鄭玉強,劉愛波,蒲 瑜,蔡 輝,武衛(wèi)華,葉 彬
2.兒童發(fā)育疾病研究教育部重點實驗室,重慶 400014;
3.兒科學重慶市重點實驗室,重慶 400014;
4.重慶市兒童發(fā)育重大疾病診治與預防國際科技合作基地,重慶 400014;
5.重慶醫(yī)科大學病原生物教研室,重慶 400016
卡氏肺孢子菌(Pneumocystis carinii,Pc)是一種寄生在大鼠肺部的機會致病性病原體,可引起免疫功能受損的大鼠的肺孢子菌肺炎(Pneumocystis pneumonia,PCP)。寄生于人肺部的孢子菌為耶氏肺孢子菌 (Pneumocystis jirovecii,Pj),可引起免疫功能低下病人肺部嚴重的PCP。目前,尚無一種抗PCP的高效低毒的藥物或理想治療方案[1]。2009年Cushion等體外研究發(fā)現(xiàn),Pc是一種生物被膜相關(guān)真菌,其耐藥性和易復發(fā)性與生物被膜相關(guān)。細菌的生物被膜不僅大大減弱了宿主對病原的免疫防御反應(yīng),而且增加了抗菌藥物抵抗性,從而增加了治療難度[2]。目前PCP的治療手段有限,常規(guī)藥物(如TMP—SMZ、噴他脒)有較大的肝臟和腎臟的毒性,且出現(xiàn)耐藥性、易復發(fā)等,這可能與Pc體內(nèi)形成生物被膜有關(guān)。β-防御素是近年來發(fā)現(xiàn)的一類小分子內(nèi)源性抗微生物多肽,具有廣譜高效抗G-菌、G+菌、真菌、寄生蟲、HIV、支原體等的活性,且未見有耐藥性。β-防御素具有誘導表達的特性,在肺的固有免疫和炎癥反應(yīng)中起重要作用[3]。本研究采用免疫抑制方法誘發(fā)SD(Sprague Dawley)大鼠PCP,證實了Pc在體內(nèi)可以形成生物被膜,并對PCP大鼠的β-防御素體內(nèi)分布情況進行了初步研究,現(xiàn)報道如下。
1.1 實驗動物 SD清潔級大鼠30只,由本校實驗動物中心提供,體重(200±10)g,雌雄各半。普通敞式大鼠籠中顆粒飼料喂養(yǎng)。免疫抑制劑使用前隨機剖殺2只,Pc的包囊和RT-PCR檢查為陰性。1d齡SD大鼠5只,作為Pc病原體RT-PCR陰性對照組。
1.2 主要設(shè)備 BECKMAN-64R低溫高速離心機,JY-96G梯度PCR儀,JY300型電泳儀,JY04S-3C凝膠成像分析系統(tǒng),LeicaCM1510S冰凍切片機,日立S-3000N/H掃描電子顯微鏡,B204TR生物顯微鏡,-80℃低溫冰箱,制冰機,恒溫箱等。
1.3 主要試劑 mRNA提取試劑盒(百泰克離心柱型),TaKaRa逆轉(zhuǎn)錄PCR試劑盒(寶生物),5%過碘酸鈉、0.1%氯化金、2%硫代硫酸鈉、5%硼砂、5%硝酸銀、3%環(huán)六亞甲基四胺溶液,飽和CaCl2,1%對苯二酚,10g/L過碘酸液和Schiff染液等。RT-PCR引物由寶生物合成,引物序列見表1。
表1 RT-PCR引物序列列表Tab.1 RT-PCR primer
1.4 誘導方法 實驗組大鼠腹股溝皮下注射地塞米松磷酸鈉,每周2次,每次2.5mg/只,同時飲用含四環(huán)素(1g/L)的水預防細菌性感染。第3周開始,每周剖殺3只實驗鼠,取肺組織作病原學檢查,剩余鼠在用藥10周后全部剖殺。
1.5 檢測方法
1.5.1 病原學檢測 GMS染色檢測Pc包囊:剖殺實驗鼠取肺組織做肺葉橫斷印片,環(huán)六亞甲基四胺銀(GMS)染色,光鏡觀察Pc包囊,判斷Pc感染程度。RT-PCR檢測Pc:從GenBank獲取SD大鼠核糖體大亞基 mRNA基因(U20177.1);Primer 5.0軟件設(shè)計并由寶生物合成Pc引物;剖殺并取實驗鼠左肺中斷組織50mg,百泰克離心柱型mRNA抽提試劑盒提取鼠肺組織總mRNA;TaKaRa逆轉(zhuǎn)錄PCR試劑盒轉(zhuǎn)錄并擴增Pc特異mRNA。PCR循環(huán)條件94℃預變性5min,94℃30s,57℃30s,72℃l min,35個循環(huán),最后一輪循環(huán)后72℃ 延伸5min。1日齡乳鼠作為Pc陰性對照組,滅菌蒸餾水作為空白對照。
1.5.2Pc生物被膜觀察 銀染色:剖殺實驗鼠取肺組織做冰凍切片,切片經(jīng)滅菌生理鹽水多次充分漂洗去掉浮游菌;在2.0%戊二醛PBS溶液中固定1h;蒸餾水清洗1min;飽和CaC12溶液結(jié)合15 min;蒸餾水清洗1min;5%AgNO3溶液反應(yīng)15 min;1%對苯二酚溶液顯色2min;蒸餾水漂洗1 min;5%NaS2O3溶液固定2min;蒸餾水漂洗1 min。銀染后進行普通光學顯微鏡觀察。過碘酸雪夫氏染色(PAS染色):剖殺實驗鼠取肺組織做冰凍切片,95%乙醇固定10min,10g/L過碘酸液作用20min,蒸餾水洗滌幾次,晾干,Schiff染液60min,用自來水洗滌15min,蘇木素染液10min,自來水沖洗15min,待干鏡檢。SEM觀察:取新鮮鼠肺左葉中斷組織切面不大于0.5mm2大小組織塊,滅菌生理鹽水漂洗2~3次,迅速以2.5%戊二醛前固定24h,送重慶醫(yī)科大學生研所電鏡室進行SEM觀察。
1.5.3 β-防御素檢測 從GenBank獲取大鼠源β1和β2防御素mRNA序列(NM_031810.1和NM_022544.2),Primer 5.0軟件設(shè)計并由寶生物合成β1和β2引物。分別提取鼠肺、腎、脾、小腸、皮膚、肝、心以及血液8個組織的mRNA,RT-PCR方法檢測各組織的β1和β2防御素表達情況,PCR條件同Pc。
2.1Pc生物被膜 在地塞米松磷酸鈉應(yīng)用4周,GMS染色和RT-PCR方法均未檢測到Pc存在;從用藥第5周,RT-PCR方法檢測到Pc,并且Pc的表達量隨用藥時間增加而增強(圖9)。GMS染色法從用藥第7周檢測到少量包囊,銀染色、PAS染色以及SEM均未觀察到明顯的Pc生物被膜。直到用藥第9周,銀染色、PAS染色以及SEM均觀察到Pc的生物被膜形成(圖1~8):GMS染色顯示Pc包囊成堆生長,周圍被云霧狀物質(zhì)覆蓋包裹;銀染色顯示,肺泡腔內(nèi)含大量絮狀黑斑膜狀物;PAS染色顯示肺泡腔內(nèi)Pc分泌的糖類等粘液物質(zhì)被染成紅色;SEM顯示Pc呈葡萄串樣生長,表面覆蓋粘液樣物質(zhì)。
2.2 PCP鼠β防御素的分布 在所測的8個組織中,均能檢測到β1和β2-防御素的表達,但β1和β2在各組織表達的強弱程度不同;β1-防御素主要在腎臟表達,其次為皮膚、肺以及血液,β2-防御素主要在肺組織表達,其次為皮膚、心臟以及腎臟等組織。
圖1 應(yīng)用地塞米松磷酸鈉7周后的鼠肺左葉橫斷面印片,GMS染色示Pc包囊(×1000)Fig.1 Sporadic P.carinii cysts in lung tissue smeared 7 weeks after using dexamethasone (GMS stain,×1 000)
圖2 應(yīng)用地塞米松磷酸鈉9周后的鼠肺左葉橫斷面印片,GMS染色示Pc包囊和云霧狀Pc生物被膜(×1 000)Fig.2 Piles of P.carinii cysts and biofilm in lung tissue smeared 9weeks after using dexamethasone(GMS stain,×1 000)
圖3 應(yīng)用地塞米松磷酸鈉7周后的鼠肺切片,銀染色可見散在的黑點或黑斑(×400)Fig.3 Sporadic black spot in lung tissue slice 7weeks after using dexamethasone(silver stain,×400)
圖4 應(yīng)用地塞米松磷酸鈉9周后的鼠肺切片,銀染色可見明顯的絮狀黑斑的膜狀物(×400)Fig.4 Flocculent black spot in lung tissue slice 9weeks after using dexamethasone(silver stain,×400)
圖5 應(yīng)用地塞米松磷酸鈉7周后的鼠肺切片,PAS染色陰性(×400)Fig.5 Lung tissue slice 7weeks after using dexamethasone(PAS stain negative,×400)
圖6 應(yīng)用地塞米松磷酸鈉9周后的鼠肺切片,PAS染色陽性,肺泡腔內(nèi)可見紅色泡沫狀膜狀物,為Pc分泌的糖類物質(zhì)形成的生物被膜(×400)Fig.6 Red flocculent substance in lung tissue slice 9weeks after using dexamethasone(PAS stain positive,×400)
圖7 應(yīng)用地塞米松磷酸鈉7周后的鼠肺掃描電鏡,肺泡腔內(nèi)可見散在Pc包囊(×1 500)Fig.7 Scanning electron microscope observation on lung tissue at 7weeks after using dexamethasone(sporadic cyst was noted,×1 500)
圖8 應(yīng)用地塞米松磷酸鈉9周后的鼠肺掃描電鏡,肺泡腔內(nèi)可成堆聚集的Pc包囊及其表面膜狀覆蓋物(×1 000)Fig.8 Scanning electron microscope observation on the piles of cyst in lung tissue 9weeks after using dexamethasone(×1 000)
圖9 RT-PCR擴增Pc的目的基因Fig.9 Fragment of Pc RT-PCR amplification
生物被膜(biofilm)是細菌、真菌為適應(yīng)自然環(huán)境而采取的一種生存策略,是其逃避宿主免疫和抵抗抗生素的重要機制之一,是造成臨床上生物被膜相關(guān)菌慢性、難治性感染的重要原因[4]。2009年Cushion等[5]體外研究發(fā)現(xiàn),Pc是一種生物被膜相關(guān)真菌。Pc易成團、成簇生長,并分泌一些帶負電荷的糖蛋白等物質(zhì)將其包裹形成結(jié)構(gòu)性群落,即Pc生物被膜。銀染色是生物被膜檢測的傳統(tǒng)方法,簡單易行,但比較粗糙,不易對生物被膜的結(jié)構(gòu)作清晰觀察;掃描電鏡是生物被膜觀察的經(jīng)典方法,可直觀觀察被膜的結(jié)構(gòu);PAS染色主要觀察Pc病原周圍的粘液和糖類等生物被膜基質(zhì)。我們的PCP模型動物實驗證實體內(nèi)Pc也形成生物被膜,從用藥第5周RT-PCR即可檢測到Pc感染到第9周才觀察到明顯的生物被膜,說明Pc在體內(nèi)形成生物被膜比較緩慢;但Pc生物被膜一旦形成,不僅大大減弱了宿主對Pc的免疫反應(yīng),成為Pc免疫逃避的重要方式,而且增加了抗Pc的藥物抵抗性,從而增加了抗PCP的治療難度。目前,治療PCP的藥物較多(如抗寄生蟲類藥物戊烷脒,抗真菌類藥物棘球白素[6],中醫(yī)中藥苦參合劑、香菇多糖等),但每種方法均有很大局限性:藥物腎毒副作用大、出現(xiàn)耐藥性、對Pc殺滅不徹底、易復發(fā)等。因此,尋找一種既針對Pc病原體,又針對Pc生物被膜的高效、低毒藥物或治療手段成為抗PCP研究的一個重要方向。
圖10 RT-PCR擴增β防御素的目的基因Fig.10 Fragment ofβ-defensin RT-PCR amplification
β-防御素是近年來發(fā)現(xiàn)的一類小分子內(nèi)源性抗微生物多肽,具有廣譜高效抗G-菌、G+菌、真菌、寄生蟲、HIV、支原體等的活性,且未見有耐藥性;其作用機制主要是通過干擾和破壞微生物胞膜而起抑制或殺傷作用[7]。β-防御素不僅是先天性免疫的調(diào)節(jié)分子,能提高吞噬細胞的吞噬能力,調(diào)節(jié)微生物入侵時宿主的先天性防御能力;還是細胞介導的獲得性免疫的效應(yīng)成分,具有免疫增強活性,能趨化T細胞再循環(huán)、未成熟DC及單核細胞到感染部位,有利于(輔助)獲得性免疫反應(yīng)的啟動[8]。β-防御素主要存在于皮膚、粘膜和肺上皮組織,在正常情況下只有微量表達,難以達到抵御外源性致病菌入侵的作用。β-防御素是誘導表達型防御素,G─菌、G+菌 、白假絲酵母菌、TNF-α、IL-1、板藍根等物質(zhì)可誘導其表達[9-10]。本研究表明,免疫受抑制的PCP鼠體內(nèi)多臟器也有β防御素的表達,尤其是肺部β2-防御素的表達較強,這可能與肺部感染Pc病原的誘導表達有關(guān)。因此,抗PCP的治療中,能誘導增強β防御素的表達,對消滅Pc病原,增強宿主免疫功能具有重要意義。
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