• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      渦蟲的基因沉默作用

      2013-07-12 05:42:46吳雪袁金鐸趙楠楠楊桂文安利國
      生物技術(shù)通報 2013年3期
      關(guān)鍵詞:基因功能內(nèi)源性品系

      吳雪 袁金鐸 趙楠楠 楊桂文 安利國

      (山東師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 山東省動物抗性生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,濟(jì)南 250014)

      基因沉默(Gene silencing)作為生物學(xué)研究的新領(lǐng)域,吸引了無數(shù)生物學(xué)家的眼球,在近20年間有許多關(guān)于這一方面的研究及假說被提出?;虺聊F(xiàn)象最早是Napoli 等發(fā)現(xiàn),他們在進(jìn)行轉(zhuǎn)基因紫牽?;ǖ难芯恐幸馔獍l(fā)現(xiàn)白色花和雜色花表型,后來證實(shí)該表型是由轉(zhuǎn)基因誘導(dǎo)植物體內(nèi)基因功能缺失所致,當(dāng)時稱這種現(xiàn)象為共抑制。1995年,Guo等[1]在對秀麗新小桿線蟲進(jìn)行反義RNA技術(shù)的研究時,也出現(xiàn)了同樣的抑制現(xiàn)象。直至1998年,F(xiàn)ire等[2]將dsRNA導(dǎo)入線蟲體內(nèi),檢測該dsRNA對線蟲的影響,結(jié)果證實(shí)外源dsRNA會使特定基因沉默,并且該沉默作用具有遺傳特性。他們將這種現(xiàn)象定義為RNA干擾作用(RNA interference,RNAi),也稱為轉(zhuǎn)錄后基因沉默作用(Post transcriptional genesilencing,PTGS)。

      在發(fā)現(xiàn) RNAi作用后的幾年間,該技術(shù)作為熱點(diǎn)課題在多種生物中開展研究。在真菌、果蠅 、擬南芥等生物體內(nèi)相繼發(fā)現(xiàn)了RNA i現(xiàn)象的存在[3]。1999年,再生模型渦蟲體內(nèi)也發(fā)現(xiàn)了相同的基因沉默作用[4],自此,RNAi作為一項(xiàng)能有效誘導(dǎo)特定基因功能缺失的新興技術(shù),在渦蟲發(fā)育生物學(xué)和分子生物學(xué)的研究中發(fā)揮重要作用。近年,科學(xué)家研究發(fā)現(xiàn)內(nèi)源性小RNA同樣可以引起渦蟲的基因沉默現(xiàn)象——miRNA、piRNA[5],這種內(nèi)源性基因沉默作用涉及渦蟲生命活動的整個過程,如胚胎發(fā)育、干細(xì)胞維持、組織再生和配子形成等等,是渦蟲維持正常生命活動所必須的調(diào)控過程。但目前對于miRNA、piRNA的作用機(jī)制還不是很清楚,尚需進(jìn)一步試驗(yàn)研究來證實(shí)。

      1 渦蟲RNA干擾作用

      1.1 RNA干擾機(jī)制

      近年來對于RNAi技術(shù)的研究發(fā)現(xiàn),在此過程中主要有幾個控件發(fā)揮著重要作用,使得RNA干擾賴以發(fā)生。(1)雙鏈RNA(double stranded RNA,dsRNA)——觸發(fā)分子;(2)干擾性小RNA(small interfering RNA,siRNA)——重要效應(yīng)分子;(3)RNaseⅢ家族核酸酶(Dicer,DCR)——dsRNA剪切酶;(4)RNA誘導(dǎo)沉默復(fù)合物(RNA-induced silencing complex,RISC)—— 沉默誘導(dǎo)物;(5)RNA依賴的RNA聚合酶(RNA directed RNA polymerase,RdRP)——級聯(lián)放大效應(yīng)酶。RNAi 發(fā)生機(jī)制大致分為3個階段,即啟動階段:dsRNA進(jìn)入生物體內(nèi),會被細(xì)胞內(nèi)的Dicer酶識別并在ATP供能的條件下剪切成長約 21-24個核苷酸(Nucleotide,nt)的片段,即siRNA。效應(yīng)階段:siRNA與 Dicer酶、Argonaute蛋白家族等分子結(jié)合形成RISC,但此時的RISC處于無活性狀態(tài),無活性的RISC需在核酸內(nèi)切酶 Ago-2的作用下使siRNA解旋,解旋后的反義鏈RNA將作為“向?qū)А敝笇?dǎo)RISC識別靶mRNA。最終,RISC在Ago-2協(xié)助下降解靶mRNA,引發(fā)基因沉默[3,6](圖1)。 級聯(lián)放大系統(tǒng):由Dicer酶切割而成的siRNA除了與作用因子結(jié)合形成RISC之外,還能在RdRp的作用下,以靶mRNA為模板合成dsRNA,這些新合成的dsRNA最終也可被剪切成大量的siRNA,從而放大由siRNA引發(fā)的基因沉默作用,因此即使是很微量的dsRNA也能產(chǎn)生比較徹底的基因沉默效應(yīng)[7,8]。

      1.2 RNA干擾技術(shù)在渦蟲中的發(fā)現(xiàn)

      渦蟲以其驚人的再生能力聞名于世,早在1989年,Morgan等[9]就已發(fā)現(xiàn)即使將渦蟲切成279段,其每一截段也可以再生成一個完整的個體,證實(shí)了渦蟲強(qiáng)大地再生能力。除此之外,渦蟲作為具有三胚層、左右對稱、頭部集中化等特性的最簡單生物體,在后生動物的進(jìn)化過程中占據(jù)重要地位[10]。在過去的一個世紀(jì)里,渦蟲作為經(jīng)典的模型生物,為后生動物乃至人類生物學(xué)難題的解答提供了重要的參考依據(jù),尤其是渦蟲再生機(jī)制的研究,對于脊椎動物再生模型的建立具有重要意義[11]。但是由于缺乏行之有效的技術(shù),渦蟲的很多相關(guān)研究只局限在形態(tài)學(xué)和細(xì)胞學(xué)水平上,無法深入展開,因此科學(xué)家們花費(fèi)大量的精力探索新的技術(shù)用于渦蟲的深入研究。

      1998年,科學(xué)家們在比渦蟲高等的線蟲中發(fā)現(xiàn)了RNAi作用,主要通過dsRNA注射法進(jìn)行干擾。為了檢測這種方法是否會在渦蟲體內(nèi)引發(fā)同樣的基因沉默現(xiàn)象,Alvarado等[4]選取了體壁肌肉組織、具纖毛的腹部上皮組織、光感受器3個渦蟲易于檢測的代表性部位進(jìn)行RNAi測定試驗(yàn)。研究結(jié)果表明:dsRNA注射法在渦蟲體內(nèi)會引起同樣的基因沉默效果;dsRNA注射法在渦蟲體內(nèi)所引發(fā)的基因沉默效應(yīng)是特異的;dsRNA在渦蟲體內(nèi)通過降解靶mRNA致使基因功能喪失。Alvarado的試驗(yàn)結(jié)果作為一個強(qiáng)有力的證據(jù),證實(shí)了RNAi技術(shù)在渦蟲體內(nèi)發(fā)揮的強(qiáng)大功效,為RNAi技術(shù)在渦蟲生物學(xué)研究中的應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

      隨著RNAi作用在渦蟲中的發(fā)現(xiàn),很多科學(xué)家對該領(lǐng)域產(chǎn)生了濃厚的興趣。他們嘗試用一些改良的方法來誘導(dǎo)渦蟲體內(nèi)的基因沉默作用,如dsRNA飼喂法和siRNA浸泡法,都較為成功的起到了基因干擾作用[10]。在之后的10多年時間里,dsRNA注射法與dsRNA飼喂法作為渦蟲RNAi技術(shù)的主要方法,在渦蟲基因功能和再生機(jī)制的研究中發(fā)揮著無法替代的作用。

      1.3 RNA干擾技術(shù)在渦蟲中的應(yīng)用

      RNAi技術(shù)的應(yīng)用,克服了渦蟲研究技術(shù)的局限性,為渦蟲基因功能的研究準(zhǔn)備了條件。2005年,Reddien等[12]在EST庫的基礎(chǔ)上,結(jié)合RNAi技術(shù),建立了第一個以siRNA干擾基因功能為基礎(chǔ)的渦蟲RNAi基因篩選文庫。這一文庫的建立為渦蟲更好地作為模型生物在發(fā)育生物學(xué)研究中發(fā)揮作用奠定了基礎(chǔ),同時也掀起了渦蟲基因水平研究的新高潮,此后,科學(xué)家們積極開展渦蟲RNAi的相關(guān)研究。

      1.3.1 渦蟲RNAi多樣化表型的確定 Reddien等[5]建立的RNAi基因篩選文庫中,對瑞士種渦蟲進(jìn)行代表性取樣,選取53 400個渦蟲截段,干擾1 065個基因,共篩選出240個代表性表型類別,用于渦蟲再生和穩(wěn)態(tài)的研究。對這240個基因進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),其中的大部分基因在進(jìn)化上存在高度的保守性——205個(85%)基因在其他生物體的基因組中發(fā)現(xiàn)了序列相似的同源基因。例如,渦蟲中有38個基因的編碼序列與人類某些疾病的引發(fā)序列存在同源性,在渦蟲中對這些基因進(jìn)行深入研究,有望開發(fā)出治療人類相關(guān)疾病的藥物,并且渦蟲特定基因干擾表型易于獲得,這也為相關(guān)疾病基因的研究提供了便利的條件。另外,還有35個無任何進(jìn)化保守性的渦蟲基因,這些基因被認(rèn)為是扁形動物維持自身生命活動所必需的看家基因,在很多扁形綱的病原蟲中這些基因也起至關(guān)重要的作用。因此可以針對這些已知的病原基因,設(shè)計(jì)相應(yīng)有效的生物制劑,用于疾病的防御和治療。渦蟲RNAi多樣化表型的確定,是渦蟲基因功能研究的先決條件,為特定疾病的控制和治愈提供了有效信息,為疾病的檢測技術(shù)提供了強(qiáng)大后盾[13]。

      1.3.2 RNAi在渦蟲neoblast研究中的應(yīng)用 Neoblast即渦蟲成體干細(xì)胞,主要存在于渦蟲的間充質(zhì)區(qū),是渦蟲體內(nèi)唯一具有增殖分裂活性的細(xì)胞,渦蟲的neoblast占其細(xì)胞總數(shù)的20%以上,因而可作為模式生物用于干細(xì)胞的研究[14]。在RNAi機(jī)制被發(fā)現(xiàn)之前,主要是通過紫外照射法特異性殺傷neoblast,但紫外線的殺傷作用具有非特異性,因此無法對neoblast的特定基因進(jìn)行專門研究。而Reddien[5]通過RNAi作用篩選出導(dǎo)致neoblast表型異常的基因——異常表型與紫外照射的渦蟲截段表型相似。再對這些篩選出的基因進(jìn)行分組干擾試驗(yàn),從而確定出neoblast發(fā)生相關(guān)的關(guān)鍵基因:smedwi-2和smedwi-3[15]。近年,Salvetti等[16]用相同的RNA干擾方法在渦蟲體內(nèi)檢測到果蠅Pumilio的同源基因DjPum,該基因?qū)τ趎eoblast數(shù)量和形態(tài)的維持起重要作用。Guo等[17]將渦蟲干細(xì)胞中的Bruno-like基因干擾后,neoblast將不能進(jìn)行自我更新。除此之外,在瑞士種渦蟲中還發(fā)現(xiàn)vasa、piwi、tudor和nanos的同源基因,這些基因功能的缺失會引起neoblast數(shù)量的明顯減少,表明它們是維持neoblast活性所必需的[18]。neoblast相關(guān)基因的發(fā)現(xiàn)為成功分離和培養(yǎng)渦蟲干細(xì)胞準(zhǔn)備了條件,為人類更好地了解干細(xì)胞的調(diào)控機(jī)制提供了有價值的線索[19]。

      1.3.3 RNAi在渦蟲再生研究中的應(yīng)用 渦蟲的再生過程主要伴隨著胚基發(fā)生和neoblast分化而進(jìn)行,所有與neoblast的發(fā)生分化相關(guān)的基因在渦蟲的再生過程中都起著重要作用,除此之外,再生過程中還涉及很多其他基因的相互作用,是一個非常復(fù)雜的基因調(diào)控過程。將RNAi文庫中已鑒定出的240個干擾表型,按截段的再生階段和胚基大小進(jìn)行分類,針對各分類表型中的相應(yīng)基因進(jìn)行功能測定,從而確定出再生過程中各階段的關(guān)鍵作用因子。Cebrià等[20]通過干擾roboA基因,發(fā)現(xiàn)神經(jīng)系統(tǒng)在調(diào)控渦蟲前端形態(tài)發(fā)生過程中起關(guān)鍵作用,神經(jīng)系統(tǒng)相關(guān)基因干擾后,出現(xiàn)前端再生異常表型。Lapan[21]發(fā)現(xiàn)渦蟲眼點(diǎn)再生過程中的關(guān)鍵調(diào)控因子——ovo,OVO缺少時渦蟲無法形成正常的眼點(diǎn)結(jié)構(gòu)。FGF-like受體nou-darake基因被認(rèn)為可能與渦蟲頭部再生有關(guān),該基因敲除后,可誘導(dǎo)渦蟲的其他部位形成異位的大腦和眼點(diǎn)[22]。此外,Kobayashi和Iglesias等[23,24]通過對DjwntA基因的干擾作用證實(shí):Wnt在渦蟲再生過程前后軸極性的確立中起關(guān)鍵作用,并且發(fā)現(xiàn)了DjwntA和nou-darake/FGFR信號通路間的相互作用。通過分析這些已確定的再生因子,科學(xué)家們正逐步建立起渦蟲的再生模型。該模型的建立有助于闡明高等動物細(xì)胞分化及器官再生的分子機(jī)制,將給人類疾病的治療、組織器官損傷的修復(fù)帶來新的希望。

      2 渦蟲內(nèi)源性基因沉默

      2.1 miRNA介導(dǎo)的內(nèi)源性基因沉默

      近年,在渦蟲中發(fā)現(xiàn)另一條引發(fā)基因沉默的途徑。該途徑的主要效應(yīng)因子為miRNA(microRNAs):miRNA與siRNA同為20-25 nt單鏈小分子RNA,但與外源性干擾siRNA所不同,miRNA是由內(nèi)源性具發(fā)夾結(jié)構(gòu)的 pre-miRNA 加工而成,因此該過程又稱為內(nèi)源性基因沉默作用?;蚪M中位于內(nèi)含子或基因間隔區(qū)的非編碼基因經(jīng)RNA聚合酶Ⅱ轉(zhuǎn)錄形成pri-miRNA,pri-miRNA在Drosha及其輔助因子DGCR8/PASHAR的作用下去除帽、尾結(jié)構(gòu)成為pre-miRNA[25,26],再經(jīng)Dicer 酶切割成 20-25 nt的miRNA:miRNA*配對分子,最終成熟的miRNA 從miRNA:miRNA*雙體中分離出來,與Argonaute蛋白結(jié)合形成沉默誘導(dǎo)復(fù)合體并進(jìn)行靶基因識別,從而誘發(fā)內(nèi)源性基因沉默作用[27,28]。近來的研究結(jié)果表明,miRNA 在轉(zhuǎn)錄后調(diào)控中起著至關(guān)重要的作用,miRNA介導(dǎo)的內(nèi)源性基因沉默作用涉及渦蟲生命活動的整個過程,如胚胎發(fā)育、形態(tài)發(fā)生、干細(xì)胞維持及組織再生等是渦蟲維持正常生命活動所必須的調(diào)控過程[29]。

      渦蟲體內(nèi)已發(fā)現(xiàn)了多種基因,它們與其他物種中編碼miRNA發(fā)生相關(guān)蛋白的基因同源,當(dāng)被敲除時會導(dǎo)致渦蟲再生過程的異常,表明miRNA在渦蟲再生和neoblast維持過程中是必須的。例如,Ago-2作為渦蟲形成沉默誘導(dǎo)復(fù)合體的必需蛋白,被RNAi技術(shù)沉默后,不僅阻礙了再生過程,而且neoblast的數(shù)量也出現(xiàn)了明顯的下調(diào)[30,31]。目前,在瑞士種渦蟲中已鑒定出很多保守的miRNA和miRNA簇,預(yù)測這些miRNA在渦蟲中具有相似功能。對渦蟲miRNA進(jìn)行高通量測序,發(fā)現(xiàn)了兩類miRNA:strain-specific miRNA和neoblast-specific miRNA[32]。

      2.1.1 strain-specific miRNA 瑞士種渦蟲具有有性品系和無性品系兩種,有性品系成熟個體同時具有雌性生殖系統(tǒng)和雄性生殖系統(tǒng),即雌雄同體。而無性品系缺少成熟的生殖器官,只能進(jìn)行裂體生殖。Newmark[9]對兩品系進(jìn)行核型分析,發(fā)現(xiàn)無性品系中的染色體易位現(xiàn)象可能是導(dǎo)致其無法產(chǎn)生成熟生殖器官的根本原因。通過高通量測序?qū)善废档膍iRNA進(jìn)行分析,尋找出很多品系特異miRNA,其中大部分的無性品系miRNA為渦蟲所特有的[33]。雖然這些特異miRNA與染色體易位現(xiàn)象間的關(guān)系還不是很清楚,但可以確定它們確實(shí)在渦蟲品系分化中發(fā)揮作用,這些miRNA的發(fā)現(xiàn)為渦蟲生殖模型的建立準(zhǔn)備了條件。

      2.1.2 neoblast-specific miRNA 通過對紫外處理組和非處理組渦蟲miRNA進(jìn)行高通量測序,鑒定出許多在neoblast中特異表達(dá)的miRNA。例如,miRNA簇mir71a/2d/13/752中的41個miRNA進(jìn)行整體原位雜交,雜交痕跡主要定位在神經(jīng)系統(tǒng)和上皮組織的neoblast中[33,34]。渦蟲中有斑馬魚mir-133的同源基因,Wnt 和Fgf是該基因的主要作用靶點(diǎn)——它們是渦蟲傷口愈合、干細(xì)胞再生及前后軸極化所必需的[35]。最近的研究顯示,渦蟲miRNA可能在中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育過程中起重要作用,因?yàn)楹芏鄿u蟲miRNA的作用靶點(diǎn)是中樞神經(jīng)系統(tǒng)再生過程中的關(guān)鍵因子,但這些特異miRNA對神經(jīng)鏈接進(jìn)行再生修復(fù)的調(diào)節(jié)機(jī)制還不清楚。

      2.2 piRNA介導(dǎo)的內(nèi)源性基因沉默

      2006年,《Nature》和《Science》雜志同時刊載了關(guān)于piRNA分子的報道。piRNA是一種26-31nt組成的內(nèi)源性單鏈小RNA,主要分布在轉(zhuǎn)座子、重復(fù)序列等區(qū)域??赏ㄟ^Piwi-piRNA復(fù)合物引起基因沉默從而調(diào)控生殖細(xì)胞的生長發(fā)育過程,是多種生物生殖發(fā)育得以順利進(jìn)行的重要保障[36-38]。piRNA最早在雄性小鼠睪丸中發(fā)現(xiàn),這些小RNA特異地與Piwi 蛋白家族的成員相互作用,因而被命名為 Piwiinteracting RNAs,即 piRNAs[39]。隨后,Reddien在渦蟲中也發(fā)現(xiàn)了piRNA。它們可與渦蟲的Piwi同源蛋白Smedwi-2、Smedwi-3相互作用。Smedwi蛋白家族在維持渦蟲干細(xì)胞性能中起作用,piRNA可通過沉默Smedwi-2、Smedwi-3的表達(dá)來完成對干細(xì)胞形態(tài)數(shù)量的調(diào)控[15]。渦蟲piRNA在染色體上的分布位置具有保守性。同時,其形成過程也遵循其他物種所適用的“乒乓模型”(ping pang model)假說。2008年,Palakdoeti[15]證實(shí),渦蟲piRNA確實(shí)具有與其他物種piRNA相似的功能,即piRNA在渦蟲生殖干細(xì)胞命運(yùn)決定、減數(shù)分裂、精子發(fā)生等配子形成事件中發(fā)揮重要作用[34]。目前,對于渦蟲piRNA的研究較少,對其分子特征及作用機(jī)制還不是很清楚。有人認(rèn)為,piRNA能通過表觀遺傳調(diào)控及轉(zhuǎn)錄后調(diào)控的方式發(fā)揮基因沉默作用[40,41],但尚需進(jìn)一步探究考證。

      3 結(jié)語

      RNA干擾技術(shù)在渦蟲的基因功能研究中有著廣泛的應(yīng)用,對其機(jī)制和功能的研究比較透徹。miRNA 和piRNA 介導(dǎo)的內(nèi)源性基因沉默作用作為一種重要的調(diào)節(jié)機(jī)制,在渦蟲新陳代謝、生長發(fā)育、繁衍后代的過程中發(fā)揮重要作用。但目前對于這些小RNA的研究較少,對它們的作用機(jī)制和功能特性還不是很清楚。在未來的試驗(yàn)中,可以應(yīng)用新的測序技術(shù)對不同再生階段中的各類細(xì)胞和組織進(jìn)行小RNA表達(dá)檢測。同時,利用定點(diǎn)監(jiān)測技術(shù)明確miRNA和piRNA的作用靶點(diǎn),從而建立起渦蟲小RNA 在干細(xì)胞維持及再生調(diào)節(jié)中的作用模型。另外,在生物體中還檢測到許多其他非編碼小RNA的存在。如snoRNAs和lncRNAs[42],它們可調(diào)節(jié)哺乳動物的發(fā)育過程,猜測在渦蟲中也具有相似的功能,可通過進(jìn)一步的試驗(yàn)進(jìn)行證實(shí)。

      [1] Guo S, Kemphues KJ. Par-1, a gene required for establishing polarity in C. elegans embryos, encodes a putative Ser/Thr kinase that is asymmetrically distributed[J] . Cell, 1995, 81(4):611-620.

      [2] Fire A, Xu S, Montgomery MK, et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA inCaenorhabditis elegans[J] . Nature, 1998, 391(6669):806-811.

      [3] 和瓊姬, 燕飛, 陳劍平. RNA干擾機(jī)制及其主要蛋白因子研究進(jìn)展[J] . 浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2011, 23(2):415-420.

      [4] Alvarado AS, Newmark PA. Double-stranded RNA specifically disrupts gene expression during planarian regeneration[J] . Proc Natl Acad Sci USA, 1999, 96(9):5049-5054.

      [5] Reddien PW, Oviedo NJ, Jennings JR, et al . SMEDWI-2 is a PIWI-like protein that regulates planarian stem cells[J] . Science, 2005,310(5752):1327-1330.

      [6] Chang CI, Kim HA, Dua P, et al. Structural diversity repertoire of gene silencing small interfering RNAs[J] . Nucleic Acid Therapeutics, 2011, 21(3):125-131.

      [7] 宋雪梅, 燕飛, 杜立新. RNA沉默誘導(dǎo)復(fù)合物中的生物大分子及其裝配[J] . 遺傳, 2006, 28(6):761-766.

      [8] 馬麗, 張春慶. RNA干擾機(jī)制及應(yīng)用研究進(jìn)展[J] . 北方園藝,2012(10):191-193.

      [9] Newmark PA, Alvarado AS. Not your father’s planarian:A classic model enters the era of functional genomics[J] . Genetics, 2002, 3:210-219.

      [10] Newmark PA, Reddien PW, Cebria F, et al. Ingestion of bacterially expressed double-stranded RNA inhibits gene expression in planarians[J] . Proc Natl Acad Sci USA, 2003, 100(1):11861-11865.

      [11] Saló E, Abril JF, Adell T, et al. Planarian regeneration:achievements and future directions after 20 years of research[J] . International Journal of Developmental Biology, 2009, 53(8-10):1317-1327.

      [12] Reddien PW, Bermange AL, Murfitt KJ, et al. Identification of genes needed for regeneration, stem cell function, and tissue homeostasis by systematic gene perturbation in planaria[J] . Developmental Cell, 2005, 8(5):635-649.

      [13] Lares MR, Rossi JJ, Ouellet DL. RNAi and small interfering RNAs in human disease therapeutic applications[J] . Trends Biotechnol, 2010, 28(11):570-579.

      [14] Shibata N, Rouhana L, Agata K. Cellular and molecular dissection of pluripotent adult somatic stem cells in planarians[J] . Development, Growth & Differentiation, 2010, 52(1):27-41.

      [15] Palakodeti D, Smielewska M, Lu YC, et al. The PIWI proteins SMEDWI-2 and SMEDWI-3 are required for stem cell function and piRNA expression in planarians[J] . RNA, 2008, 14(6):1174-1186.

      [16] Salvetti A, Rossi L, Lena A, et al.DjPum, a homologue ofDrosophilaPumilio, is essential to planarian stem cell maintenance[J] .Development, 2005, 132(8):1863-1874.

      [17] Guo TX, Peters AH, Newmark PA. A Bruno-like gene is required for stem cell maintenancein planarians[J] . Developmental Cell,2006, 11(2):159-169.

      [18] Juliano CE, Swartz SZ, Wessel GM, et al. A conserved germline multipotency program[J] . Development, 2010, 137(24):4113-4126.

      [19] Aboobaker AA. Planarian stem cells:a simple paradigm for regeneration[J] . Cell, 2011, 21(5):304-311.

      [20] Cebrià F, Newmark PA. Morphogenesis defects are associated with abnormal nervous system regeneration followingroboARNAi in planarians[J] . Development, 2007, 134:833-837.

      [21] Lapan SW, Reddien PW. Transcriptome analysis of the planarian eye identifiesovoas a specific regulator of eye regeneration[J] .Cell Reports, 2012, 2(2):294-307.

      [22] Cebrià F, Kobayashi C, Nakazawa M, et al. FGFR-related genenoudarakerestricts brain tissues to the head region of planarians[J] .Nature, 2002, 419(6970):620-624.

      [23] Kobayashi C, Saito Y, Ogawa K, et al. Wnt signaling is required for antero-posterior patterning of the planarian brain[J] .Developmental Biology, 2007, 306(2):714-724.

      [24] Iglesias M, Almuedo-Castillo M, Aboobaker AA, et al. Early planarian brain regeneration is independent of blastema polarity mediated by the Wnt/β-catenin pathway[J] . Developmental Biology, 2011, 358(1):68-78.

      [25] Okamura K, Hagen JW, Duan H, et al. The mirtron pathway generates microRNA-class regulatory RNAs inDrosophila[J] .Cell, 2007, 130(1):89-100.

      [26] 張超, 龐全海. siRNA與miRNA在生物體基因調(diào)控中沉默機(jī)制的比較[J] . 中國生物化學(xué)與分子生物學(xué)報, 2012, 28(5):393-398.

      [27] Ender C, Krek A, Beitzinger M, et al. A human snoRNA with micro-RNA-like functions[J] . Molecular Cell, 2008, 32(4):519-528.

      [28] Newman MA, Thomson JM, Hammond SM. Lin-28 interaction with the let-7 precursor loop mediates regulated microRNA processing[J] . RNA, 2008, 14(8):1539-1549.

      [29] González-Estévez C, Arseni V, Thambyrajah RS. Diverse miRNA spatial expression patterns suggest important roles in homeostasis and regeneration in planarians[J] . International Journal of Developmental Biology, 2009, 53(4):493-505.

      [30] Rouhana L, Shibata N, Nishimura O, et al. Different requirements for conserved post-transcriptional regulators in planarian regeneration and stem cell maintenance[J] . Developmental Biology, 2010,341(2):429-443.

      [31] Li YQ, Zeng A, Han XS, et al. Argonaute-2 regulates the proliferation of adult stem cells in planarian[J] . Cell Research, 2011, 21(12):1750-1754.

      [32] Resch AM, Palakodeti D. Small RNA pathways inSchmidtea mediterranea[J] . International Journal of Developmental Biology,2012, 56(1-3):67-74.

      [33] Lu YC, Smielewska M, Palakodeti D, et al. Deep sequencing identifies new and regulated microRNAs in Schmidtea mediterranea[J] . RNA, 2009, 15(8):1483-1491.

      [34] Friedlǎnder MR, Adamidi C, Han T, et al. High-resolution profiling and discovery of planarian small RNAs[J] . Proc Natl Acad Sci USA, 2009, 106(28):11546-11551.

      [35] Thatcher EJ, Patton JG. Small RNAs have a big impact on regeneration[J] . RNA Biology, 2010, 7(3):333-338.

      [36] Malone CD, Brennecke J, Dus M, et al. Specialized piRNA pathways act in germline and somatic tissues of theDrosophila ovary[J] .Cell, 2009, 137(3):522-535.

      [37] Saito K, Siomi MC. Small RNA-mediated quiescence of transposable elements in animals[J] . Developmental Cell, 2010, 19(5):687-697.

      [38] Kibanov MV, Gvozdev VA, Olenina LV. Germ granules in spermatogenesis ofDrosophila:Evidences of contribution to the piRNA silencing[J] . Communicative & Integrative Biology, 2012, 5(2):130-133.

      [39] 張燕, 樊伯珍, 童曉文. piRNA在生殖系統(tǒng)中的功能研究進(jìn)展[J] . 臨床醫(yī)學(xué)工程, 2010, 17(1):143-145.

      [40] VaginVV, SigovaA, Li C, et al. A distinct small RNA path way silences selfish genetic elements in the germline[J] . Science, 2006,313(5785):320-324.

      [41] Brennecke J, Aravin AA, Stark A, et al. Discrete small RNA-generating loci as master regulators of transposon activity inDrosophila[J] . Cell, 2007, 128(6):1089-1103.

      [42] Piao HL, Ma L. Non-coding RNAs as regulators of mammary development and breast cancer[J] . J Mammary Gland Biol Neoplasia,2012, 17(1):33-42.

      猜你喜歡
      基因功能內(nèi)源性品系
      板栗外生菌根誘導(dǎo)基因CmNRT3的表達(dá)及功能研究
      貴州黑山羊新品系選育
      10個團(tuán)豆新品系在綏陽縣的田間性狀及產(chǎn)量表現(xiàn)
      內(nèi)源性NO介導(dǎo)的Stargazin亞硝基化修飾在腦缺血再灌注后突觸可塑性中的作用及機(jī)制
      病毒如何與人類共進(jìn)化——內(nèi)源性逆轉(zhuǎn)錄病毒的秘密
      科學(xué)(2020年3期)2020-11-26 08:18:34
      4個地被菊新品系對濕熱脅迫的耐受性研究
      園林科技(2020年2期)2020-01-18 03:28:18
      西瓜噬酸菌Ⅲ型分泌系統(tǒng)hrcQ基因功能分析
      基因組編輯系統(tǒng)CRISPR—Cas9研究進(jìn)展及其在豬研究中的應(yīng)用
      藥用植物萜類生物合成β—AS基因研究進(jìn)展
      內(nèi)源性12—HETE參與缺氧對Kv通道抑制作用機(jī)制的研究
      肃宁县| 姚安县| 清徐县| 临沧市| 江山市| 克什克腾旗| 新乐市| 广水市| 泗洪县| 湛江市| 洛浦县| 衡阳县| 都匀市| 密云县| 祁门县| 泌阳县| 海南省| 眉山市| 乡宁县| 湖州市| 德兴市| 仁化县| 蕉岭县| 揭西县| 雷波县| 余庆县| 剑河县| 彭州市| 汉川市| 龙泉市| 文成县| 滨海县| 赤峰市| 玛纳斯县| 若羌县| 仁寿县| 靖远县| 阿图什市| 南京市| 手游| 汶川县|