周 瓊, 黃東林, 祁靜霞, 吳海燕, 楊麗芬,2, 施敏娟,3, 楊益眾
(1.揚(yáng)州大學(xué)園藝與植物保護(hù)學(xué)院,江蘇 揚(yáng)州 225009;2.江蘇揚(yáng)農(nóng)化工集團(tuán)有限公司,江蘇 揚(yáng)州 225009;3.南通大學(xué)醫(yī)學(xué)院,江蘇 南通 226001)
亞洲玉米螟[Ostrinia furnacalis(Güenée)]是中國(guó)玉米生產(chǎn)上最重要的害蟲(chóng),上世紀(jì)70年代以來(lái)對(duì)棉花的為害逐年加重[1-3],成為長(zhǎng)江中下游和黃河流域玉米、棉花混作區(qū)為害棉花的重要鉆蛀性害蟲(chóng)[4]。轉(zhuǎn)基因棉花的大面積推廣也成為控制亞洲玉米螟為害的重要手段[5]。但Bt作物的持續(xù)大面積種植,使多化性害蟲(chóng)連續(xù)暴露在Bt毒蛋白質(zhì)的作用下,增加了選擇壓,耐受性的群體得到發(fā)展,以致在群體水平上產(chǎn)生害蟲(chóng)抗性[6]。研究結(jié)果表明,許多害蟲(chóng)對(duì)Bt均能產(chǎn)生抗性[7-8]。但抗性的機(jī)理仍在不斷探討過(guò)程中。
解毒酶和保護(hù)酶是昆蟲(chóng)體內(nèi)的主要酶系,乙酰膽堿酯酶是神經(jīng)突觸部位清除乙酰膽堿、維護(hù)神經(jīng)正常傳導(dǎo)的重要酶類(lèi),其活性是衡量昆蟲(chóng)神經(jīng)生理活性的主要指標(biāo)[9]。而許多殺蟲(chóng)劑是以乙酰膽堿酯酶為靶標(biāo),因此該酶與昆蟲(chóng)的解毒作用有密切的關(guān)系。昆蟲(chóng)體內(nèi)的解毒酶系主要有氧化酶、還原酶、水解酶3種代表性酶類(lèi)和轉(zhuǎn)移酶4類(lèi),而水解酶中的酯酶和轉(zhuǎn)移酶類(lèi)的谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶對(duì)分解外源毒物,維持正常的生理代謝起到很重要的作用[10]。已有研究證實(shí),昆蟲(chóng)體內(nèi)的解毒酶活性受到Bt毒蛋白質(zhì)的影響而發(fā)生變化,可能與蟲(chóng)體對(duì)毒蛋白質(zhì)的代謝及抗性產(chǎn)生有關(guān)[11-12]。而超氧化物歧化酶(SOD)和過(guò)氧化氫酶(CAT)則是普遍存在于生物體內(nèi)的2種重要的防御氧化損傷的保護(hù)酶。SOD的作用是把O2·-歧化成 H2O2,H2O2能與 O2·-形成毒性更強(qiáng)的氫氧自由基(HO·),但細(xì)胞內(nèi)的CAT可以將H2O2轉(zhuǎn)化成水,生物體內(nèi)的幾種保護(hù)酶處于一種動(dòng)態(tài)平衡狀態(tài),使自由基維持在一個(gè)低水平,起到保護(hù)生物機(jī)體的作用[13]。因此,研究Bt毒蛋白質(zhì)與亞洲玉米螟體內(nèi)相關(guān)酶活的關(guān)系,不但可以了解Bt轉(zhuǎn)基因棉對(duì)亞洲玉米螟的毒性作用,還可以探尋該害蟲(chóng)產(chǎn)生抗性的可能性,也為更好地利用轉(zhuǎn)基因棉控制玉米螟提供理論基礎(chǔ)。
1.1.1 供試蟲(chóng)源 亞洲玉米螟來(lái)源于揚(yáng)州大學(xué)實(shí)驗(yàn)農(nóng)牧場(chǎng)玉米田。第一代室內(nèi)試驗(yàn)用采集于玉米上的卵;第二、三代試驗(yàn)蟲(chóng)源分別來(lái)自田間捕捉的上代成蟲(chóng),在室內(nèi)常溫條件下,放置于高10 cm直徑7 cm的罐頭瓶?jī)?nèi)飼喂,瓶?jī)?nèi)壁覆以蠟紙,頂部用窗網(wǎng)封住,并用牛皮筋扎緊,每天早中晚3次用蘸有10%蜜糖水的脫脂棉放在窗網(wǎng)上供成蟲(chóng)補(bǔ)充營(yíng)養(yǎng),產(chǎn)卵后用于試驗(yàn)。
1.1.2 Cry1Ac毒蛋白質(zhì)及人工飼料的配制 20%Cry1Ac毒蛋白質(zhì)粉劑由中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所提供。分別稱(chēng)取20%Cry1Ac毒蛋白質(zhì)粉劑0.005 350 g、0.013 375 g、0.021 400 g 和0.029 425 g,用50 mmol/L Na2CO3溶液溶解并用蒸餾水定容至100 ml,置4℃冰箱保存。人工飼料的配制參照周大榮等[14]的方法加以改進(jìn),待配好的飼料冷卻至60℃左右,加入10 ml溶解好的Cry1Ac蛋白質(zhì),充分混勻,配制成 200 ng/g、500 ng/g、800 ng/g、1 100 ng/g及對(duì)照(不加Cry1Ac蛋白質(zhì))5種不同Cry1Ac含量的人工飼料,冷卻后置4℃冰箱保存。
1.1.3 幼蟲(chóng)飼喂和樣本收集 亞洲玉米螟初孵幼蟲(chóng)分別飼喂在裝有不同Cry1Ac含量人工飼料的高10 cm直徑7 cm的罐頭瓶?jī)?nèi)。收集生長(zhǎng)整齊的3齡幼蟲(chóng)13頭及5齡幼蟲(chóng)3頭放入離心管中,重復(fù)3次。以上供試幼蟲(chóng)均放在-80℃超低溫冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
1.1.4 試驗(yàn)條件 試驗(yàn)于溫度 29℃ ±1℃、相對(duì)濕度 85% ±5%、光周期16∶8(L∶D)的光照箱(RXZ智能型人工氣候箱,寧波江南儀器廠生產(chǎn))內(nèi)進(jìn)行。
1.1.5 主要供試藥劑及試劑盒 碘化硫代乙酰膽堿(ACTHI)、5,5-二硫代雙硝基苯甲酸(DTNB)、毒扁豆堿、α-乙酸萘酯、α-萘酚、固藍(lán)B鹽、十二烷基磺酸鈉(SDS)、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、碳酸氫鈉、丙酮、無(wú)水乙醇、GSH-ST試劑盒、SOD試劑盒、CAT試劑盒、Bradford蛋白質(zhì)定量試劑盒。
1.2.1 酶源的制備 將試蟲(chóng)樣品導(dǎo)入勻漿器中,加入1 ml pH 7.0的0.1 mol/L磷酸緩沖液(含0.1%TritonX-100),冰浴勻漿。勻漿液在4℃下10 000 g離心15 min,取上清液作為酶源。每個(gè)處理重復(fù)3次,在酶標(biāo)儀下(Power wave XS酶標(biāo)儀,美國(guó)Bio-TeK公司產(chǎn)品)分析酶活性。
1.2.2 乙酰膽堿酯酶(AchE)活性測(cè)定 參照Ellman等[15]的方法并加以改進(jìn)。于412 nm下測(cè)OD值,掃描20 min,1 min讀1次數(shù),計(jì)算AchE活性。
1.2.3 α-乙酸萘酯酶活性測(cè)定 參照 Van[16]的方法并加以改進(jìn)。室溫下放置10 min,于600 nm處比色,測(cè)OD值。以α-萘酚作標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。
1.2.4 羧酸酯酶(CarE)活性測(cè)定 參照Van[16]的方法并加以改進(jìn)。室溫下放置10 min,于600 nm處比色,測(cè)OD值。
1.2.5 谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GST)活性測(cè)定 按GST測(cè)定試劑盒的說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。
1.3.1 酶源的制備 將試蟲(chóng)樣品導(dǎo)入勻漿器中,以生理鹽水作介質(zhì),加入1 ml 67.25%的生理鹽水,冰浴勻漿,勻漿液在4℃下10 000 g離心15 min。取上清液作為酶源。每個(gè)處理重復(fù)3次,在酶標(biāo)儀下分析酶活性。
1.3.2 超氧化物歧化酶(SOD)活性測(cè)定 按總超氧化物歧化酶(T-SOD)測(cè)試盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。
1.3.3 過(guò)氧化氫酶(CAT)活性測(cè)定 按過(guò)氧化氫酶(CAT)測(cè)試盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。
采用考馬斯亮藍(lán)G-250法測(cè)定,以牛血清蛋白質(zhì)(BSA)為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)。操作步驟按Bradford蛋白質(zhì)定量試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。
應(yīng)用DPS軟件中單因素試驗(yàn)統(tǒng)計(jì)的Tukey氏固定極差測(cè)驗(yàn)法對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行多重比較分析。
表1表明,不同含量Cry1Ac人工飼料對(duì)亞洲玉米螟幼蟲(chóng)乙酰膽堿酯酶活性有顯著影響(3齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=16.05,P<0.05;5 齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=4.19,P<0.05)。乙酰膽堿酯酶的活性除200 ng/g毒蛋白質(zhì)的處理外均高于對(duì)照,且隨著毒蛋白質(zhì)含量的升高而上升。1 100 ng/g處理的3齡幼蟲(chóng)該酶的活性分別比800 ng/g、500 ng/g、200 ng/g的處理及對(duì)照顯著升高了 11.19%、17.03%、23.28%、19.85%,800 ng/g處理的酶活性比200 ng/g的處理顯著升高了10.88%。1 100 ng/g處理的5齡幼蟲(chóng)酶活性比200 ng/g的處理顯著升高19.24%。
表1 取食不同含量Cry1Ac人工飼料的亞洲玉米螟幼蟲(chóng)體內(nèi)乙酰膽堿酯酶活性變化Table 1 Changes in the activitiy ofacetylcholinesterase in Ostrinia furnacalis larvae feeding on artificial diets with different contents of Cry1Ac
如圖1所示,亞洲玉米螟取食不同含量Cry1Ac毒蛋白質(zhì)的人工飼料后,對(duì)α-乙酸萘酯酶活性影響顯著(3齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=107.58,P<0.05;5齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=26.61,P <0.05)。200 ng/g Cry1Ac毒蛋白質(zhì)處理時(shí),3齡幼蟲(chóng)體內(nèi)的α-乙酸萘酯酶活性與對(duì)照相比有所上升,隨著毒蛋白質(zhì)含量的升高,α-乙酸萘酯酶活性逐漸被抑制;500 ng/g處理時(shí)α-乙酸萘酯酶活性比200 ng/g處理時(shí)顯著降低了11.57%;到800 ng/g處理時(shí),則α-乙酸萘酯酶活性比對(duì)照和200 ng/g處理時(shí)分別顯著降低了14.90%和18.81%;1 100 ng/g處理時(shí),α-乙酸萘酯酶活性比對(duì)照和 200 ng/g、500 ng/g、800 ng/g處理時(shí)分別顯著降低了48.59%、50.95%、44.53%、39.59%。5齡幼蟲(chóng)體內(nèi)α-乙酸萘酯酶活性也有類(lèi)似的變化趨勢(shì),但只有在1 100 ng/g處理時(shí),α-乙酸萘酯酶活性比對(duì)照、200 ng/g、500 ng/g、800 ng/g 處理分別顯著降低了39.15%、43.74%、34.04%、38.54%。
圖1 取食不同含量Cry1Ac人工飼料后亞洲玉米螟體內(nèi)α-乙酸萘酯酶活性變化Fig.1 Changes of the activity of α-naphthylacetate esterase in-Ostrinia furnacalis larvea feeding on artificial diets with different contents of Cry1Ac
不同含量Cry1Ac毒蛋白質(zhì)處理的亞洲玉米螟幼蟲(chóng)體內(nèi)羧酸酯酶活性與對(duì)照相比均被抑制(3齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=5.93,P <0.05;5齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=6.34,P < 0.05)。500 ng/g、800 ng/g和1 100 ng/g毒蛋白質(zhì)處理時(shí),3齡幼蟲(chóng)該酶活性分別比對(duì)照顯著降低了23.53%、24.56%和25.44%;1 100 ng/g處理時(shí),5齡幼蟲(chóng)羧酸酯酶活性分別比對(duì)照和200 ng/g處理顯著減少了30.00%和25.32%(圖2)。
圖2 取食不同含量Cry1Ac人工飼料后亞洲玉米螟體內(nèi)羧酸酯酶活性變化Fig.2 Changes of the activity of carboxylesterase in Ostrinia furnacalis larvae feeding on artificial diets with different contents of Cry1Ac
亞洲玉米螟不同齡期的幼蟲(chóng)在取食不同含量Cry1Ac人工飼料后,谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶的活性受到顯著影響(3齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=5.77,P<0.05;5齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=3.61,P<0.05)。3齡幼蟲(chóng)體內(nèi)谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶的活性除200 ng/g Cry1Ac處理外均低于對(duì)照,500 ng/g、800 ng/g和1 100 ng/g Cry1Ac 處理分別比對(duì)照降低了22.62%、23.18%、24.50%,分別比200 ng/g Cry1Ac處理顯著降低了29.57%、30.08%、31.28%。1 100 ng/g Cry1Ac處理的5齡幼蟲(chóng)體內(nèi)該酶活性比對(duì)照顯著降低了20.04%(圖3)。
圖3 取食不同含量Cry1Ac人工飼料后亞洲玉米螟幼蟲(chóng)體內(nèi)谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶活性變化Fig.3 Changes of the activity of glutathione-S-transferase in-Ostrinia furnacalis larvea feeding on artificial diets with various contents of Cry1Ac
從表2可以看出,Cry1Ac毒蛋白質(zhì)處理的亞洲玉米螟3齡幼蟲(chóng)體內(nèi)超氧化物歧化酶活性受到顯著影響(df=4,F(xiàn)=6.27,P <0.05),500 ng/g和 800 ng/g Cry1Ac處理時(shí)分別比對(duì)照顯著升高了43.78%和42.26%;5齡幼蟲(chóng)也有相同的變化趨勢(shì),但差異不顯著(df=4,F(xiàn)=1.81,P >0.05)。
表2 取食不同含量Cry1Ac人工飼料后亞洲玉米螟幼蟲(chóng)體內(nèi)保護(hù)酶活性變化Table 2 Changes in the activities of two protective enzymes in Ostrinia furnacalis larvae feeding on artificial diets with different contents of Cry1Ac
與超氧化物歧化酶活性變化相反,隨著Cry1Ac毒蛋白質(zhì)含量的增加過(guò)氧化氫酶活性逐漸下降(3齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=14.82,P<0.05;5齡幼蟲(chóng):df=4,F(xiàn)=9.01,P <0.05)。其中 500 ng/g、800 ng/g和1 100 ng/g Cry1Ac處理的3齡幼蟲(chóng)該酶活性分別比對(duì)照顯著降低19.93%、33.39%、32.61%;1 100 ng/g Cry1Ac處理的5齡幼蟲(chóng)該酶活性分別比對(duì)照及200 ng/g Cry1Ac處理的顯著降低45.56%和45.12%。
昆蟲(chóng)可以通過(guò)改變自身解毒酶或靶標(biāo)酶的特性等多種途徑以適應(yīng)寄主植物體內(nèi)的次生代謝產(chǎn)物[17],解毒酶的變化反過(guò)來(lái)再改變其對(duì)殺蟲(chóng)劑的敏感性。轉(zhuǎn)基因作物所表達(dá)的殺蟲(chóng)毒蛋白質(zhì)作為一種導(dǎo)入性外源毒素,同植物代謝的次生物質(zhì)和化學(xué)殺蟲(chóng)劑一樣,也可以引起昆蟲(chóng)體內(nèi)的相關(guān)解毒酶系和保護(hù)酶系等的活性變化,一方面對(duì)昆蟲(chóng)的持續(xù)作用可能會(huì)破壞其生理生態(tài)平衡,導(dǎo)致內(nèi)部穩(wěn)態(tài)發(fā)生紊亂,從而殺死害蟲(chóng);另一方面也可能誘導(dǎo)蟲(chóng)體產(chǎn)生一定的防御機(jī)制,進(jìn)而影響轉(zhuǎn)基因植物的殺蟲(chóng)效果,甚至導(dǎo)致害蟲(chóng)的抗性發(fā)展等。大量的研究已證明了類(lèi)似的推斷[12,18-19]。
一些研究發(fā)現(xiàn),昆蟲(chóng)體內(nèi)的各種酶活性與毒蛋白質(zhì)關(guān)系不顯著。丁雙陽(yáng)等的研究結(jié)果表明在飼喂轉(zhuǎn)Bt基因楊樹(shù)葉片后,美國(guó)白蛾幼蟲(chóng)中腸乙酰膽堿酯酶活性與對(duì)照相比差異不顯著[20]。楊進(jìn)研究發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)雙價(jià)基因棉SGK321對(duì)斜紋夜蛾3齡幼蟲(chóng)體內(nèi)的α-乙酸萘酯酶和谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶的活性與對(duì)照間差異均不明顯[21]。劉旭的研究結(jié)果表明在取食轉(zhuǎn)SCK/Cry1Ac毒蛋白質(zhì)基因稻谷后,米蛾幼蟲(chóng)體內(nèi)的谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶的活性與對(duì)照性相比無(wú)顯著差異[22]。本研究發(fā)現(xiàn),在取食含有Cry1Ac毒蛋白質(zhì)粉劑的人工飼料后,亞洲玉米螟3齡幼蟲(chóng)體內(nèi)的α-乙酸萘酯酶、羧酸酯酶以及谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶的活性受到一定的抑制,且隨著毒蛋白質(zhì)含量的升高,與對(duì)照相比表現(xiàn)出顯著的抑制作用,而在200 ng/g毒蛋白質(zhì)下,α-乙酸萘酯酶和谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶的活性均較對(duì)照有所升高。徐艷聆等也發(fā)現(xiàn)取食轉(zhuǎn)Bt基因玉米48 h后亞洲玉米螟幼蟲(chóng)體內(nèi)的α-乙酸萘酯酶、谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶活性明顯低于對(duì)照,而乙酰膽堿酯酶活性顯著高于對(duì)照,推斷乙酰膽堿酯酶可能與玉米螟對(duì)Bt毒蛋白質(zhì)的抗性有關(guān)[12]。因此Bt毒蛋白質(zhì)與昆蟲(chóng)體內(nèi)酶活的關(guān)系還有待進(jìn)一步論證。
本研究發(fā)現(xiàn),隨著毒蛋白質(zhì)含量的升高,亞洲玉米螟幼蟲(chóng)SOD活性呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì),在1 100 ng/g毒蛋白質(zhì)含量下SOD活性低于對(duì)照,而在其他毒蛋白質(zhì)含量處理下均高于對(duì)照,而CAT活性呈現(xiàn)相反的趨勢(shì),呈抑制作用。解娜等的研究結(jié)果表明在取食Cry1Ac毒蛋白質(zhì)后,粘蟲(chóng)體內(nèi)的SOD活性顯著升高,而CAT活性受到顯著抑制[23],與本研究結(jié)果一致。在本試驗(yàn)中,同一處理下,5齡幼蟲(chóng)的保護(hù)酶活力要高于3齡幼蟲(chóng),而張巍等的研究結(jié)果表明在取食轉(zhuǎn)Cry1Ab/Cry1Ac基因水稻后,短時(shí)間內(nèi)(48 h)隨著取食時(shí)間的延長(zhǎng),Bt處理組的3齡幼蟲(chóng)SOD活性先降低后上升,CAT活性在處理后期受到明顯抑制[24],與本試驗(yàn)的結(jié)果有所不同,這可能是長(zhǎng)時(shí)間取食過(guò)程中的一個(gè)階段性變化。
轉(zhuǎn)Bt基因抗蟲(chóng)作物中Bt蛋白質(zhì)的表達(dá)及轉(zhuǎn)Bt基因植物里植物次生代謝物的含量均受到多種因素的影響[25-26]。本試驗(yàn)沒(méi)有采用飼喂新鮮的轉(zhuǎn)基因植物組織來(lái)測(cè)定昆蟲(chóng)體內(nèi)的酶系活性,而是直接將Bt-Cry1Ac毒蛋白質(zhì)粉劑溶解后加入到人工飼料中進(jìn)行室內(nèi)試驗(yàn)。二者所引起的昆蟲(chóng)相關(guān)響應(yīng)機(jī)制的形式與過(guò)程是否完全相同不甚清楚,有可能是各研究的結(jié)果不盡相同的原因。
綜上所述,亞洲玉米螟取食不同亞致死含量的Cry1Ac人工飼料后,體內(nèi)的相關(guān)酶活性都發(fā)生了不同程度的變化。在較低Cry1Ac含量時(shí),蟲(chóng)體產(chǎn)生應(yīng)激反應(yīng),部分解毒酶和保護(hù)酶活性被激活,對(duì)蟲(chóng)體進(jìn)行防御;隨著含量的增加,酶活性逐漸被抑制,顯著低于對(duì)照。而乙酰膽堿酯酶活性呈現(xiàn)升高的趨勢(shì),這可能與昆蟲(chóng)的抗性有關(guān)。毒蛋白質(zhì)通過(guò)干擾SOD和CAT的活性,使蟲(chóng)體自由基清除的動(dòng)態(tài)平衡遭到破壞,擾亂正常的生理代謝,從而達(dá)到毒殺害蟲(chóng)的作用。
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