1 呈現(xiàn)出一致的趨勢,NAA 質(zhì)量濃度為0.1 mg/L 或0.2 mg/L 時,細(xì)胞分類素KT 添加與否,對WNF 和L -1 的增殖率差異顯著。當(dāng)單獨添加6 -BA2.0 mg/L 與0.1 mg/L或0.2 mg/L NAA 配比時,WNF 在增殖率上無顯著差異,但比較增殖系數(shù),添加0.2 mg/L NAA 在P<0.05 水平上顯著差異于添加0.1 mg/L NAA;而L-1 增殖率在P <0. 01 水平上存在極顯著差異。(2)當(dāng)確定NAA 質(zhì)量濃度后,RBH 的增殖率隨細(xì)胞分裂素質(zhì)量濃度升高而不斷增大,但當(dāng)細(xì)胞分裂素質(zhì)量濃度(6 -BA +KT)為4.0 mg/L 時,增殖率明顯下降。在Z4 處理下添加(6 -BA +KT)3.0 mg/L與Z5 處理下單獨添加6 -BA3.0 mg/L 雖不存在顯著差異,但Z4 處理的增殖率明顯低于Z5 處理,并且Z4 處理下易出現(xiàn)增殖苗不整齊現(xiàn)象。當(dāng)6 -BA3.0 mg/L,NAA0.2 mg/L 時,RBH 增殖率和增殖系數(shù)均達(dá)到最大,分別為95.17%和3.28。(3)CC627 增殖能力極強(qiáng),只要細(xì)胞分裂素在1.0 ~3.0 mg/L 時,無論單獨添加6 -BA 或6 -BA 與KT 共同作用,增殖率均為100%,比較增殖系數(shù),Z8 處理下的增殖系數(shù)在P <0.05 水平下顯著差異于其它各處理。4 個萱草材料的增殖狀況不盡相同,綜合考慮,WNF 和L-1 最適增殖培養(yǎng)基為MS + 6 - BA2. 0 mg/L +NAA0.2 mg/L;RBH 最適增殖培養(yǎng)基為MS +6 -BA3.0 mg/L +NAA0.2 mg/L;CC627 最適增殖培養(yǎng)基為MS+6 -BA1.0 mg/L+KT1.0 mg/L+NAA0.2 mg/L。
以抽葶20cm 的萱草花莖為外植體進(jìn)行啟動培養(yǎng),研究發(fā)現(xiàn)同一花莖上、中、下不同部位在誘導(dǎo)途徑、啟動效果上存在差異性。其中,花莖下部未見啟動,花莖上部和中部啟動能力強(qiáng),視為最佳外植體,這與倪新等[9]研究有一些出入;并且花莖上部呈現(xiàn)間接不定芽發(fā)生途徑,中部呈現(xiàn)間接和直接不定芽發(fā)生兩種途徑,即花莖上部在分叉處和切口接觸培養(yǎng)基處先形成愈傷再分化產(chǎn)生不定芽,這與高鳳[5]、蘭麗婷[10]、畢曉穎[11]的研究結(jié)果一致;花莖中部在分節(jié)處和切口接觸培養(yǎng)基處也可先形成愈傷再分化產(chǎn)生不定芽,但愈傷量少于花莖上部分叉處,不過花莖中部還可以在分節(jié)處直接誘導(dǎo)出不定芽。這可能是由于花莖上部較中部存在更多的幼嫩組織,而幼嫩組織更有利于形成大量的愈傷組織。而花莖中部存在的組織正好處于幼嫩組織和成熟組織之間,一部分幼嫩組織可形成少量的愈傷組織,另一部分較成熟的組織可不經(jīng)過愈傷組織階段直接從外植體上產(chǎn)生不定芽。
啟動培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),花莖分叉處、分節(jié)處及切口處3 個不同位置均可形成較好愈傷組織(①號和②號),這主要與不同激素質(zhì)量濃度的組合有關(guān),而與愈傷著生位置無太大關(guān)系。其中,6 -BA 和2,4 -D質(zhì)量濃度的高低顯著影響啟動率的高低,而NAA 質(zhì)量濃度的高低對其無顯著影響,這一結(jié)果與蘭麗婷等[10]的研究相同。而過高質(zhì)量濃度的6 -BA(質(zhì)量濃度大于3.0 mg/L 時)易產(chǎn)生水漬狀愈傷和畸形不定芽(圖1中G),故應(yīng)控制其用量;添加一定量的2,4 -D 對愈傷組織的疏松程度及分化有著一定影響,但應(yīng)與其它生長素類物質(zhì)配合使用效果才明顯,這與宋雪蓮[12]、楊麗莉[13]、時頌[14]的研究一致。
表3 4 種萱草在不同培養(yǎng)基中不定芽增殖狀況
圖1 萱草外植體處理、啟動培養(yǎng)、增殖培養(yǎng)
激素配比是試管苗增殖的關(guān)鍵,細(xì)胞分裂素起主導(dǎo)作用[15-16],增殖培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),KT 與6 -BA 相互作用配合低質(zhì)量濃度的NAA 對萱草不定芽增殖有一定影響,但要視不同品種而定,CC627 在KT 與6 -BA 相互作用下呈現(xiàn)出較好的增殖效果,而RBH卻呈現(xiàn)出增殖苗長勢不一致的現(xiàn)象。這可能與KT、6 -BA 二者促進(jìn)不定芽形成的效力不同及不同植株體內(nèi)所含內(nèi)源激素的差異性有關(guān)。
4 個萱草材料在啟動培養(yǎng)、增殖培養(yǎng)中差異顯著,其中CC627 無論啟動還是增殖培養(yǎng)均呈現(xiàn)出較強(qiáng)的優(yōu)勢,而RBH 在啟動與增殖培養(yǎng)中較其它3 個材料均處于劣勢,但其花莖中部直接誘導(dǎo)不定芽的能力最強(qiáng)。這可能與激素質(zhì)量濃度配比和品種基因型有關(guān)[12],表明不同品種的生長適應(yīng)性存在一定的差異。
[1] 費硯良.宿根花卉[M].北京:中國林業(yè)出版社,1993.
[2] Tomkins J P,Wood T C,Bames L S,et al. Evaluation of genetic variation in the daylily (Hemerocallis spp.)using AFLP markers[J]. Theoretical and Applied Genetics,2001,102(4):489-496.
[3] 李艷梅,王桂蘭,陳超,等.大花萱草新品種“紅運”快繁體系的建立[J].河南農(nóng)業(yè)科學(xué),2006(8):120 -122.
[4] 呂秀立,施季森,呂光明,等.“雙玫瑰”萱草的離體培養(yǎng)和快速繁殖[J].雜草科學(xué),2009(1):31 -33.
[5] 高鳳,王雪,張婷婷,等.萱草引進(jìn)新品種“Forgotten Dreams”的組織培養(yǎng)技術(shù)[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(8):60 -62.
[6] 楊麗莉,張曉,楊睿,等.大花萱草‘莎蔓’的組織培養(yǎng)技術(shù)研究[J].北方園藝,2012(19):134 -137.
[7] 儲博彥,尹新彥,趙玉芬.萱草新品種“粉紅寶”和“金紅星”的選育[J].北方園藝,2013(8):63 -65.
[8] 鞏振輝,申書興.植物組織培養(yǎng)[M]. 北京:化工工業(yè)出版社,2007:52.
[9] 倪新,馬毓. 多倍體萱草的組織培養(yǎng)及繁殖[J]. 園藝學(xué)報,1984,11(3):202 -205.
[10] 蘭麗婷,李沖,任爽英,等. 萱草新品種組培再生體系的建立[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2011,39(4):14 -17.
[11] 畢曉穎,王寧.萱草花莖離體培養(yǎng)與快速繁殖[J]. 東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2012,40(11):56 -60.
[12] 宋雪蓮,董然,趙和祥,等. 五種新品種多倍體萱草離體快繁技術(shù)研究[J].北方園藝,2011(7):127 -129.
[13] 楊麗莉,張曉,晉凡生,等. 激素對萱草組織培養(yǎng)參數(shù)的影響[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(8):815 -818.
[14] 時頌,李青,趙霜,等. 不同切花菊品種及處理對愈傷組織誘導(dǎo)和分化的影響[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2013,41(1):77 -81.
[15] 王漢海,程貫召,杜延飛.大花萱草新品種“金娃娃”的組織培養(yǎng)和快速繁殖[J]. 植物生理學(xué)通迅,2002,38(5):458 -460.
[16] 譚文澄,戴策剛.觀賞植物組織培養(yǎng)技術(shù)[M]. 北京:中國林業(yè)出版社,1999.