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    參附注射液聯(lián)合細胞因子對急性髓性白血病HL-60細胞來源的樹突狀細胞誘導生成及功能的影響

    2013-11-11 03:55:42任莉莉問明李淑青宋子正商琰紅王素云魏影非
    河北醫(yī)藥 2013年6期
    關(guān)鍵詞:樹突白血病誘導

    任莉莉 問明 李淑青 宋子正 商琰紅 王素云 魏影非

    白血病是一類起源于骨髓多能干細胞的惡性克隆性疾病,其發(fā)生和發(fā)展的主要原因是白血病細胞不能有效的激活T細胞而逃脫宿主免疫系統(tǒng)監(jiān)視和清除。樹突狀細胞(DCs)是能激活初始型T細胞(native T cells)的專職抗原遞呈細胞(APC)[1],在激發(fā)抗原特異性細胞毒性T淋巴細胞(CTL)引起的過繼性免疫治療腫瘤中具有重要地位,成為腫瘤免疫治療研究的熱點。但體內(nèi)DCs的含量很少,難以滿足臨床應(yīng)用的需要。研究表明,DCs可在體外誘導、擴增,并可體外有效激活、誘導特異性抗腫瘤免疫。但DCs體外培養(yǎng)需要大量細胞因子,有研究也通過體外試驗證實,應(yīng)用粒-巨噬細胞集落刺激因子(GM-CSF)和白細胞介素-4(IL-4),僅可使部分慢性髓性白血病(CML)原代細胞分化為DCs,且表面免疫分子表達低于正常細胞來源的 DCs,特別是 CD80、HLA-DR[2]。并且從急性髓細胞白血病(AML)細胞誘導培養(yǎng)DCs比CML細胞困難,以往的試驗相對集中在CML來源,AML來源研究的較少,因此,有必要進一步探索提高體外誘導AML來源DCs質(zhì)量的方法。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑 重組人GM-CSF由華北制藥金坦公司惠贈;重組人IL-4為美國Pepprotech公司產(chǎn)品,比活性13 U/ng;異硫氰酸熒光素(FITC)-CD1a單抗、FITC-CD80單抗、藻紅朊熒光素(PE)-CD83單抗、PE-HLA-DR單抗為美國B-D公司產(chǎn)品;IFN-γ試劑盒為深圳晶美生物工程公司。噻唑蘭(MTT)購于Ameresco公司。藥品:參附注射液由雅安三九藥業(yè)有限公司提供;批號:050802。人急性髓性白血病細胞系HL-60細胞株由中國協(xié)和醫(yī)科大學天津血液病研究所惠贈。

    1.2 儀器 潔凈工作臺(蘇州凈化設(shè)備廠),恒溫CO2細胞培養(yǎng)箱(美國SHELDON公司),低速離心機(日本KUBOTA),倒置顯微鏡(日本Olympus公司),流式細胞儀(Vantage美國B-D公司),酶標儀(北京Bintag公司)。

    1.3 方法 DCs的培養(yǎng)和測定參照 Choudhury等[1,2]的方法,并加以改良。

    1.3.1 體外誘導HL-60DCs:取HL-60細胞(調(diào)節(jié)細胞濃度為5×105/ml),選用 IL-4+GM-CSF(終濃度分別為 50 ng/ml、100 ng/ml)、不 同 濃 度 的 SFI(9.38 mg/ml、18.75 mg/ml、37.5 mg/ml、75 mg/ml、150 mg/ml,均為生藥濃度)及 IL-4+GM-CSF聯(lián)合不同濃度的SFI(濃度分別同上)三種不同組合于37℃,5%CO2條件下誘導培養(yǎng)HL-60細胞,在倒置顯微鏡下觀察細胞生長的動態(tài)變化。

    1.3.2 DCs的流式細胞術(shù)分析:收集培養(yǎng)8~12 d的細胞,800 r/min離心10 min,取上清-20℃凍存留測細胞因子,細胞用PBS洗2次,以PBS懸浮細胞,調(diào)整細胞數(shù)為1×106/ml,分別加入抗FITC-CD1a、抗FITC-CD80、抗PE-CD83和抗PE-HLADR單克隆抗體,置暗處室溫下反應(yīng)15 min,上機檢測。

    1.3.3 DCs刺激同種混和淋巴細胞反應(yīng)(allo-MLR):取培養(yǎng)的DCs,800 r/min離心10 min,用 PBS洗2次,加入絲裂霉素 C 25 μg/ml,37℃、飽和濕度、5%CO2培養(yǎng)箱中孵育 30 min,PBS洗3次作為刺激細胞。分離健康人外周血單個核細胞(PBMNC),以完全培養(yǎng)基37℃、飽和濕度、5%CO2培養(yǎng)箱中孵育2 h,輕輕吸出懸浮細胞,作為同種異體淋巴細胞即效應(yīng)細胞。將刺激和效應(yīng)細胞分別用RPMI-1640完全培養(yǎng)基懸浮,調(diào)節(jié)細胞濃度為1×105/ml,分別以 1×103/孔、3×104/孔和1×104/孔刺激細胞加入96孔平底培養(yǎng)板,每組設(shè)3個復孔,再加入效應(yīng)細胞1 ×105/孔。即 DC∶淋巴細胞比例為1∶100,1∶30,1∶10。同時設(shè)空白對照孔,即只加入1×105/孔效應(yīng)細胞,設(shè)3個復孔。補充培養(yǎng)基至總體積200 μl。在37℃、飽和濕度、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h后,每孔加入 MTT(5 mg/ml,每孔20 μl)繼續(xù)培養(yǎng)4 h后終止培養(yǎng),1 500 r/min離心5 min,棄去孔內(nèi)培養(yǎng)液。每孔中加入二甲基亞砜(DMSO)100 μl,振蕩混勻,560 nm檢測OD值,3孔OD值取均值命名為A。刺激指數(shù)(SI)=實驗孔A值/空白對照孔A值。

    1.3.4 IFN-γ的測定:取上述凍存的上清,采用雙抗體夾心ELISA法測定IFN-γ的含量,具體方法參照深圳晶美生物工程公司的ELISA檢測試劑盒說明書。

    1.4 統(tǒng)計學分析 應(yīng)用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件,多組均數(shù)間比較采用多因素方差分析;兩兩比較采用LSD和SNK-q法檢驗;采用析因設(shè)計的方差分析檢驗SFI與(GM-CSF+IL-4)聯(lián)合使用時的協(xié)同作用;采用直線相關(guān)分析 T細胞增殖反應(yīng)與 DCs數(shù)量的相關(guān)關(guān)系,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    2 結(jié)果

    2.1 形態(tài)觀察 處理前HL-60細胞呈球形,懸浮生長,表面光滑。僅加入GM-CSF及IL-4培養(yǎng)2 d后,2組部分細胞體積增大、增殖并開始表現(xiàn)多形性,培養(yǎng)8~12 d左右時可見較多具有典型樹突狀突起的細胞。而單獨應(yīng)用不同濃度SFI培養(yǎng)的HL-60細胞可見:150 mg/ml、75 mg/ml SFI處理孔細胞全部破碎死亡,37.5 mg/ml細胞增殖緩慢,18.75 mg/ml、9.38 mg/ml處理孔中細胞體積增大并增殖明顯,但培養(yǎng)至8~12 d均未見具有樹突狀突起的細胞。GM-CSF+IL-4聯(lián)合不同濃度 SFI誘導培養(yǎng)的HL-60細胞呈現(xiàn)不同的變化:150 mg/ml SFI組中細胞全部破碎死亡、75 mg/ml SFI組體積稍增大,但增殖緩慢,且樹突狀突 起 的 細 胞 少 見;但 在 37.5 mg/ml、18.75 mg/ml、9.38 mg/ml SFI處理孔中細胞體積增大并增殖,培養(yǎng)8~12 d左右時典型樹突狀細胞比例明顯增加(圖1),尤以18.75 mg/ml SFI組 DCs形態(tài)的細胞比例最高,并可見細胞集落。

    2.2 細胞表型變化 培養(yǎng)前 HL-60細胞 DCs表型 CD1a、CD80、CD83、HLA-DR表達很低。而單獨以 SFI誘導培養(yǎng)的HL-60細胞上述DCs表型表達仍不高。以GM-CSF+IL-4誘導8~12 d后,細胞表型表達率均高于培養(yǎng)前和單獨以SFI培養(yǎng)組,差異有統(tǒng)計學意義(P <0.05,HL-60DCs的 CD80除外)。以GM-CSF+IL-4和不同濃度SFI誘導培養(yǎng)后,HL-60細胞以18.75 mg/ml SFI+GM-CSF+IL-4培養(yǎng)的DCs標志表達最高,并顯著高于其他各組(P<0.05),且有很好的協(xié)同作用(P<0.05)。GM-CSF+IL-4與其他濃度SFI聯(lián)用DCs表型表達率雖高于單用GM-CSF+IL-4培養(yǎng)組,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表 1。

    2.3 DCs刺激同種異體T細胞增殖的能力 培養(yǎng)前HL-60細胞以及18.75 mg/ml SFI培養(yǎng)組僅有較弱的刺激T淋巴細胞增殖能力,且隨著效靶比增加,刺激能力沒有相應(yīng)提高。在HL-60細胞中以GM-CSF+IL-4或SFI與GM-CSF+IL-4聯(lián)用培養(yǎng)的DCs,刺激T淋巴細胞增殖的能力顯著高于上述各組細胞。當效靶比為1∶100,1∶30,1∶10 時,刺激指數(shù)分別為 1.606 ±0.074 vs.2.280 ±0.097 vs.2.415 ±0.090 和 2.106 ±0.174 vs.2.728 ±0.125 vs.3.196 ±0.137(r=0.949,P <0.01)。并且SFI與GM-CSF+IL-4聯(lián)用組顯著高于GM-CSF+IL-4組(P<0.05)。見表 2。

    2.4 INF-γ的分泌水平 HL-60細胞不同組合條件下培養(yǎng)的上清中均有不同程度INF-γ的分泌,其中18.75 mg/ml SFI組INF-γ 含量低于 GM-CSF+IL-4組(P <0.01)。GM-CSF+IL-4聯(lián)合SFI組中GM-CSF+IL-4聯(lián)合18.75 mg/ml SFI組培養(yǎng)的HL-60細胞上清中INF-γ含量顯著高于GM-CSF+IL-4聯(lián)合其他濃度SFI培養(yǎng)的細胞(P<0.01),且有很好的協(xié)同作用(P<0.05)。其他濃度SFI組含量不同程度的高于GM-CSF+IL-4組,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表3。

    3 討論

    急性白血病屬中醫(yī)急勞、虛癆、血證、癥積的范疇,本虛標實、虛實錯雜是本病的主要病機特征,治宜扶正祛邪,使毒祛瘀化,則正氣得復。目前隨著化療方案的改進,AML的完全緩解率不斷增加,然而無病生存的患者仍然有限,影響患者生存的主要原因就是微小殘留病灶導致的復發(fā),即便造血干細胞移植仍存在復發(fā)的風險。

    表1參附注射液對培養(yǎng)的HL-60DCs的細胞免疫表達的影響n=3,%,±s

    表1參附注射液對培養(yǎng)的HL-60DCs的細胞免疫表達的影響n=3,%,±s

    注:與誘導前組比較,*P <0.05,#P <0.01;與對照組比較,△P <0.05,☆P <0.01;與 SFI組比較,□P <0.05,○P <0.01;與 GM-CSF+IL-4 組比較,▲P <0.05,★P<0.01;與 GM-CSF+IL-4+SFI(37.5)組比較,■P <0.01;與 GM-CSF+IL-4+SFI(18.75 組)比較,●P <0.01

    CD83 CD1a HLA-DR CD80誘導前組組別 SFI(mg/ml)表達情況0.74 ±0.57 1.07 ±0.71 0.52 ±0.51 0.51 ±0.41對照組 0 0.87 ± 0.42 1.46 ±0.76 0.77 ±0.31 0.72 ±0.20 SFI組 18.75 1.80 ±0.84 2.08 ±0.76 1.26 ±0.95 2.94 ±2.20 GM-CSF+IL-4 組 0 8.33 ±1.76#☆○ 11.86 ±3.86*△□ 0.77 ±0.31*△□ 0.77 ±0.31 GM-CSF+IL-4+SFI組 37.5 11.93 ±3.19#☆○ 14.90 ±6.89#☆○★ 14.06 ±4.84#☆○▲ 11.38 ±4.79#☆○★18.75 18.75 ±6.18#☆○★■ 24.32 ±7.44#☆○★■ 26.99 ±7.42#☆○★■ 18.24 ±3.13#☆○★■9.38 9.33 ±1.05#☆○● 13.74 ±3.79#☆○● 15.03 ±3.89#☆○▲■ 10.02 ±3.67#☆○★●0

    表2 參附注射液對培養(yǎng)的HL-60DCs刺激T細胞增殖反應(yīng)的影響

    表3 參附注射液對培養(yǎng)的HL-60DCs培養(yǎng)上清液中INF-γ含量的影響n=3,±s

    表3 參附注射液對培養(yǎng)的HL-60DCs培養(yǎng)上清液中INF-γ含量的影響n=3,±s

    注:與誘導前組和對照組比較,*P <0.05,#P <0.01;與SFI組比較,△P <0.01;與 GM-CSF+IL-4 比較,☆P < 0.05,□P < 0.01;與 GM-CSF+IL-4+SFI(37.5)組比較,○P <0.05;與 GM-CSF+IL-4+SFI(18.75)組比較,▲P <0.01

    HL-60 cells/HL-60-DCs誘導前組組別 SFI(mg/ml) IFN-γ濃度(pg/ml)15.52 ±4.03對照組 0 15.75 ±5.07 SFI組 18.75 22.89 ±7.58 GM-CSF+IL-4 組 0 37.35 ±8.31*GM-CSF+IL-4+SFI組 37.5 56.67 ±10.38#△☆18.75 73.34 ±14.40#△□○9.38 45.65 ±9.34#△▲0

    圖1 HL-60-DCs(Wright×1 000)

    DCs起源于髓系,是迄今所知人體內(nèi)最強大的抗原遞呈細胞,能誘導原發(fā)和繼發(fā)的免疫應(yīng)答,激活輔助T細胞和細胞毒性T細胞,從而產(chǎn)生強大的抗腫瘤效應(yīng),因此DCs用于免疫治療AML具有十分廣闊的前景。目前雖然用體外培養(yǎng)的方法可將白血病細胞誘導分化成為DCs,但只能使一部分白血病細胞分化為DCs,且多數(shù)白血病細胞來源的DCs表面分子的熒光強度低于正常來源的DCs,特別是CD80、HLA-DR,而二者是APC細胞與T細胞相互作用中最重要的信號分子,故它們的表達率和表達量常會影響T細胞的激活和功能[3]。因而如何提高DCs的產(chǎn)量及成熟度,激活其功能,更有效而特異的殺死白血病細胞是白血病免疫治療的研究熱點。

    來源于《濟生方》或《濟生續(xù)方》中參附湯的 SFI及其組分——人參、附子均具有調(diào)節(jié)改善機體免疫的功能,可誘導造血基質(zhì)細胞表達 GM-CSFmRNA,促進 TNF-α、IL-1、IL-2等細胞因子的產(chǎn)生,配合化療可改善白血病患者正氣不足之狀[4-6],提示SFI可能參與調(diào)節(jié)DCs抗原提呈功能,因此本試驗通過檢測代表DCs成熟及功能的幾個指標來研究SFI是否參與調(diào)節(jié)DCs的功能。

    本實驗發(fā)現(xiàn)在GM-CSF/IL-4聯(lián)合適當濃度(18.75 mg/ml、37.5 mg/ml)SFI的作用下,白血病細胞可以誘導分化為DCs,能明顯增強白血病-DCs表型(CD1a、CD80、CD83、HLA-DR)的表達率,另外還發(fā)現(xiàn)SFI對于白血病細胞存在雙向調(diào)節(jié)作用。SFI在低濃度18.75 mg/ml和9.38 mg/ml時可促進HL-60DCs細胞的增殖。而在150 mg/ml和75 mg/ml濃度時,可導致HL-60細胞全部破碎死亡或增殖緩慢,而這種雙向調(diào)節(jié)作用究竟是何種機制在發(fā)揮作用,還有待進一步的研究證實。

    我們前期的試驗證實與本試驗結(jié)果相似。雖然單獨應(yīng)用SFI不能誘導DCs的生成,但GM-CSF+IL-4聯(lián)合適當濃度的SFI能更有效地誘導DCs的生成和成熟。不同濃度的SFI對不同來源DCs誘導生成作用不同:誘導CML患者的PBMNCs和K-562細胞,SFI的最佳誘導濃度為75 mg/ml,對HL-60細胞則為18.75 mg/ml,且在相應(yīng)的濃度下與GM-CSF及IL-4聯(lián)合使用時有很好的協(xié)同作用,SFI對不同來源的細胞,有不同的最適濃度,可能與不同細胞對SFI敏感性不同有關(guān),增殖速度快的細胞對SFI更敏感。

    綜上所述,SFI可以聯(lián)合GM-CSF和IL-4誘導HL-60細胞成為成熟的DCs,使其抗原遞呈功能明顯增強,分泌INF-γ,并表現(xiàn)雙向調(diào)節(jié)作用。當然,還有很多問題需要我們進一步探索,如,SFI畢竟為中藥的混合制劑,其中的主要藥物成分人參皂甙和烏頭堿在調(diào)節(jié)免疫中究竟起協(xié)同還是拮抗作用,還是某一種成分的單獨作用;烏頭堿的心臟、神經(jīng)毒性眾所周知,怎樣通過合理的比例使之更適合發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)作用并避免不良反應(yīng);SFI在體內(nèi)有無誘導DCs生成及促進DCs增殖和遞呈抗原的功能等。相信隨著研究的深入,必將會揭示SFI抗腫瘤機制的實質(zhì),為SFI配合治療白血病提供可靠的依據(jù)。

    1 劉開揚,張洪泉.中西醫(yī)結(jié)合抗腫瘤的免疫學機制研究進展.時珍國醫(yī)國藥,2008,19:2049-2050.

    2 王俊祥,王金鎧,鄭師陵,等.人慢性髓性白血病細胞系來源的樹突狀細胞免疫功能的體外研究.南京醫(yī)科大學學報(自然科學版),2003,26:579-590.

    3 Fan P,Wu ZH,Wang S.An Investigation on the phenotype of cultured dendritic cells from the peripheral blood of patients with breast cancer.Journal Of Nanjing Medical University Ann Hematol,2002,16:115-120.

    4 Oehler L,Berer A,Kollar M,et al.Culture requierments for induction of dendritic cell differentiation in acute myeloid leukemia.Ann Hematol,2000,79:355-362.

    5 陳玉春.人參、附子與參附湯的免疫調(diào)節(jié)作用機理研究.中成藥,1994,16:30-31.

    6 王勇,王莎莉,王亞平,等.人參皂甙對人骨髓造血因子活性及其mRNA 表達的影響.解剖學報,1999,30:362-366.

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